Todos os procedimentos envolvendo participantes humanos foram realizados em conformidade com as diretrizes institucionais, nacionais e internacionais para o bem-estar humano e foram revisados pelo conselho de revisão institucional local
1. Isolamento e Purificação de Células B do Sangue Periférico Humano
- Retire ~ 10 mL de sangue da veia cubital mediana (na fossa cubital anterior ao cotovelo) em um tubo de 15 mL contendo K2EDTA (1,5 a 2,0 mg / mL de sangue) e inverta imediatamente o tubo várias vezes para evitar a formação de coágulos.
- Adicione 35 mL de tampão de lise de glóbulos vermelhos (RBC) autoclavado (121 °C, 15 min) (150 mM NH4Cl, 10 mM KHCO3 e 1 mM EDTA; pH 7,4) ao tubo contendo a amostra de sangue fresco (≥ 3:1 vol/vol) e incube em temperatura ambiente (RT) por não mais de 5 min.
nota: O aparecimento de transmissão de luz através do tubo indica a conclusão da lise das hemácias.
- Centrifugue a 600 x g em RT por 5 min. Certifique-se de que o pellet seja de cor branca.
- Ressuspenda o pellet com 10 mL de solução salina tamponada com fosfato autoclavado (PBS, 137 mM NaCl, 2,7 mM KCl, 4,3 mM Na2HPO4 e 1,47 mM KH2PO4; pH 7,4) e centrifugue como na etapa 1.3.
- Descarte o sobrenadante, ressuspenda o pellet com 10 mL de meio RPMI 1640 (suplementos: 10% de soro fetal de bezerro, 100 U / mL de penicilina / estreptomicina, 0,25 μg / mL de anfotericina B e 2 mM de L-glutamina) e, em seguida, coloque as células em uma placa de cultura de 10 cm (10 mL de sangue por placa). Coloque o prato em uma incubadora a 37 °C com 5% de CO2 por 30 min.
- Agite suavemente a placa de cultura algumas vezes e coloque o meio de cultura (células em suspensão) em tubos cônicos de plástico de 15 mL. Descarte as células aderentes (principalmente macrófagos) nas placas de cultura.
- Centrifugar a 600 x g a RT durante 5 min. Rejeitar o sobrenadante.
- Ressuspenda o pellet com 1 mL de meio RPMI 1640. Conte o número de células com um hemocitômetro ou um contador de células automatizado.
nota: A viabilidade dos leucócitos isolados é normalmente superior a 90% pela exclusão do azul de tripano.
- Centrifugue como na etapa 1.7 e ressuspenda as células em ~ 200 μL de tampão PBS frio (0,5% de albumina de soro bovino (BSA) e 2 mM de EDTA) na concentração de 5 - 10 x 106 células / mL.
- Adicione 5 μL de coquetel de Ab anti-humano biotinilado específico para células sanguíneas (para a seleção negativa de células B) por 106 células e incube em gelo por 30 min.
nota: O coquetel anti-Ab humano deve incluir pelo menos Abs específicos para CD2 (ou CD3), CD14 e CD16.
- Adicione um volume 10 vezes maior de PBS estéril às células, centrifugue a 600 x g por 5 min e descarte o sobrenadante.
- Adicione quantidades iguais de microesferas conjugadas com estreptavidina (5 μL por 106 células) ao pellet e misture bem.
- Incube no gelo por 30 min em um tubo cônico de plástico de 15 mL.
- Adicione 2 mL de tampão PBS no tubo.
- Coloque o tubo em um suporte magnético e incube em RT por 8 min. As microesferas marrons se fixarão gradualmente na parede do tubo ao lado do ímã.
- Com o tubo permanecendo no suporte magnético, transfira cuidadosamente o sobrenadante para um novo tubo estéril de 15 mL.
- Repita as etapas 1.14 a 1.16 e combine os dois sobrenadantes que contêm as células B intocadas. Descarte as microesferas.
- Centrifugar a 600 x g a RT durante 5 min. Rejeitar o sobrenadante.
- Ressuspenda o pellet no meio RPMI 1640 para experimentos a jusante.
nota: Normalmente, 1 - 5 x 105 células B com pureza superior a 95% de 10 mL de sangue periférico podem ser isoladas.