Artigo de método

Preparando uma emulsão adjuvante de antígeno para induzir encefalomielite autoimune

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8 de julho de 2025

Neste artigo

Resumo

Fonte: Bäckström, B. T. Um método de homogeneização rápido, simples e padronizado para preparar emulsões de antígeno/adjuvante para induzir encefalomielite autoimune experimental. J. Vis. Exp. (2022)

Este vídeo demonstra uma técnica de homogeneização eficiente para gerar uma emulsão antigénio-adjuvante para induzir encefalomielite autoimune experimental (EAE) num modelo murino. A emulsão contém um autoantígeno - glicoproteína de oligodendrócitos de mielina (MOG) - na fase aquosa, cercada por uma fase oleosa contínua composta por uma bactéria patogênica inativada. A emulsão garante uma liberação sustentada de antígenos para uma resposta imune prolongada.

Protocolo

Todos os procedimentos envolvendo modelos animais foram revisados pelo comitê institucional local de cuidados com animais e pelo conselho de revisão veterinária JoVE.

NOTA: Um fluxo esquemático do método é descrito na Figura 1.

1. Preparação do material

NOTA: Prepare todos os reagentes assepticamente em uma capa estéril, alíquota e armazene na temperatura indicada. Os reagentes podem ser armazenados por até 2 anos sem perder seu efeito.

  1. Preparar CFA contendo 20 mg/ml de Mycobacterium tuberculosis conforme descrito abaixo.
    1. Adicione 100 mg de M. tuberculosis H37RA liofilizado (ver Tabela de Materiais) e cinco esferas de aço de 3,2 mm a um tubo de 7 mL (ver Tabela de Materiais). Agite o tubo em um homogeneizador (consulte a Tabela de Materiais) por 60 s na configuração de velocidade mais alta (5.000 rpm).
    2. Adicione 5 mL de adjuvante de Freund incompleto (IFA) ao tubo e agite novamente por 60 s na velocidade mais alta. Transferir a pasta de M. tuberculosis homogeneizada em IFA (agora denominada CFA) para um tubo novo com uma pipeta, deixando as esferas para trás, e conservar a 4 °C até à utilização.
  2. Adicione água ultrapura ao pó liofilizado do peptídeo MOG35-55 (consulte a Tabela de Materiais) para obter uma concentração final de peptídeo de 10 mg / mL. Esterilizar a solução passando-a através de um filtro de 0,2 μm. Preparar alíquotas de 60 μL e armazenar a -20 °C até o uso.
    nota: O peptídeo MOG35-55 usado para este experimento é de pureza ImmunoGrade (~ 70%), é clivado por TFA, dissolve-se facilmente em água e contém uma amida C-terminal (-NH2) para aumentar a estabilidade in vivo. As alíquotas peptídicas nunca foram descongeladas e recongeladas mais de duas vezes e foram armazenadas a -20 °C até o uso.

2. Preparação de emulsões CFA/peptídicas

  1. Calcule a quantidade de emulsão necessária para a imunização. Neste protocolo padrão, cada camundongo recebe 50 μg do peptídeo MOG35-55 e 300 μg de M. tuberculosis dispersos no adjuvante de Freund (CFA). A quantidade de cada reagente (peptídeo MOG35-55, PBS, CFA e IFA) necessária para preparar as emulsões pode ser calculada usando o Arquivo Suplementar 1. Um adicional de 20% de todos os reagentes, para compensar a pequena perda de emulsão, é incluído no cálculo.
    nota: O kit de emulsão comercial (ver Tabela de Materiais) usado neste estudo compreende um tubo, tampa de rosca e um êmbolo em uma bolsa esterilizada. Cada tubo do kit de emulsão contém no máximo 9,6 mL, possibilitando a preparação de 8 seringas de 1 mL suficientes para imunizar 40 camundongos (ou 80 camundongos se usar 100 μL de emulsão por animal).
  2. Coloque o tubo com tampa de rosca (do kit de emulsão comercial) e os reagentes a serem usados no gelo.
  3. Adicione os componentes da emulsão na seguinte ordem nos volumes calculados na etapa 2.1: PBS, depois o peptídeo, depois M. tuberculosis em CFA e, finalmente, IFA.
  4. Feche o tubo com a tampa firmemente, apertando-o e afrouxando-o várias vezes. Agite o tubo vigorosamente por 5-10 s com a mão para pré-misturar os reagentes.
  5. Coloque o tubo no homogeneizador de agitação e prenda-o com a haste. Defina a velocidade para a configuração mais alta e o tempo para 60 s. Assim que a corrida terminar, coloque o tubo no gelo por 3 min. Repita a execução mais uma ou duas vezes com as mesmas configurações.
  6. Centrifugue o tubo a 300 x g por 1 min para remover o ar preso e compactar a emulsão.
  7. Remova a tampa do tubo, insira o êmbolo no tubo e empurre-o lentamente para baixo até atingir o topo da emulsão. Remova o fecho de encaixe na parte inferior do tubo girando-o.
  8. Remova o êmbolo de uma seringa de injeção (1 mL; consulte a Tabela de Materiais). Adicione uma agulha (de preferência 25-27 G) à seringa para injeção.
  9. Encaixe a extremidade traseira da seringa de injeção na trava dedicada na parte inferior do tubo e trave-a com um pequeno giro.
  10. Transfira a emulsão do tubo para a seringa de injecção, empurrando suavemente o êmbolo. Pare quando a emulsão atingir a graduação de 0,15 mL da seringa de injeção.
  11. Separe a seringa de injeção do tubo e insira o êmbolo com cuidado, tomando cuidado para que nenhum ar entre na seringa. Empurre o êmbolo até que a emulsão saia da agulha.
    nota: Neste ponto, parte da emulsão pode ser usada para controle de qualidade (consulte a etapa 3).
  12. Repita as etapas 2.8-2.11 para o restante da emulsão presente no tubo.
    nota: Para minimizar o desperdício de emulsões caras de CFA/antígeno, devem ser usadas seringas de 1 mL. Outras seringas que se encaixam na trava dedicada na parte inferior do tubo podem ser usadas; no entanto, pode ser necessário preparar um volume maior de emulsão. A emulsão peptídica CFA/MOG35-55 pode ser armazenada a 4 °C por até 15 semanas sem perder sua capacidade indutora de EAE.

3. Controle de qualidade da emulsão

  1. Teste de queda: Adicione uma pequena gota da emulsão em um tubo cônico estéril de 50 mL cheio de 20 mL de água fria. Feche o tubo e agite-o com a mão por alguns segundos. O aparecimento de minúsculas gotículas distintas confirma a formação de uma emulsão de água em óleo.
  2. Examinar a emulsão por microscopia de contraste de fase.
    1. Para analisar o tamanho das partículas de água em óleo, adicione uma pequena gota (2-3 μL) da emulsão a uma lâmina de microscópio, unte-a com uma lamínula e, em seguida, empurre com força em movimentos circulares para achatar a emulsão.
    2. Examine a emulsão manchada sob um microscópio de contraste de fase (consulte a Tabela de Materiais) com ampliação de 400x e concentre-se em um campo com uma monocamada da emulsão. Certifique-se de que pequenas partículas cinzas/brancas uniformes sejam visíveis (Figura 2A).

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Resultados

figure-results-1
Figura 1: Esquema do processo de preparação da emulsão usando um kit de emulsão comercial. Esta figura foi reutilizada de Topping et al com permissão.

figure-results-2
Figura 2: Caracterização de emulsões produzidas por diferentes métodos. (A) Imagens representativas de três métodos de preparação diferentes: método d...

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Divulgações

Não há conflitos de interesse declarados.

Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
1 mL Seringa para injeçãoB. BraunRolamento 9166017V
1 mL Seringa para injeçãoSigma-AldrichZ683531
Tubos vazios de 7 ml com tampasBertin-InstrumentosP000944LYSK0A.0Tubo de 7 mL
Tubo de centrífuga estéril de 50 mLFisher Científico10788561Tubo de 50 mL
Dispersante, óleo mineral leveSigma-AldrichM8410Loja na RT
Kit de emulsãoBertin-InstrumentosD34200.10 eaContendo um tubo, tampa e êmbolo
Adjuvante de Freund incompletoSigma-AldrichF5506Conservar a +4 °C
Mycobacterium tuberculosis, H37RAFisher CientíficoDF3114-33-8Conservar a +4 °C
Homogeneizador Minilys-PersonalBertin-InstrumentosP000673-MLYS0-AHomogeneizador de agitação
Peptídeo MOG 35-55InovaçãoN/A
Montanide ISA 51 VGSéptico36362ZAdjuvante de óleo aprovado pela FDA
Filtros de seringa Pall Acrodisc 0,2 μmFisher Científico17124381Filtro estéril
PBS, livre de Ca2+/Mg2+Thermo Fisher Científico14190144Pbs
Microscópio de contraste de faseOlimpoBX40-B
Contas de aço 3,2 mmFisher CientíficoNC0445832Autoclave e armazenamento na RT

Reimpressões e permissões

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Etiquetas

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