Artigo de método

Isolamento de Micropartículas Derivadas de Linfócitos T Apoptóticos In Vitro

8 de julho de 2025

Neste artigo

Resumo

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Fonte: Yang, C. et al., Geração de micropartículas linfocíticas e detecção de seu efeito pró-apoptótico nas células epiteliais das vias aéreas. J. Vis. Exp. (2015)

Este vídeo demonstra a geração e o isolamento de micropartículas derivadas de linfócitos T, LMPs, a partir de linfócitos T após o tratamento com actinomicina-D.

Protocolo

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1. Produção e Caracterização de LMPs

NOTA: Para evitar contaminação, certifique-se de que todos os materiais usados neste experimento sejam estéreis ou autoclavados. Execute todas as etapas em RT em um gabinete de segurança biológica em condições estéreis, salvo indicação em contrário.

  1. Estimulação e coleta de MPs
    1. Descongelar uma alíquota de 10 milhões de células T CEM em banho-maria a 37 °C. Diluir em 10 ml de meio hematopoiético isento de soro pré-aquecido, como X-VIVO, em tubo estéril de 15 ml e centrifugar a 200 g x 5 min. Aspirar o sobrenadante e ressuspender as células num meio pré-aquecido de 5 ml.
    2. Transferir as células para um balão de cultura de tecidos T75 (para células em suspensão) com 15 ml de meio hematopoiético pré-aquecido, como o X-VIVO, e incubar durante 4 dias numa incubadora humidificada a 37 °C com 5% de CO2.
    3. Após 4 dias, transferir todo o meio de cultura e as células para um balão de cultura de tecidos T175 contendo 100 ml de meio fresco. Continue incubando as células por cerca de 72 horas nas mesmas condições até que tenham crescido até uma densidade de 2 milhões de células / ml.
    4. Dividir uniformemente as células entre quatro frascos T175, cada um contendo 150 ml de meio fresco, e continuar a cultura celular até que as células tenham crescido (cerca de 48 horas de incubação) até uma densidade de 2 milhões/ml.
    5. Coletar células de cada balão por centrifugação a 200 x g durante 5 minutos e ressuspender 300 x 106 células num novo balão T175 contendo 150 ml de meio fresco, para manter a densidade celular de 2 milhões/ml.
    6. Adicionar actinomicina D (dissolvida em DMSO a 2 mg/ml) ao meio a uma concentração final de 0,5 μg/ml e incubar durante 24 horas.
    7. Transferir todo o meio de cultura para tubos cónicos de 50 ml e centrifugar as células a 750 x g durante 5 min. Transferir o sobrenadante para tubos cónicos de 50 ml e centrifugar a 1.500 x g durante 15 min para remover fragmentos de células grandes.
    8. Transferir o sobrenadante para um frasco de 250 ml e ultracentrifugar a 12.000 x g durante 50 min. Eliminar o sobrenadante e recolher os grânulos.
    9. Lave os pellets enriquecidos com LMPs com 40 ml de PBS estéril em um tubo de 50 ml por centrifugação a 12.000 x g por 50 min. Repita esta etapa duas vezes.
    10. Colete o último sobrenadante de lavagem; ele será usado como controle do veículo. Suspenda os pellets LMP em 1 ml de PBS e transfira-os para um microtubo estéril de 1,5 ml. Alíquota e armazene LMPs isolados a -80 °C (para evitar vários ciclos de descongelamento livre).

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Divulgações

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Não há conflitos de interesse declarados.

Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Células T CEMATCCCCL-119
X-VIVO 15 médioCambrex (Walkersville)04-744Q
Frasco T75Sarstedt83.1813.502
Frasco T175Sarstedt83.1812.502
Actinomicina DSigma Chemical Co.A9415-2mg
PbsTecnologias da Vida14190-144
Filtro de 0,22 μmSarstedt83.1826.001
Incubadora de célulasMandelHeracell 150
Centrífuga de baixa velocidadeIecCentra8R
Centrífuga de alta velocidadeBeckmanAvanti J8
Rotor de alta velocidade para garrafa de 250mlBeckmanJLA16.250
Rotor de alta velocidade para tubo de 50mlBeckmanJA30.50

Reimpressões e permissões

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Etiquetas

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