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Artigo de método

Um método para induzir inflamação da superfície ocular em um modelo murino

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8 de julho de 2025

Neste artigo

Resumo

Fonte: Singh, J., et al. Indução de inflamação da superfície ocular e coleta de tecidos envolvidos. J. Vis. Exp. (2022)

Este vídeo demonstra um método para induzir inflamação da superfície ocular e disfunção da glândula meibomiana em um modelo murino. A estimulação do sistema imunológico do camundongo usando um imunógeno e a reestimulação posterior com o mesmo imunógeno promovem a inflamação da superfície ocular, o que causa o entupimento da secreção da glândula meibomiana por meio de aggNETs produzidos por neutrófilos e leva à doença do olho seco.

Protocolo

Todos os procedimentos envolvendo modelos animais foram revisados pelo comitê institucional local de cuidados com animais e pelo conselho de revisão veterinária JoVE.

1. Indução de inflamação da superfície ocular murina

  1. Realize a preparação do imunógeno para imunização.
    1. Preparar o imunógeno na hora no dia da imunização, misturando ovalbumina (OVA, 50 mg/mL) e toxina da coqueluche (100 μg/mL) em soro fisiológico e o adjuvante hidróxido de alumínio (40 mg/mL) (ver Tabela de Materiais) na proporção de 1:1.
      cuidado: Realize a abertura, reconstituição e preparação do imunógeno da toxina da coqueluche em um gabinete de segurança laminar. Use roupas de proteção e evite qualquer contato com a pele.
    2. Incube a mistura de imunógeno e adjuvante em temperatura ambiente por 30 min e carregue 100 μL em uma seringa de 1 mL.
    3. Realize a injeção intraperitoneal da solução de imunógeno em um camundongo não anestesiado.
      1. Segure o mouse suavemente pela cauda enquanto segura a grade da gaiola. Segure firmemente a pele das costas e a região do pescoço entre o polegar e o indicador e fixe a cauda e os membros inferiores entre o dedo anelar e o dedo mínimo contra a palma da mão.
      2. Mantenha o mouse fixo com a cabeça para baixo.
      3. Injete 100 μL da solução de imunógeno preparada no quadrante direito ou esquerdo da cavidade abdominal inferior.
  2. Realize o desafio da superfície ocular 2 semanas após a imunização.
    1. Anestesiar o camundongo com isoflurano (2,5%).
    2. Aplique 5 μL de OVA (50 mg / mL) ou solução salina (NaCl 0,9%) por olho em ambos os olhos e espere até que a gota seja absorvida pelo olho. Isso leva ~ 5 min.
    3. Repita o procedimento 1x ao dia por 7 dias.
      nota: A administração tópica de medicamentos pode ser feita da mesma forma.

2. Coleção de exsudatos oculares

  1. Recupere os exsudatos oculares formados durante a fase de provocação aplicando 50 μL de solução salina estéril no olho imediatamente após o desafio.

3. Excisão de tecidos da superfície ocular

  1. Disseque as pálpebras e o globo ocular seguindo as etapas abaixo.
    1. Eutanasiar o camundongo por asfixia por CO2 e luxação cervical.
    2. Coloque o mouse em uma superfície plana.
    3. Desinfete a área orbital ao redor do olho com um cotonete impregnado com etanol a 70%.
    4. Faça uma incisão entre a orelha e o seio retro-orbital e ao longo da superfície acima do osso escamoso verticalmente, estendendo a incisão horizontalmente abaixo da pálpebra inferior ao longo do osso maxilar e acima da pálpebra superior ao longo do osso frontal. Isso forma uma incisão ao redor do olho (Figura 1).
    5. Segure cuidadosamente o tecido dissecado ao redor do olho usando uma pinça curva e puxe o tecido e o globo ocular para fora.
    6. Coloque os órgãos excisados em PBS estéril.
    7. Apare o excesso de tecido muscular facial ao redor das pálpebras superiores excisadas usando um bisturi e sob o microscópio estereoscópico.
  2. Colete a conjuntiva seguindo os passos abaixo.
    1. Coloque a pálpebra superior em uma placa de Petri seca sob o estereomicroscópio.
    2. Usando uma pinça fina e um bisturi, retire a camada mucosa esbranquiçada com muito cuidado da superfície interna da pálpebra.
  3. Em seguida, disseque a córnea seguindo as etapas abaixo.
    1. Coloque o globo ocular em uma nova placa de Petri seca em cima de gelo seco por 3 min.
    2. Leve a placa de Petri para a superfície da bancada em uma posição estável.
    3. Faça uma pequena incisão na borda da córnea ao lado do limbo usando uma tesoura fina e afiada.
    4. Prolongue a incisão com o bisturi ao redor do globo ocular, separando a esclera da córnea.
    5. Remova os restos da íris e do cristalino da parte de trás da córnea, lavando generosamente com solução salina.

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Resultados

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Figura 1: Excisão do tecido facial ao redor da região orbitária.A trilha de incisão é indicada em vermelho. Isso permite a excisão dos órgãos oculares e a investigação da influência e dos efeitos de várias terapêuticas administradas topicamente em órgãos oculares acessórios, como a conjuntiva e a córnea.

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Divulgações

Não há conflitos de interesse declarados.

Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
1x PBSGibco
Hidróxido de alumínioImject alum adjuvanteNº 7716140 mg/mL
Concentração final: in vivo: 1 mg / 100 μL
Camundongos C57Bl/6, com idade entre 7 e 9 semanasLaboratórios Charles River
Pinça curvaFST by Dumont SUÍÇA5/45 11251-35
Tesoura afiada finaFST Aço inoxidável, Alemanha15001-08
Armário de segurança laminarHerasafe
NaCl 0,9% (solução salina)B.Braun
Ovalbumina (OVA)Endofit, Invivogen9006-59-110 mg/200 μL em solução salina
Toxina da coquelucheThermoFisher ScientificPHZ117450 μg/ 500 μL em solução salina
Concentração final: in vivo: 100 μg/ 100 μL
PetrídishGreiner bio-oneNº 628160
bisturiBisturi descartável de penasNº 21 Concentração final: in vivo: 300 ng/ 100 μL
EstereomicroscópioZaissStemi508
Seringa (lavagem da córnea/íris)BD Microlane27 G x 3/4 - Nr.20 0,4 x 19 mm
Seringa (imunização i.p)BD Microlane24 G1"-Nr 17, 055* 25 mm

Etiquetas

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