É necessária uma assinatura do JoVE para visualizar este conteúdo. Faça login ou inicie seu teste gratuito.

Artigo de método

Uma técnica para purificar anticorpos monoclonais produzidos por células de ovário de hamster chinês

1.2K visualizações

⸱

8 de julho de 2025

Neste artigo

Resumo

Fonte: Velugula-Yellela, S. R., et al. Purificação e análise de um anticorpo monoclonal de células de ovário de hamster chinês usando um sistema de microbiorreator automatizado. J. Vis. Exp. (2019).

Este vídeo demonstra um ensaio para purificar anticorpos monoclonais de fluido de cultura de células colhidas de células ovarianas de hamster chinês. Ele emprega uma resina de vidro porosa com proteína A imobilizada, que se liga à região Fc dos anticorpos na amostra, separando-os efetivamente dos contaminantes. O uso de um tampão de eluição de baixo pH enfraquece a interação, facilitando a recuperação de anticorpos purificados.

Protocolo

1. Purificação de anticorpos

NOTA: O tampão de equilíbrio para o anticorpo interno é 25 mM Tris, 100 mM NaCl, pH 7,5. O tampão de eluição usado é o ácido acético 0,1 M. Os tampões e a resina (proteína A) dependem do anticorpo específico purificado. O volume da coluna é equivalente à altura do leito da resina. A quantidade de fase móvel usada é determinada em termos de volume da coluna.

  1. Inicializando o sistema de purificação
    1. Abra o software conectado ao sistema de purificação. Usando instruções manuais, equilibre a coluna com o tampão de equilíbrio a uma taxa de fluxo de 2 mL / min por 40 min. Pare a corrida manual após o equilíbrio.
    2. No coletor de frações, coloque tubos cônicos de 15 mL para coletar o eluato de anticorpos purificado e tubos cônicos de 50 mL para coletar o fluxo durante a lavagem com alto teor de sal. Certifique-se de que o coletor de frações seja redefinido para a posição inicial, abrindo e fechando o coletor de frações antes do início da execução. O coletor de frações é mantido a 7 °C.
      nota: O coletor de frações pode ser redefinido manualmente na guia Coletor de frações em Configurações, para tubos de 15 mL e 50 mL.
  2. Injeção de amostra
    nota: O fluido de cultura de células colhidas usado nos procedimentos a seguir foi obtido de células de ovário de hamster chinês cultivadas em microbiorreatores automatizados.
    1. Adicione o fluido de cultura de células de colheita filtrado de 0,22 μm a uma seringa vazia de 12 mL cuja extremidade do bico esteja tampada.
    2. Segurando a seringa com o bico voltado para baixo, insira o êmbolo da seringa até que uma pequena parte do êmbolo esteja dentro. Certificando-se de que o fluido não está vazando, gire a seringa com o bico voltado para cima e remova a tampa.
    3. Ainda segurando a seringa com o bico voltado para cima, empurre o cilindro para dissipar o ar até que o fluido de cultura de células esteja na ponta do bico. Insira o bico da seringa na porta de injeção manual do sistema de purificação e gire para apertar.
    4. Empurre o êmbolo para baixo até que toda a amostra seja injetada e fique visível no loop de amostra de grande volume de 10 mL anexado.
    5. Abra o arquivo de método salvo. Salve o arquivo de resultado no local desejado e especifique o nome do arquivo quando solicitado. Execução de ocorrências após a amostra ter sido injetada no loop de amostra de grande volume.
  3. Executando o método de purificação
    1. Selecione o método salvo e clique em executar quando solicitado pelo software do instrumento (passo 1.2.5).
      nota: O sistema está configurado para executar as etapas a seguir. O usuário não precisa fazer nada enquanto o instrumento estiver funcionando.
    2. Equilibre a coluna com três volumes de coluna (CVs) de tampão de equilíbrio a uma taxa de fluxo de 2 mL / min. Uma vez que a coluna esteja equilibrada, o sistema, usando o loop de amostra de grande volume, injetará a amostra na coluna a uma taxa de fluxo de 1 mL / min.
    3. Uma queda no sinal UV a 280 nm indica que a amostra terminou de carregar. Lave a coluna com tampão de equilíbrio a uma taxa de fluxo de 2 mL / min até que o sinal UV caia abaixo de 25 mAU.
    4. Use quatro CVs de Tris 25 mM com NaCl 1 M em pH 7.5 para realizar uma lavagem secundária com alto teor de sal a uma taxa de fluxo de 2 mL / min. O coletor de frações do sistema coletará qualquer proteína/DNA que saia da coluna durante a lavagem do sal em tubos de 50 mL.
    5. Aplique cinco CVs de tampão de eluição a uma taxa de fluxo de 1 mL / min para eluir o anticorpo da coluna. Colete o eluído em tubos de 15 mL com base no sinal UV; quando o sinal UV 280 está acima de 35 mAU, a coleta é iniciada; a coleta termina quando o sinal cai abaixo de 50 mAU; Isso é chamado de corte de pico.
      nota: O corte de pico garante a normalização dos perfis de eluição e evita o rejeito de pico de eluição, que pode conter agregados de proteínas.
    6. Lavar a coluna com três CV de tampão de equilíbrio. A corrida termina após a etapa de lavagem.
    7. Após a eluição, neutralize imediatamente a proteína purificada usando 1 M Tris base a um pH de ~ 5,5. Medir a concentração de proteínas utilizando um espectrofotómetro UV-Vis de microvolume a 280 nm e 260 nm e conservar a 4 °C.

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Divulgações

Não há conflitos de interesse declarados.

Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Linha celular CHO DG44InvitrogenA1100001
Akta Avant 25Ciências da Vida da General Electric28930842
Resina de cromatografia Pro Sep vA UltraMillipore Sigma115115830Fase estacionária de purificação
Coluna Omnifit 10cmDiba Inteligência Fluida006EZ-06-10-AACarcaça para Fase Estacionária
Base TrisFisher CientíficoBP154-1
Superloop 10 mLGE Saúde18-1113-81
Detector de dispersão de luz multiângulo μDawnWyattWUDAWN-01
0,22 μm Millex GV Unidade de Filtro PVDF MembranaMerck MilliporeSLGV033RB
10X solução salina tamponada com fosfatoCorning46-013-CM
Seringa de 12 mLCovidien8881512878
Tubo Falcon de 50 mLCorning Inc.Rolamento 352070
Placa de 96 poçosBio-Rad127737
ácido acéticoSigma-Aldrich695072
Filtros centrífugos Amicon Ultra-4 100 kDaMerck MilliporeUFC810096
Padrão de Aminoácidos, 1 nmol/μLTecnologias AgilentRolamento 5061-3330
Suplemento de AminoácidosTecnologias AgilentRolamento 5062-2478
Solução de formiato de amônio - Análise de glicanosCorporação de Águas186007081
Tampas de rosca azuis com septosTecnologias AgilentRolamento 5182-0717
Cromatografia em água (grau MS)Fisher QuímicaW6-4
ácido clorídricoFisher CientíficoResposta A144-500
Padrão de verificação de massa de mAb intactoCorporação de Águas186006552
Coluna de Aminoácidos Intrada 150 x 2 mmImtaktWAA25
NanoDrop One Microvolume UV-Vis EspectrofotômetroThermo Fisher Científico840274100

Etiquetas

Purificação de Anticorpos MonoclonaisCromatografia de Proteína AColuna de FPLCEluição com pH BaixoLavagem com Alta Concentração de SalRegião Fc do AnticorpoMicrobiorreator AutomatizadoNeutralização com Tris BaseFluido de Cultura Celular