Todos os procedimentos que envolvem coleta de amostras foram realizados de acordo com as diretrizes do IRB do instituto.
1. Produção de glicochips
- Preparação de microarray
- Imprima os glicanos (50 mM) e polissacarídeos (10 μg / mL) em solução salina tamponada com fosfato 300 mM (PBS, pH 8,5) em 6 repetições em lâminas de vidro derivatizadas de N-hidroxisuccinimida, usando um array robótico sem contato (volume de gota ~ 900 pL). Cada slide contém 4 blocos diferentes de sub-arrays (Figura 1A, em cores) repetidos 6 vezes. Cada sub-array é formado por 112 pontos diferentes de glicanos, incluindo controles (8 linhas × 14 colunas) (Figura 1B).
nota: As informações relacionadas ao glicano são fornecidas na Tabela 1. A biblioteca de glicanos usada para imprimir microchips é o resultado de um esforço sintético de longo prazo da equipe do IBCh; Exemplos de síntese são descritos em publicações relacionadas. A biblioteca de glicanos incluía antígenos de grupos sanguíneos e alguns dos oligossacarídeos terminais mais frequentes, bem como motivos centrais de glicoproteínas e glicolipídios ligados a N e O de mamíferos, antígenos de carboidratos associados a tumores e polissacarídeos de bactérias patogênicas.
- Incubar as lâminas numa caixa de humidade (humidade relativa ~70%) à temperatura ambiente (25 °C) durante 1 h.
- Microarrays de bloqueio: incubar as lâminas por 1,5 h com tampão de bloqueio à temperatura ambiente (ácido bórico 100 mM, etanolamina 25 mM, Tween-20 0,2% (v/v) em água ultrapura).
- Lave o glicochip com água ultrapura e seque-o ao ar.
- Controle de qualidade Glycochip
- Analise dois microarrays de cada lote usando solução de 1 mg/mL de preparação de imunoglobulina complexa (CIP, contendo imunoglobulina: IgG, IgM e IgA), solução de 10 μg/mL de imunoglobulinas anti-humanas biotiniladas de cabra como anticorpo secundário (IgM + IgG + IgA), seguido por 1 μg/mL de solução do conjugado de estreptavidina fluorescente correspondente (via protocolo descrito abaixo, consulte a etapa 2).
- Digitalize e analise os glicochips (consulte a etapa 3, análise da matriz de glicanos).
- Use lotes de microarray com correlação intra e inter-chip superior a 0,9.
2. Técnica de Matriz de Glicanos
- Preparar as seguintes soluções aquosas (em água ultrapura) e conservá-las à temperatura ambiente (25 °C):
- Tampão-1: albumina sérica bovina (BSA) a 1% (p/v) em solução salina tamponada com fosfato (PBS), Tween-20 a 1% (v/v) e azida sódica (NaN3) a 0,01% (p/v).
- Tampão-2: 1% (p/v) BSA em PBS, 0,1% (v/v) Tween-20 e 0,01% (p/v) NaN3.
- Tampão-3: 0,1% (v/v) Tween-20 em PBS.
- Tampão-4: 0,001% (v/v) Tween-20 em PBS.
- Glicochip e preparação de amostras
- Coloque a caixa de armazenamento com as lâminas sobre a mesa até que atinjam a temperatura ambiente (25 °C).
nota: Use luvas de látex sem pó. O glicochip deve ser manipulado pela parte inferior da lâmina de vidro, onde está localizado o código de barras. O código de barras ajudará você a identificar o lado direito, evitando o contato com a superfície onde os glicanos são impressos.
- Abra a caixa, pegue o glicochip e coloque-o na câmara de incubação (25 °C), já acondicionado com papel de filtro úmido para manter a umidade constante dentro da câmara.
- Enquanto isso, dilua o soro de camundongos com Tampão-1 (1:20) em tubos de 1,5 mL. Homogeneizar a solução de soro (5 s) com um misturador de vórtice.
nota: O volume necessário para cobrir totalmente uma única superfície de glicochip é de aproximadamente 1 mL.
- Após a homogeneização, incubar o soro diluído a 37 °C por 10 min em banho-maria para evitar a agregação de imunoglobulinas. Centrifugar os tubos durante 3 minutos a 10.000 x g e a 25 °C, recolher o sobrenadante e rejeitar qualquer material precipitado.
- Coloque o glicochip cuidadosamente na câmara de incubação. Incube-o por 15 min a 25 ° C com 1 mL de Tampão-3 para eliminar qualquer material residual na superfície do glicochip.
- Segure o glicochip na posição vertical e lave-o novamente com algumas gotas de Tampão-3 usando uma pipeta de plástico Pasteur. Remova cuidadosamente o tampão da superfície do glicochip usando papel de filtro.
3. Reacção: ligação de anticorpos
- Coloque o glicochip na câmara de incubação. Espalhar a amostra de soro diluído sobre a superfície do glicochip com uma micropipeta. Incubar com agitação orbital (30 rpm) a 37 °C durante 1,5 h. Certifique-se de que toda a área seca da superfície do glicochip seja coberta pela amostra de soro diluído usando a ponta da pipeta.
- Remova qualquer excesso de sample e mergulhe o glicochip por 5 min em Buffer-3 a 25 °C. Em seguida, mova o glicochip para um recipiente com Tampão-4 (5 min) e, finalmente, lave (5 min) o glicochip com água ultrapura. Centrifugue o glicochip por 1 min a 175 x g e 25 °C para remover o líquido.
4. Detecção: anticorpo secundário
- Coloque o glicochip na câmara de incubação. Espalhe sobre a superfície do glicochip uma solução (5 μg/mL) de cabra anti-camundongo (IgG + IgM) conjugada à biotina em Buffer-2. Incubar com agitação orbital (30 rpm) a 37 °C durante 1 h.
- Remova a fração não ligada e repita as etapas de lavagem.
- Após a centrifugação, incubar o glicochip na escuridão a 25 °C durante 45 min (30 rpm) com 2 μg/ml da solução de estreptavidina marcada com fluorocromo correspondente (em Tampão-2).
- Na escuridão, remova a fração não ligada e repita as etapas de lavagem.
- Seque o glicochip ao ar.
nota: O glicochip deve ser escaneado o mais rápido possível. Mas se for impossível fazer a varredura imediatamente após a coloração, os glicochips podem ser armazenados em um local fresco e seco no escuro.
3. Análise da matriz de glicanos
- Verificar a matriz
- Deixe o glicochip sobre a mesa até atingir a temperatura ambiente no escuro. Ao mesmo tempo, ligue o scanner de lâminas e o laser (comprimento de onda de excitação de 633 nm).
- Segurando o microarray, deslize o glicochip no slot até que ele toque a parte de trás.
- Digitalize o glicochip ("execute a verificação fácil") e salve a verificação como um ". TIFF".
Tabela 1: Lista de glicanos, sua ligação aos anticorpos circulantes naturais (IgM + IgG) de camundongos BALB/c (n = 20), expressa em unidades de fluorescência relativa (RFU) como mediana ± MAD, e o número de animais que excedem o ponto de corte (≥4000 RFU). Esta tabela foi reproduzida de Bello-Gil, D. et al. Clique aqui para baixar esta tabela.