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1. Considerações de segurança
- O pessoal deve usar equipamento de proteção individual (EPI).
- Manuseie o patógeno e os macrófagos em um gabinete de segurança biológica Classe II.
2. Preparação de macrófagos
- Cultive uma linhagem celular de macrófagos murinos, RAW 264.7, em um frasco de tecido contendo 10 mL de meio Roswell Park Memorial Institute-1640 (RPMI-1640), suplementado com 20 mg / mL de estreptomicina, 2 mM de L-glutamina, 20 U / mL de penicilina e 10% de soro fetal bovino (FBS).
- Colocar o balão numa incubadora de dióxido de carbono (CO2) a 5% regulada para 37°C até atingir 80% de confluência.
- Raspe suavemente as células usando um raspador de células.
- Transfira as células suspensas para um tubo de centrífuga de 15 mL.
- Use a coloração azul de tripano para determinar a viabilidade celular.
nota: É preferível um escore de viabilidade acima de 85%.
Use um hemocitômetro para ajustar a concentração celular de macrófagos para 1 ×10 5 células / mL usando uma solução de 10 mL de meio RPMI-1640 fresco e estéril. Dispense 100 μL de suspensão de células em poços de uma placa de microtitulação estéril de fundo plano de 96 poços. Incubar a placa durante a noite em uma incubadora de CO5% 2 a 37°C.
nota: O meio gasto durante a noite deve ser aspirado e substituído por 100 μL de meio RPMI-1640 novo e estéril antes do uso.
3. Preparação de células criptocócicas
- Risque o organismo de teste com um laço de inoculação em uma placa de ágar de levedura-malte-extrato (YM) estéril.
- Incubar a placa de ágar-ágar a 30°C durante 48 h.
- Usando uma alça de inoculação, inocule uma alça cheia de células em 100 mL de caldo de base de nitrogênio de levedura (YNB) suplementado com 4% de glicose.
- Cultive as células (pré-cultura) durante a noite enquanto agita a 160 rpm a 30 ° C.
- No dia seguinte, inocular 0,1 mL da pré-cultura em caldo fresco de YNB (cultura principal) e permitir que as células cresçam até a fase exponencial média (sob as mesmas condições de cultivo).
- Lave as células duas vezes com solução tampão fosfato (PBS).
- Usando um hemocitômetro, padronize as células para 1 x 105 em PBS.
4. Coloração de células criptocócicas com a coloração de fagocitose
- Dispense 999 μL das células em um tubo de plástico de 1,5 mL.
- Adicione 1 μL da coloração verde pHrodo zymosan A ao mesmo tubo.
- Incubar as células à temperatura ambiente durante 1 h, no escuro, com agitação lenta para reagir com a mancha.
- No final do período de incubação, lave as células três vezes com PBS.
- Dispensar uma suspensão celular de 100 μL a alvéolos contendo macrófagos semeados.
5. Preparação de medicamentos
- Prepare uma solução de aspirina usando 1 mg de aspirina em 1000 mL de etanol absoluto até uma concentração final de 1000 μg / mL.
- Dilua ainda mais o composto em meio RPMI-1640 para atingir as concentrações desejadas do medicamento.
nota: A quantidade final de etanol no meio RPMI-1640 nunca deve exceder 1%. Prepare uma solução estoque de ibuprofeno usando 1 mg de ibuprofeno em 1000 mL de dimetilsulfóxido (DMSO). Dilua ainda mais o composto em meio RPMI-1640 para atingir as concentrações desejadas do medicamento.
nota: A quantidade final de DMSO em mídia RPMI-1640 nunca deve exceder 1%. Prepare uma solução de 100 μL dos medicamentos preparados em concentrações quádruplas e distribua em poços apropriados contendo macrófagos semeados e células criptocócicas.
6. O efeito dos agentes quimio-sensibilizantes na fagocitose de macrófagos
- Incube as placas com células co-cultivadas na presença de agentes quimiossensibilizantes, aspirina ou ibuprofeno em uma incubadora de CO2 a 5% a 37 ° C por 2 h ou 6 h.
- Ao final do período de incubação, medir a fluorescência induzida (ex: 492 nm e em: 538 nm).
nota: A coloração de pHrodo só fluoresce em ambientes ácidos, como dentro do fagossomo.