Todos os procedimentos que envolvem coleta de amostras foram realizados de acordo com as diretrizes do IRB do instituto.
1. Revestimento de placas
- Cubra uma microplaca de 96 poços com poli-L-lisina (1 mg / mL, diluído em tampão borato 0,1 M [pH: 8,5]; 100 μL / poço) e incube durante a noite a 37 ° C.
nota: Cubra apenas os poços que precisam ser usados. Nos experimentos realizados aqui, os 60 poços médios são usados. O tampão borato é preparado misturando ácido bórico 50 mM e borato 12 mM em água esterilizada.
- Lave a placa duas vezes com água esterilizada (250 μL/poço).
- Lave a placa uma vez com meio de cultura fresco sem suplementos (250 μL / poço).
- Seque o prato em uma bancada limpa por 20 min.
- Embrulhe o prato com papel alumínio e mantenha-o a 4 °C até o uso (válido por 1 mês).
2. Semeadura de células
- Adicionar 50 μL/alvéolo do meio de cultura à placa revestida e mantê-lo numa incubadora a 37 °C, 5% CO2 durante 30 min a 1 h. Encher os alvéolos periféricos com água esterilizada (200 μL/alvéolo).
nota: O meio de cultura é preparado adicionando 50x B-27, 400x Glutamax e 100 U/mL de penicilina/estreptomicina ao meio neurobasal (consulte a Tabela de Materiais para obter detalhes).
- Remova o neurônio criovial do tanque de nitrogênio líquido. Os neurônios usados aqui eram neurônios criopreservados com dimetilsulfóxido (DMSO-criopreservados).
- Mergulhe o criogênico em um bloco de calor a 37 ° C por até 3 min e descongele parcialmente o conteúdo. Não aqueça o criogenio por muito tempo. Transfira o conteúdo para um tubo de 50 mL assim que for descongelado.
- Transfira lentamente o conteúdo criovial do neurônio para um tubo estéril de 50 mL gota a gota (50 μL / s) usando uma pipeta de 1 mL com uma ponta de poro largo.
- Enxágue o criogenial vazio com 1 mL do meio de cultura (temperatura ambiente; RT). Transfira este 1 ml do meio de cultura do gota a gota criovícola (50 μL/s) para o tubo de 50 ml que contém a suspensão celular.
- Adicionar 9 ml do meio de cultura (RT) ao tubo de 50 ml gota a gota (0,5 ml/s) e completar o volume para 11 ml. Não repita a pipetagem, mas misture a suspensão celular lentamente.
- Conte o número de células (use um contador de células ou um hemocitômetro).
- Transfira toda a suspensão celular para um reservatório e dispense a suspensão celular para a placa de 96 poços usando uma pipeta multicanal com pontas de poros largos (1,0 x 104 células/poço). Para reduzir a evaporação do meio de cultura, encha os poços periféricos com água esterilizada (etapa 2.1).
nota: Este estudo confirma que a evaporação do meio de cultura é pequena para uma cultura de 3 semanas sem troca de meio. A taxa de redução do meio é de 3,6% (n = 120 poços). Assim, a mudança de osmolalidade não será drástica durante o período de incubação de 3 semanas.
- Incubar os neurônios por 1-2 h em uma incubadora de CO2 a 37 °C, 5%.
- Substitua o meio de cultura por 100 μL de meio de cultura pré-aquecido (37 °C) por alvéolo e coloque-o de volta em uma incubadora de CO2 a 37 °C e 5% (nenhuma troca de meio é necessária durante a cultura).