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Artigo de método

Gerando uma fatia de cérebro coronal expondo as regiões da amígdala de um cérebro de camundongo

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8 de julho de 2025

Neste artigo

Resumo

Fonte: Bosch, D., et al. Ex Vivo Dissecção Optogenética de Circuitos de Medo em Fatias de Cérebro. J. Vis. Exp. (2016).

Este vídeo demonstra a preparação de finas fatias de cérebro coronal de um cérebro murino, expondo as regiões da amígdala ricas em conexões sinápticas do córtex pré-frontal medial. As fatias são então recuperadas em líquido cefalorraquidiano artificial oxigenado para manter a viabilidade neuronal.

Protocolo

1. Preparação de cortes agudos

  1. Preparar ACSF, solução cortante, ferramentas (tesoura, bisturi, fórceps, espátula, pipeta Pasteur) e blocos de ágar.
    NOTA: 1 L de líquido cefalorraquidiano artificial (ACSF) é necessário por experimento. Conforme publicado anteriormente, o ACSF é preparado dissolvendo produtos químicos em H2O duplamente destilado. A solução de corte é preparada suplementando 200 ml de ACSF com 0,87 ml de solução-mãe de MgSO4 2 M.
  2. Oxigenar ACSF e solução de corte durante todo o experimento com 95% de O2 e 5% de CO2.
  3. Anestesiar profundamente o camundongo usando uma máquina de anestesia para pequenos animais, usando isoflurano (oxigênio a 3%). Verifique a profundidade da anestesia usando o reflexo de retirada do membro antes de continuar.
  4. Decapite o rato usando uma tesoura grande e resfrie imediatamente a cabeça em uma solução de corte gelada.
  5. Abra o crânio por uma única incisão na linha média de caudal a rostral e empurre suavemente pedaços do crânio para os lados usando uma pinça. Remova rapidamente o cérebro levantando-o suavemente para fora do crânio usando uma pequena espátula arredondada. Corte o cerebelo com bisturi. Coloque o cérebro em uma solução de corte gelada.
  6. Para locais de injeção de mPFC, use um bisturi para cortar a parte anterior do cérebro (contendo mPFC) e coloque-o em uma solução de corte gelada até fatiar.
  7. Remova o excesso de solução de corte com papel de filtro e cole a parte posterior do cérebro no vibratomo stage.
  8. Para fatias de amígdala coronal, locais de injeção de MGm / PIN e locais de injeção de mPFC, cole o cérebro diretamente no palco (Figura 1D, esquerda e direita). Coloque um bloco de ágar adicional atrás do cérebro para estabilidade durante o corte.
  9. Colocar a platina numa câmara de corte com uma solução de corte oxigenada gelada mantida a 4 °C utilizando uma unidade de arrefecimento. Usando uma lâmina de safira, prepare fatias coronais da amígdala. Colocar as fatias numa câmara de interface alimentada com ACSF oxigenado em RT.

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Resultados

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Figura 1. Injeções estereotáxicas, preparação de fatias cerebrais agudas e visualização de fibras pré-sinápticas. (A, B) Injeção de vírus estereotáxica. A) Imagem de um camundongo anestesiado colocado em uma estrutura estereotáxica com o crânio exposto e a pipeta de injeção. Inserção: Amplie a imagem da pipeta de injeção cheia de solução de vírus misturada com verde rápido. Barra de ...

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Divulgações

Não há conflitos de interesse declarados.

Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Líquido cefalorraquidiano artificial (ACSF)Para composição, consulte as referências # 16 e # 23
Soluções de patch internoPara composição, consulte as referências # 16 e # 23
Fatiador, Microm HM650VFisher Scientific, AlemanhaRolamento 920120
Unidade de resfriamento para fatiador de tecidos, CU65Fisher Scientific, AlemanhaRolamento 770180
Lâmina de safiraFacas de diamante Delaware
Estereoscópio, SZX2-RFA16Olympus, Japão

Etiquetas

Corte com VibratomoEstabilização em Bloco de ÁgarCâmara de InterfaceACSF OxigenadoViabilidade NeuronalRemoção do CerebeloCórtex Pré-frontal Medial