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Todos os procedimentos que envolvem amostras de animais foram revisados e aprovados pela revisão ética animal apropriada.
1. Soluções para Cirurgia e Gravação Experimental
- Prepare um tampão normal de líquido cefalorraquidiano artificial (aCSF) contendo (mM) NaCl (cloreto de sódio) 124, KCl (cloreto de potássio) 3,75, KH2PO4 (di-hidrogenofosfato de potássio) 1,25, MgSO4 (sulfato de magnésio) 2, NaHCO3 (bicarbonato de sódio) 26, Dextrose 10 e CaCl2 (cloreto de cálcio) 2. Use este aCSF normal para a recuperação do tecido após a dissecção e para o sistema de lavagem no início do experimento.
- Prepare a sacarose aCSF que é usada durante a dissecção do hipocampo e contém (mM): Sacarose 220, KCl 2,95, NaH2PO4 (dihidrogenofosfato de sódio) 1,3, MgSO4 2, NaHCO3 26, Dextrose 10 e CaCl2 2. Para induzir a atividade epileptiforme na preparação do tecido hipocampal intacto, adicione 4-aminopiridina (4-AP) ao aCSF normal na concentração de 100 μM.
2. Colocando o hipocampo desdobrado no conjunto de microeletrodos penetrantes (PMEA) para registrar a atividade neural
- Para preparar a configuração experimental, encha um frasco com aCSF normal e outro frasco com 4-AP aCSF. Em ambas as garrafas, borbulhar 95% O2/ 5% CO2 desde o início de cada experimento. Use um conector de três válvulas para controlar qual solução será selecionada durante um experimento. Conecte um tubo de vácuo na saída da câmara para bombear a solução para um recipiente de pó. Aquecer a tubagem antes de a entregar na câmara de registo e manter a solução a um nível de temperatura controlado (35 °C).
- Quando a entrada e a saída da câmara de gravação estiverem fechadas, use um conta-gotas de pipeta de vidro feito sob medida para transferir e colocar o hipocampo desdobrado na câmara. Sob o microscópio, posicione o hipocampo desdobrado usando um pincel pequeno comum enquanto o tecido está flutuando na solução. Coloque o hipocampo desdobrado com o lado alveus voltado para baixo, a área CA3 apontando para longe e o campo CA1 apontando para o pesquisador.
- Sugue cuidadosamente a solução na câmara usando uma pipeta a vácuo da borda da câmara de registro para diminuir o nível da solução até que a câmara esteja seca e o tecido seja baixado para a matriz. Em seguida, coloque cuidadosamente uma âncora de tecido feita sob medida (Figura 1) (nº 7 em Materiais e Equipamentos Específicos) em cima do tecido para segurar o hipocampo desdobrado na matriz. Coloque algumas gotas de solução na câmara de registro para reabastecê-la e abra gradualmente a entrada e a saída para ajustar a taxa de fluxo para cerca de duas gotas por segundo na câmara de gotejamento IV.
- Incube o tecido na câmara de registro com aCSF normal por cerca de 1 min para se recuperar, depois mude o suprimento de solução para aCSF dissolvido 4-AP e ajuste a taxa de fluxo corretamente. Incube o tecido em 4-AP dissolvido aCSF por cerca de 5 a 10 minutos e, em seguida, o pesquisador pode iniciar o software para registrar o sinal quando a atividade espontânea aparecer.