É necessária uma assinatura do JoVE para visualizar este conteúdo. Faça login ou inicie seu teste gratuito.

Artigo de método

A contração da artéria mesentérica e Estudos Relaxamento Usando Miografia Fio Automated

28.9K visualizações

DOI:

10.3791/3119

22 de setembro de 2011

Neste artigo

Resumo

Um método automatizado para medições Miografia vigor em artérias mesentéricas isoladas é descrito. Ele emprega um Mulvany-Halpern Auto Myograph fio duplo 510A para determinar as respostas à fenilefrina e cálcio extracelular. O método permite a determinação consistente de respostas isométrica aos agonistas em pequenos vasos de diâmetros de 60 - 300 mm, de forma independente.

Resumo

Vasos de resistência proximal, tais como as artérias mesentéricas, contribuem substancialmente para a resistência periférica. Esses pequenos vasos entre 100-400 mM em função de diâmetro principalmente no direcionamento do fluxo de sangue para vários órgãos de acordo com os requisitos gerais do corpo. A artéria mesentérica de ratos tem um diâmetro superior a 100 mm. A técnica Miografia, primeiramente descrita por Mulvay e Halpern 1, foi baseada no método proposto por Bevan e Osher 2. A técnica fornece informações sobre navios de pequeno porte em condições isométricas, onde o encurtamento substancial da preparação muscular é impedida. Desde produção de força e sensibilidade de navios para diferentes agonistas é dependente da extensão do trecho, de acordo com a relação tensão-comprimento ativo, é essencial a realização de estudos de contração isométrica em condições para impedir o cumprimento dos fios de montagem. Fios de aço inoxidável são preferíveis aos fios de tungstênio por causa da oxidação deste último, que afeta as respostas registradas 3. A técnica permite a comparação de agonista-induzida contrações dos vasos montados para obter provas para a função normal de receptores vascular das células musculares lisas.

Temos demonstrado em vários estudos que artérias mesentéricas isoladas que são contratados com phenylyephrine relaxar com a adição de concentrações cumulativas de cálcio extracelular (Ca 2 + e). As descobertas levaram-nos a concluir que os nervos sensoriais perivascular, que expressam a proteína G acoplada Ca 2 + receptor-sensing (CaR), mediar esta resposta vasorelaxamento. Utilizando um método automatizado Miografia fio, mostramos aqui que artérias mesentéricas de Wistar, Dahl sensíveis ao sal (DS) e Dahl sal-resistentes (DR) ratos respondem diferentemente ao Ca 2 + e. Tecidos de ratos Wistar mostrou Ca 2 + maior sensibilidade em comparação com os de DR e DS. CaR expressão reduzida em artérias mesentéricas de ratos DS correlaciona-se com Ca 2 + reduzida de relaxamento e-induzida de isoladas, pré-contraídos artérias. Os dados sugerem que o carro é necessário para o relaxamento das artérias mesentérica sob tônus ​​adrenérgico aumentado, como ocorre na hipertensão, e indicar um defeito inerente na via de sinalização CaR em animais Dahl, que é muito mais grave no DS.

O método é útil para determinar a reatividade vascular ex vivo nas artérias mesentéricas de resistência e similares pequenos vasos sanguíneos e comparações entre diferentes agonistas e / ou antagonistas podem ser facilmente e constantemente avaliada lado a lado 6,7,8.

Protocolo

1. Isolamento da artéria mesentérica de ratos pequenos

  1. Anestesiar animais com isoflurano em uma câmara fechada e limpe o abdômen com álcool.
  2. Realizar uma laparotomia na linha média para expor cama mesentérica.
  3. Com uma tesoura, retire cerca de 85 cm de intestino com a alimentação vasculatura com a artéria mesentérica superior. Corte a extremidade proximal da seção intestinal perto do piloro e da extremidade distal perto da junção íleo-coecal. Segmentos do intestino são isolados de ratos que estão profundamente anestesiados com isoflurano e submetidos à eutanásia por open-peito punção cardíaca.
  4. Colocado seção extirpado numa placa de Petri revestidas contendo PSS e realizar a dissecção da artéria mesentérica em temperatura ambiente.
  5. Pino para baixo a extremidade proximal do intestino no lado direito e pinos para fora o restante da direção intestineina sentido anti-horário (final ieproximal sobre a vasculatura alimentação deixou do outro lado do intestino).
  6. Dissecar o ramo II e III segmentos juntos com um pedaço do segmento proximal.
  7. Dissecar a veia e isolar a artéria (com V-shaped ponto de ramificação) e limpá-la através da remoção do tecido adiposo e conjuntivo. Evitar o contato direto com a artéria puxando delicadamente com uma pinça e corte através da membrana do tecido conjuntivo.

2. Montagem do navio

  1. Corte dois pequenos segmentos (≈ 4 cm) de um 40 mM de tungstênio sem fio de aço inoxidável e, com uma pinça fina, insira um para o lúmen de cada artéria tomando cuidado para não danificar o endotélio. Use a ponta do fio para abrir a luz, se necessário. Sangue escorrendo para fora da embarcação é um bom sinal o lúmen é aberto.
  2. Encha a câmara myograph com solução salina fisiológica (PSS; mM: 115 NaCl, 4,7 KCl, 1,4 MgSO 4 .7 H 2 O, 5 NaHCO 3, 1,2 K 2 HPO 4, 1,1 Na 2 HPO 4, 1,0 CaCl 2, 20 e HEPES 5 de glicose, pH 7,4) com ácido ascórbico (100 mM) a 37 ° C e usando fórceps transferir cuidadosamente o segmento de rosca navio da placa de Petri na câmara à temperatura ambiente e transferir o segmento navio excisadas proximal para a câmara de myograph e puxe a final ao longo do fio para alimentá-lo dentro do vaso. Evitar esticar o navio.
  3. Garantir o fim próximo do fio de sentido anti-horário sob o parafuso de fixação perto na mandíbula do lado direito ligado ao micrômetro. Pegar a extremidade livre do fio com uma pinça e prenda-o no sentido horário sob o parafuso de fixação muito na mandíbula do lado direito. Certifique-se que o segmento de navios ao longo do fio está situado no intervalo entre as mandíbulas sem fazer qualquer contato com a própria mandíbula.
  4. Parafuso as mandíbulas separadas, e alinhar o segundo fio paralelo com o navio e inseri-lo na extremidade da luz. Suavemente alimentar o fio através do lúmen do segmento de navio em um movimento usando o fio já está montado como um guia. Segure o fio cerca de 1 cm do navio para evitar esticar-la durante a manobra e evite tocar o endotélio.
  5. Parafuso as mandíbulas juntas e garantir que o segundo move fio debaixo de montagem o primeiro garantido na mandíbula do lado direito.
  6. Garantir o fim próximo do segundo fio no sentido horário sob o parafuso de fixação perto da mandíbula do lado esquerdo ligado ao transdutor.
  7. Assegurar a extremidade do fio sob o parafuso de fixação na mandíbula do lado esquerdo e aperte para esticar o fio.
  8. Uma vez que a montagem está completa, reinicie o motor no "Menu de montagem" e começar a normalização do navio.

3. Normalização

O Auto Myograph fio duplo System-510A tem uma função de normalização automatizado, que é avaliada a partir da "normalização" no menu e permite que o navio a ser esticado a uma circunferência normalizado interna por um procedimento padronizado de acordo com o protocolo do fabricante, após equilíbrio por 30 min a 37 ° C. Uma curva exponencial é então ajustada aos dados de pressão interna circunferência. O procedimento define o diâmetro do lúmen (d 100) que a artéria teria in vivo quando relaxado e sob uma pressão transmural de 100 mmHg 1 Os parâmetros de normalização para artéria mesentérica de ratos são as seguintes.:

  1. Pressão transmural alvo = 13,3 kPa (100 mm Hg).
  2. Tempo = 60 seg; Duração de cada uma das etapas de normalização.
  3. IC 1 / IC 100 = 0,9 (IC 1 = circunferência normalizado interna, IC 100 = circunferência interna correspondente à pressão alvo.
  4. Calibração ocular 2 * Δ (mm / ocular divisão); 2 delta é por razões de programação.

Meça o comprimento da artéria mesentérica montado usando o microscópio de olho peça leituras quando os fios são mais as extremidades longe e de perto do navio montado segment. Resumidamente, o comprimento do segmento de navio montada é medida a ampliação máxima com uma ocular calibrada olho peças no microscópio de dissecação. A leitura do olho peças com cabelo-line sobre a extremidade do segmento (a 1) e perto do final do segmento (a 2) nas divisões ocular são medidos e registados. Estes valores, com as leituras micrômetro, antes e após o alongamento da embarcação são registrados e entrou em menus para o programa para calcular a curva ajustada eo diâmetro interno correspondente à uma meta de pressão transmural de 100 mm Hg

Em nossos estudos, as artérias foram criados para o diâmetro do lúmen do d 1 = 0,9 xd 100, onde o desenvolvimento força ativa é máxima. Desenvolvimento da força ativa de ≥ 10 mN em artérias mesentéricas de ratos é considerada ideal para experimentos para prosseguir. Tecidos com menor força ativa foram descartados.

4. Medição de respostas

Após a normalização, as propriedades mecânicas e funcionais dos vasos são re-ativado por realizar uma "start-padrão", que envolve vasos desafiador, com aplicações repetidas (normalmente 2 ou 3) de 5 mM de fenilefrina (PE) para obter contrações reprodutível. A "start padrão" típico em nosso laboratório consiste de uma série de estímulos e os períodos de washout da seguinte forma:

  1. Substituir câmara myograph cobrir e começar a aeração com ar de 95% e 5% CO 2.
  2. Encher a câmara com PSS fresco (ácido ascórbico, contendo 100 mM)
  3. Navio contrato com 5 mM PE por 5 min e lavar 4 vezes com tampão de PSS.
  4. Após a última lavagem, recarga com câmara de PSS e esperar 3 min antes de repetir os passos (ii) e (iii).

Após o início padrão, a artéria está pronto para o experimento. Relaxamento dos vasos contratados são avaliados pela adição cumulativa de concentrações crescentes de CaCl 2 (0,5-4 mM). Embarcações, quando os inibidores são usados ​​são pré-incubadas com os compostos na câmara myograph por 20 min e presente durante os ensaios.

5. Análise de Dados

A "normalização" dos dados para os navios e os traçados força, diretamente convertido em dados de texto, foram analisadas com o programa de 11,0 SigmaPlot gráficos (Systat Software, Point Richmond, CA) e plotados como mostrado na Figura 1. Concentração-resposta de dados, calculados a partir dos traçados, foram analisados ​​através da determinação EC 50 valores a partir de dados experimentais instalados em uma função logística quatro parâmetros no menu de Farmacologia do programa. Comparações entre grupos e dentro dos grupos foram realizadas por uma análise de variância (ANOVA) e as diferenças com 0,05 p

6. Resultados representativos:

Parâmetros Wistar Dahl sensíveis ao sal Dahl sal-resistente
L 100 (mm) 83,26 ± 2,33 91,52 ± 4,67 117,45 ± 8,43 *
X 1 604,21 ± 41,97 752,24 ± 85,25 745,84 ± 110,09
r 2 0,99 ± 0,003 0,97 ± 0,008 0,97 ± 0,007

* A diferença entre os valores para L 100 Wistar e DR são estatisticamente significativas. Shapiro-Wilk teste de normalidade passado (p = 0,588), Teste de Igualdade de Variância passado (p = 0,237).

L 100 = diâmetro interno do segmento montado correspondente à pressão transmural alvo.

X 1 = A configuração do posicionador micro necessário para esticar o navio montado em sua circunferência interna normalizado (ou seja, o valor da leitura micrômetro em que os experimentos foram realizados).

r 2 = coeficiente de regressão para ajuste de (X i, Y i) para uma curva exponencial.

NB: O procedimento detalhado está descrito no manual para o Sistema Myograph 510A 6.

Tabela 1. Sample Leia-Out dos parâmetros de normalização para os segmentos de artéria mesentérica Wistar, DS e DR de programa básico mostrado no "Menu normalização". Os valores são médias (± SEM) de 5 animais. * As diferenças entre os valores para L 100 Wistar e DS são estatisticamente significativas (p <0,05).

Wistar DS DR
14,2 ± 0,6 20,9 ± 1,3 *

Tabela 2. Tensões Desenvolvidos (mN) em artérias mesentéricas isoladas de Wistar, DS e ratos DR, na sequência de pedidos de 5 mM PE para cada navio. Valores reportados são meios (± SEM) de 6-8 animais. * Significativamente diferente do Wistar controles (p <0,05).

Figura 1
Figura 1. Ca 2 + e relaxamento induzido de uma artéria mesentérica PE-contratados a partir de um rato Wistar montado em um myograph fio em solução salina fisiológica contendo 1 mM Ca 2 +. A artéria foi equilibrada por 30 min a 37 ° C com aeração constante e respostas para Ca 2 + e determinado. Uma força representativa de rastreamento em adição de 5 mM PE seguido por adições acumulada de Ca 2 + é mostrada.

Figura 2
Figura 2. Ca 2 + e relaxamento induzido de uma artéria mesentérica PE-contratados a partir de um rato DS montado em um myograph fio em solução salina fisiológica contendo 1 mM Ca 2 +. A artéria foi equilibrada por 30 min a 37 ° C com aeração constante e respostas para Ca 2 + e determinado. Uma força representativa de rastreamento em adição de 5 mM PE seguido por adições acumulada de Ca 2 + é mostrada. Ca 2 + relaxamento foi severamente comprometida neste tecido em comparação com aqueles de ratos Wistar e DR.

Figura 3
Figura 3. Ca 2 + e relaxamento induzido de uma artéria mesentérica PE-contratados a partir de um rato DR montado em um myograph fio em solução salina fisiológica contendo 1 mM Ca 2 +. A artéria foi equilibrada por 30 min a 37 ° C com aeração constante e respostas para Ca 2 + e determined.A força representativa de rastreamento em adição de 5 mM PE seguido por adições acumulada de Ca 2 + é mostrada.

Figura 4
Figura 4. A. [Ca 2 +] e-resposta curvas. B. O gráfico de barras mostrando EC 50 valores para o relaxamento determinado pelo ajuste dos dados para um quatro expressão curve.C.CaR parâmetro logística em arcadas mesentéricas isoladas de ratos DR e DS.

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Discussão

A hipertensão é uma das principais causas de morbidade cardiovascular, renal e cerebral / mortalidade. A ocorrência de hipertensão é alta na população e hipertensão sal-sensível é particularmente elevada na população idosa, e mais prevalente em negros do que brancos. Este é acreditado para ser devido à tendência dos negros para reter sódio em seus rins 9. Sal-sensibilidade é um fator importante que contribui para a doença renal e está associada à disfunção endotelial, mas o mecanismo não é totalmente compreen...

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Divulgações

Não há conflitos de interesse declarados.

Agradecimentos

O projeto descrito foi apoiada por números Award HL064761 R01, R25 HL059868, 1SC1 HL099139 e P20 MD000175 forma National Institutes of Health. O conteúdo é da exclusiva responsabilidade dos autores e não representam, necessariamente, a posição oficial do National Institutes of Health.

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Nome de equipamentos / reagentes Companhia Número de catálogo Comentários (opcional)
Auto Myograph fio duplo System-510A DMT-EUA, Inc. Atlanta, GA. 100151
PowerLab/4SP Sistema de Aquisição de Dados ADInstruments, Colorado Springs, CO ML750 Novos modelos com 4-16 canais de entrada estão disponíveis.
Dell Dimension XPS Gen 4 Computador Dell
Stemi SV II (Apo) microscópio de dissecção com Ocular Carl Zeiss International.
Wistar, Dahl sensíveis ao sal, Dahl sal-resistentes ratos Harlan Sprague Dawley, Indianapolis, IN.
Para roedores Harland Tekland, Madison, WI.
Fenilefrina Sigma-Aldrich, St. Louis, MO.
Outros produtos químicos Todos os produtos químicos utilizados foram da mais pura notas disponíveis comercialmente.

Referências

  1. Mulvany, M. J., Halpern, W. Mechanical properties of vascular smooth muscle cells in situ. Nature. 260, 617-619 (1976).
  2. Bevan, J. A., Osher, J. V. A direct method for recording tension changes in the wall of small blood vessels in vitro. Agents Actions. 2, 257-260 (1972).
  3. Mulvany, M. J. Procedures for investigating of small vessels using small vessel myograph. DMT Danish Myo Technology. , (2004).
  4. Angus, J. A., Wright, C. E. Techniques to study the pharmacodynamics of isolated large and small blood vessels. J. Pharmacol. Toxicol. Methods. 44, 395-407 (2000).
  5. Halpern, W., Mulvany, M. J., Warshaw, D. M. Mechanical properties of smooth muscle cells in the walls of arterial resistance vessels. J. Physiol. 275, 85-101 (1978).
  6. Lindhorst, J., Alexander, N., Blignaut, J., Rayner, B. Differences in hypertension between blacks and whites: an overview. Cardiovasc. J. Afr. 18, 241-247 (2007).
  7. Eley, S. L., Allen, C. M., Williams, C. L., Bukosi, R. D., Pointer, M. A. Action of thiazide on renal interstitial calcium. Am. J. Hypertens. 21, 814-819 (2008).
  8. Palmer, C. E., Rudd, M. A., Bujoski, R. D. Renal interstitial Ca2+ during sodium loading of normotensive and Dal-salt hypertensive rats. Am. J. Hypertens. 16, 771-776 (2003).
  9. Hurwitz, S. Homeostatic control of plasma calcium concentration. Crit. Rev. Biochem. Mol. Biol. 31, 41-100 (1996).
  10. Brown, E. M., MacLeod, R. J. Extracellular sensing and extracellular calcium signaling. Physiol. Rev. 81, 239-297 (2001).
  11. Breitwieser, G. E. Extracellular calcium as an integrator of tissue function. Int. J. Biochem. Cell Biol. 40, 1467-1480 (2008).
  12. Mupanomunda, M. M., Wang, Y., Bukoski, R. D. Effect of chronic sensory denervation on Ca2+-induced relaxation of isolated mesenteric resistance arteries. Am. J. Physiol. 274, 1655-1661 (1998).
  13. Mupanomunda, M. M., Ishioka, N., Bukoski, R. D. Interstitial Ca2+ undergoes dynamic changes sufficient to stimulate nerve-dependent Ca2+-induced relaxation. Am. J. Physiol. 276, 1035-1042 (1999).
  14. Mupanomunda, M. M., Tian, B., Ishioka, N., Bukoski, R. D. Renal interstitial Ca2+. Am. J. Physiol. Renal Physiol. 278, F644-F649 (2000).
  15. Awumey, E. M., Hill, S. K., Diz, D. I., Bukoski, R. D. Cytochrome P-450 metabolites of 2-arachidonoylglycerol play a role in Ca2+-induced relaxation of rat mesenteric arteries. Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 294, 2363-2370 (2008).
  16. Chen, W., Bergsman, J. B., Wang, X., Gilkey, G., Pierpoint, C. R., Daniel, E. A., Awumey, E. M., Dauban, P., Dodd, R. H., Ruat, M., Smith, S. M. Presynaptic external calcium signaling involves the calcium-sensing receptor in neocortical nerve terminals. PloS One. 5, e8563-e8563 (2010).
  17. Bukoski, R. D. The perivascular sensory nerve Ca2+ receptor and blood pressure regulation: a hypothesis. Am. J. Hypertens. 11, 1117-1123 (1998).
  18. Bukoski, R. D. Dietary Ca2+ and blood pressure: evidence that Ca2+-sensing receptor activated sensory nerve dilator activity couples changes in interstitial Ca2+ with vascular. 16, 218-221 (2001).

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Reimpressões e permissões

Etiquetas

Reatividade VascularSensibilidade ao CálcioContração por FenilefrinaCálcio ExtracelularMiografia AutomatizadaArtérias de ResistênciaCondições IsométricasCurva de Resposta ao Cálcio