Artigo de método

Medindo potenciais de ação muscular compostos em músculos de membros anteriores de camundongos in vivo

8 de julho de 2025

Neste artigo

Resumo

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Fonte: Pollari, E. et al., Medição eletrofisiológica in vivo do potencial de ação muscular composto dos membros anteriores em modelos de camundongos de degeneração do neurônio motor.J. Vis. Exp. (2018).

Este vídeo demonstra uma técnica in vivo para medir o potencial de ação muscular composto (CMAP) em camundongos. Ele descreve as etapas para configurar eletrodos, estimular os neurônios dos membros anteriores que inervam as fibras musculares e registrar as respostas musculares. A técnica avalia a desmielinização neuronal e a perda funcional de neurônios.

Protocolo

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Todos os procedimentos envolvendo modelos animais foram revisados pelo comitê institucional local de cuidados com animais e pelo conselho de revisão veterinária JoVE.

1. Preparação e Anestesia Animal

  1. Induza a anestesia no camundongo com inalação de isoflurano / oxigênio. Use 4% de isoflurano para a indução da anestesia e 2-3% para a manutenção do fluxo de oxigênio de 2,5 L/min. Ajuste a porcentagem de isoflurano para a manutenção da anestesia de acordo com a condição do camundongo, ou seja, camundongos pequenos e fracos requerem menos anestésicos. Confirme a anestesia adequada, por exemplo, aplicando uma leve pressão na almofada de caminhada dos membros posteriores para verificar a ausência de um reflexo de retirada da dor.
  2. Controle a temperatura corporal do mouse usando uma placa de aquecimento termostático a 37 °C para evitar a diminuição da temperatura corporal durante a anestesia.
  3. Encaixe o mouse com o nariz para manutenção da anestesia. Certifique-se de que o animal tenha oxigênio suficiente, verificando se o nariz não bloqueia as vias aéreas e se o animal está respirando de forma constante.
  4. Durante a gravação, monitore se o mouse está suficientemente anestesiado, observando a frequência respiratória (aproximadamente 1 Hz na anestesia) e a ausência de reflexo de retirada com pressão leve. Aumente a concentração de isoflurano manualmente se a anestesia não for profunda o suficiente.
  5. Após as medições, deixe o mouse se recuperar na placa de aquecimento ou no calor de uma lâmpada infravermelha até que tenha recuperado a consciência suficiente para manter a decúbito esternal, por aproximadamente 2-5 min. Não deixe o rato sozinho e na companhia de outros ratinhos até que tenha recuperado totalmente da anestesia.

2. Medição de CMAP em membros torácicos

  1. Use os eletrodos de agulha de 27 G para medições CMAP do membro anterior. Consulte a Figura 1 para obter os locais recomendados de posicionamento do eletrodo.
  2. Coloque eletrodos nos membros anteriores da seguinte maneira.
    1. Posicione o mouse na almofada de aquecimento em decúbito dorsal e use fita adesiva para estender os dois membros anteriores nas laterais do corpo (Figura 1B).
    2. Coloque os eletrodos estimulantes (1 = ânodo e 2 = cátodo) por via subcutânea em ambos os lados do membro anterior para alinhar com o nervo do plexo braquial. Levante a pele para inserir a agulha perpendicularmente através da pele e empurre aproximadamente 5 mm da agulha sob a pele sem perfurar os músculos subjacentes.
    3. Coloque o eletrodo de registro (3) por via subcutânea em cima do músculo bíceps braquial, levantando a pele. Coloque o eletrodo de referência (4) nas almofadas de caminhada em 3 mm de profundidade em um ângulo de 30 graus. Coloque o eletrodo de aterramento (5) subcutaneamente na lateral do mouse.
      nota: Os eletrodos estão próximos uns dos outros nesta configuração. Evite que os eletrodos se toquem, pois isso distorce a gravação.

3. Aquisição de dados

  1. Inicie a estimulação pressionando o botão de estímulo recorrente na unidade controladora e gire o botão do controlador de intensidade para aumentar o estímulo. Estimule todos os axônios usando 1 pulso/s com duração do estímulo de 0,1 ms. Selecione a frequência e a duração corretas nos menus suspensos do software.
  2. Para atingir estímulos supramáximos (5-20 mA; em condições desmielinizantes até 60 mA), aplique estímulos crescentes girando o botão do controlador de intensidade até que a amplitude da resposta CMAP pare de aumentar. A partir daí, aumente ainda mais o estímulo em 20% para garantir que a amplitude do CMAP tenha atingido sua resposta máxima. Termine a estimulação pressionando o botão de estímulo recorrente novamente.
  3. Use a ferramenta de marcação para indicar os seguintes pontos no registro: início do estímulo, início da resposta, pico positivo máximo e pico negativo máximo (Figura 2).
  4. Determine a latência (em ms) como um atraso desde o início do estímulo até o início da resposta (Figura 2). Defina o início da resposta como o ponto mais antigo em que a amplitude começa a aumentar. Use a latência para avaliar a desmielinização nos axônios.
  5. Meça a amplitude (mV) do pico máximo negativo ao pico máximo positivo (Figura 2). Use a magnitude da amplitude para correlacionar o número de axônios funcionais.

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Resultados

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Figura 1. Posicionamento dos eletrodos para medições CMAP.A posição dos eletrodos é apresentada para os membros posteriores (A) e anteriores (B). Os eletrodos são numerados da seguinte forma: 1: ânodo e 2: eletrodos estimuladores de cátodo, 3: eletrodo de registro ativo, 4: eletrodo de referência e 5: eletrodo de aterramento.

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Divulgações

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Não há conflitos de interesse declarados.

Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Eletrodo de agulha subdérmica reutilizável, Pl/IrTechnomedTE/S61-434A agulha tem 13 mm (0,51") de comprimento, 0,4 mm (27G) de diâmetro
Sistema de eletrodiagnóstico NatusNatus NeurologiaUltraPro S100Dispositivo EMG
sinergiaNatus Neurologiaversão 20.1.0.100Software EMG para UltraPro S100
Controlador PhysitemRothacher-Medical GmbHTCAT-2LVAlmofada de aquecimento
O medidor de vazão de Digitas do sistema da anestesia da base do combi-vet com TEC 3 vaporizaRothacher & SócioCV 30-301-DVaporizador e medidor de vazão de isoflurano
Iso-Vet 1000 mg/g Piramal Healthcare Reino Unido LimitadaAP/DROGAS/220/96Isoflurano
Camundongos SOD1-G93AO Laboratório Jackson#002726Irmãos de ninhada ALS tg e não-tg, apenas fêmeas
Camundongos PrP-hFUS-WT3O Laboratório Jackson#017916 Irmãos de ninhada controle ALS tg e não-tg, todos os grupos balanceados para machos e fêmeas
Ratos C57BL/6JaxO Laboratório Jackson#000664Camundongos não-tg para axotomia, machos e fêmeas
Camundongos C61-PMP22A linha de camundongos foi generosamente doada pelo Prof. M. Sereda (Instituto Max Planck de Medicina Experimental, Göttingen, Alemanha).CMT tg e não-tg controle irmãos de ninhada, todos os grupos balanceados para machos e fêmeas

Reimpressões e permissões

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Etiquetas

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