Todos os procedimentos envolvendo modelos animais foram revisados pelo comitê institucional local de cuidados com animais e pelo conselho de revisão veterinária JoVE.
1. Preparação da solução de perfusão e dos compostos de ensaio
- Prepare 5 L de solução de Krebs: cloreto de sódio 113 mM, NaCl, cloreto de potássio 5,9 mM, KCl, fosfato de sódio di-hidrogênio 1,2 mM, NaH2PO4, sulfato de magnésio 1,2 mM, MgSO4, bicarbonato de sódio 25 mM, NaHCO3, cloreto de cálcio 1,2 mM, CaCl2 e glicose 11,5 mM. Saturar a solução com uma mistura gasosa de 95% de O2 + 5% de CO2. Pré-resfrie ~ 500 mL de Krebs oxigenados na geladeira.
- Preparar alíquotas de compostos de ensaio (1 mM de capsaicina em etanol e 10 mM de 5-hidroxitriptamina (5-HT) em solução salina) conforme necessário. Diluir a massa em Krebs (para aplicação em banho) e em solução salina (para administração intraluminal) até à concentração final imediatamente antes da utilização.
2. Preparação do eletrodo de registro
- Puxe o eletrodo de gravação de tubos de vidro padrão sem filamentos internos (diâmetro externo de 1.5 mm) usando um extrator de eletrodo convencional. Ajuste as configurações do extrator para calor e tração de modo que a haste dos eletrodos puxados fique entre 20 e 25 mm.
3. Coleta de tecidos
- Anestesiar profundamente o rato com pentobarbital sódico (80 mg/kg, i.p.).
- Ao mesmo tempo em que garante a esterilidade, exponha a cavidade abdominal realizando uma incisão na linha média da parede abdominal usando um bisturi. Puxe o mesentério e outros tecidos para o lado para expor o colorreto.
- Coloque o animal sob o microscópio de dissecação. Por meio de uma dissecção cuidadosa, localize o gânglio pélvico esquerdo (PG) e identifique os nervos pélvicos (NP) e os nervos esplâncnicos lombares (LSN) que se juntam a ele. Corte esses nervos a alguns milímetros de distância do PG.
nota: O PG fica próximo à junção colorretal. Tipicamente, 3 - 4 NP da medula espinhal lombossacral e um LSN projetam para o GP (Figura 1).
- Corte o osso da sínfise para expor o reto. Remova os tecidos (ou seja, bexiga urinária, etc.) acima do colorreto; tenha cuidado para deixar o PG intacto.
- Sacrifique o rato pela injeção intravenosa de uma overdose de pentobarbital. Passe o cólon cerca de 3 cm acima do PG e remova o colorreto do animal usando uma pinça.
- Transfira o colorreto para uma placa de Petri cheia de solução de Krebs pré-resfriada. Remova as fezes lavando suavemente o cólon. Remova a bexiga urinária remanescente e outros tecidos com cuidado, sem comprometer o PG.
4. Dissecção dos nervos aferentes do cólon
- Coloque o cólon em uma câmara de registro (20 mL) e perfunda o tecido continuamente com solução de Krebs carbogenada. Defina a taxa de perfusão em 15 mL / min.
- Canule o colorreto nas extremidades oral e anal. Inicie a infusão intraluminal do cólon com solução salina a uma taxa de 10 mL / h na direção oral para anal.
- Localize o PG principal sob o microscópio de dissecação. Use alfinetes de insetos para expor o gânglio. Com dissecção cuidadosa, encontre um ramo fino do nervo que emana do gânglio e corre em direção ao cólon (Figura 1). Corte o nervo próximo ao gânglio.
NOTA: A Figura 1 ilustra o registro de um ramo nervoso distal ao GP. O nervo presumivelmente contém uma mistura de fibras aferentes esplâncnicas pélvicas e lombares. Alternativamente, um registro pode ser feito a partir do NP e/ou do LSN proximal ao GP.
- Ligue o banho de aquecimento e aqueça a solução de Krebs para manter a temperatura da câmara em 34 ± 0,5 °C.
5. Preparação do eletrodo de sucção
- Pegue uma pipeta de vidro pré-puxada (etapa 2) e inspecione-a sob o microscópio de dissecação. Quebre a ponta do eletrodo com uma pinça para que fique de tamanho compatível com o diâmetro do nervo a ser registrado.
- Chanfre a ponta colocando-a perto de um alargamento mais leve.
6. Registro eletrofisiológico
- Conecte o eletrodo chanfrado ao suporte do eletrodo. Conecte uma seringa de 10 mL à porta lateral do suporte para aplicar pressão negativa ou positiva ao eletrodo.
- Conecte o suporte ao headstage do bioamplifier e monte o headstage em um manipulador.
- Mova o eletrodo para o banho de tecido e encha o eletrodo com a solução de Krebs aplicando sucção suave até que ele entre em contato com o fio de prata do suporte. Coloque a ponta do eletrodo perto da extremidade cortada do nervo e aplique pressão negativa para sugar o nervo para dentro do eletrodo. Aplique mais pressão negativa para que ~ 1 mm do nervo seja puxado para dentro do eletrodo e forme uma vedação hermética.
- Ligue o bioamplificador e ajuste o filtro para 300 - 3.000 Hz. Monitore o sinal no osciloscópio e registre o sinal nervoso (taxa de amostragem de 20 kHz) e o sinal de pressão intraluminal (taxa de amostragem de 100 Hz) usando um computador com software de processamento de dados de pico.
7. Testando a sensibilidade aferente do cólon
- Aplique a distensão em rampa do cólon fechando a torneira de três vias na cânula de saída enquanto infunde continuamente intraluminalmente. Monitore a pressão intraluminal até atingir 60 mmHg, momento em que abra a torneira de três vias na cânula de drenagem.