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Research Article
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Erratum Notice
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Retraction Notice
The article Assisted Selection of Biomarkers by Linear Discriminant Analysis Effect Size (LEfSe) in Microbiome Data (10.3791/61715) has been retracted by the journal upon the authors' request due to a conflict regarding the data and methodology. View Retraction Notice
Fonte: Manseau, F., et al. Sintonia na Banda Theta do Hipocampo In Vitro: Metodologias para Gravação do Circuito Septo-Hipocampal de Roedores Isolados. J. Vis. Exp. (2017)
Este vídeo demonstra o método para usar a optogenética para modular a dinâmica da rede hipocampal, ativando interneurônios sensíveis à luz geneticamente modificados em uma fatia de cérebro de camundongo, aprimorando a sincronização da oscilação e estudando o comportamento do circuito neural.
Todos os procedimentos envolvendo amostras de animais foram revisados e aprovados pelo comitê de revisão ética animal apropriado.

Figura 1: Potencial de campo local e gravações simultâneas de patch clamp de neurônios piramidais e PV CA1 / SUB únicos durante oscilações Theta espontâneas e optogenéticas no hipocampo isolado.
(a) Diagrama mostrando os locais de registro de LFP e eletrodo de patch com a colocação do guia de fibra de luz acima da região CA1/SUB expressando uma opsina sensível à luz azul (ChETA acoplado ao fluoróforo eYFP). (b) Caracterização de um neurônio piramidal mostrando propriedades típicas de Regular-Spiking (RS) (topo) e imagem de alta ampliação (40X) da célula registrada (abaixo). (c) Sample registro de pinça de corrente da mesma célula no potencial de membrana despolarizado (preto) junto com o sinal LFP (cinza) e mostrando IPSPs rítmicos sincronizados durante a oscilação espontânea (esquerda) e durante a estimulação luminosa de frequência (6 Hz) (direita). O padrão de estimulação da luz (sombreamento azul) é representado no topo dos traços de tensão. (d) Espectrograma e espectros de potência da forma de onda LFP antes, durante e após uma estimulação luminosa de 6 Hz (linha de base, estímulo, pós). (e) Imagens de campo claro e fluorescência de baixa ampliação da preparação isolada do hipocampo mostrando fluorescência eYFP (em verde) localizada na região CA1 / SUB. (f) Caracterização das etapas atuais mostrando o comportamento de Fast-Spiking (FS) de um interneurônio PV-TOM registrado (imagem de fluorescência 40X abaixo). (g) Registro do potencial de membrana mostrando grandes EPSPs e disparo rítmico da célula fotovoltaica registrada sincronizada com o sinal LFP durante a oscilação espontânea do campo (esquerda) e durante a estimulação luminosa (direita) a 3 Hz. (h) Média acionada por campo (FTA) de picos de células fotovoltaicas sobre o sinal CA1 / SUB LFP. A descarga da célula fotovoltaica em vários ensaios (centrados nos picos LFP) foi convertida em um FTA de picos registrados durante a oscilação espontânea (linha de base) e durante a estimulação luminosa (stim). Os gráficos do meio e do fundo mostram os gráficos raster de picos e histogramas de probabilidade de pico (a probabilidade média é mostrada em vermelho). Os gráficos superiores mostram gráficos do sinal LFP médio, que aumentou em potência durante a estimulação da luz em paralelo com o disparo altamente sincronizado da célula fotovoltaica bloqueada em fase para o pico da oscilação LFP.
| Reagentes | |||
| cloreto de sódio | Sigma Aldrich | S9625 | |
| sacarose | Sigma Aldrich | S9378 | |
| bicarbonato de sódio | Sigma Aldrich | S5761 | |
| NaH2PO4 - fosfato de sódio monobásico | Sigma Aldrich | S8282 | |
| Sulfato de magnésio | Sigma Aldrich | M7506 | |
| Cloreto de potássio | Sigma Aldrich | Pág. 3911 | |
| D-(+)-Glicose | Sigma Aldrich | G7528 | |
| Cloreto de cálcio di-hidratado | Sigma Aldrich | C5080 | |
| Ascorbato de sódio | Sigma Aldrich | A7631-25G | |
| equipamento | |||
| Mistura gasosa de 95% O2/5% CO2 (carbogênio) | Vitalaire | SG466204A | sistema de perfusão |
| Garrafas/frascos de vidro (4 x 1 L) | n.a. | n.a. | sistema de perfusão |
| Câmara de gravação submersa | projete (FM) | n.a. | Alternativa comercial pode ser usada |
| Amplificador de grampo de remendo Multiclamp 700B | Dispositivos moleculares | MULTICLAMP | Eletrofisiologia |
| Programa de Comando Multiclamp 700B | Dispositivos moleculares | MULTICLAMP | Eletrofisiologia |
| Conversor digital/analógico | Dispositivos moleculares | DDI440 | Eletrofisiologia |
| Micromanipuladores (operados manualmente) | Siskiyou | MX130 | eletrofisiologia (LFP) |
| Micromanipuladores (automatizados) | Siskiyou | MC1000e | eletrofisiologia (patch) |
| Monitor de áudio | Sistemas A-M | Modelo 3300 | Eletrofisiologia |
| Microscópio de fluorescência vertical personalizado | Siskiyou | n.a. | imagiologia |
| Câmera de vídeo analógica | COHU | 4912-2000/0000 | imagiologia |
| Frame grabber digital com software de imagem | EPIX, Inc | PIXCI-SV7 | imagiologia |
| Objetiva Olympus 2.5x | Olimpo | MPLFLN | imagiologia |
| Objetiva de imersão em água Olympus 40x | Olimpo | UIS2 LUMPLFLN | imagiologia |
| Sistema de diodo emissor de luz (LED) feito sob medida | costume | n.a. | estimulação optogenética (Amhilon et al., 2015) |
| Animais | |||
| Camundongos PV::Cre (KI) | Laboratório Jackson | Número de estoque 008069 | Permitir a expressão gênica direcionada por Cre em interneurônios PV |
| Camundongos Ai9 condicionais constitutivos (R26-lox-stop-lox-tdTomato (KI)) | Laboratório Jackson | Número de estoque 007905 | Express TdTomato após recombinação mediada por Cre |
| Camundongos Ai32 (R26-lox-stop-lox-ChR2(H134R)-EYFP | Laboratório Jackson | Número de estoque 012569 | Expresse a proteína de fusão canalrodopsina-2/EYFP melhorada após exposição à Cre recombinase |
| Ratos PVChY | Criação em casa | n.a. | Descendentes obtidos a partir do cruzamento da linhagem PV-Cre com camundongos Ai32 (R26-lox-stop-lox-ChR2(H134R)-EYFP |