Artigo de método

Induzindo desmielinização local no nervo óptico usando lisolecitina

8 de julho de 2025

Neste artigo

Resumo

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Fonte: You, Y. et al., Gravação de Potencial Evocado Visual em um Modelo de Rato de Desmielinização Experimental do Nervo Óptico. J. Vis. Exp. (2015)

Este vídeo demonstra o procedimento de acesso cirúrgico ao nervo óptico em um animal anestesiado e entrega precisa de lisolecitina para induzir a desmielinização focal, criando condições neuropatológicas para estudos posteriores.

Protocolo

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Todos os procedimentos envolvendo modelos animais foram revisados pelo comitê institucional local de cuidados com animais e pelo conselho de revisão veterinária JoVE.

1. Injeção do Nervo Óptico

  1. Anestesiar o animal com injeção intraperitoneal de cetamina (75 mg/kg) e medetomidina (0,5 mg/kg).
    nota: Após a indução anestésica, observe os reflexos de retirada (teste de pinça, reflexo corneano e palpebral, etc.) e sua ausência como indicação para iniciar a cirurgia. Monitore continuamente os animais durante a cirurgia e administre o medicamento anestésico adicional (10% da dose inicial de cetamina por recarga) se os reflexos estiverem presentes. Ratos adultos (>12 semanas) são usados nos experimentos.
  2. Depile a pele da área cirúrgica. Coloque o animal em uma almofada de aquecimento (37 °C) para manter a temperatura corporal durante a cirurgia. Prepare a pele através da aplicação tópica de iodopovidona. Aplique drapeados cirúrgicos. Aplique pomada oftálmica tópica para evitar o ressecamento da córnea sob anestesia geral. Mantenha a assepsia usando instrumentos estéreis.
  3. Faça uma incisão de 1 a 1,5 cm na pele acima da órbita de um olho selecionado aleatoriamente. Abra o tecido subcutâneo para alcançar a cavidade orbital usando uma tesoura de íris fina. Abra a conjuntiva e a cápsula de Tenon anterior sob o microscópio cirúrgico.
  4. Retraia os músculos extraoculares e as glândulas lacrimais intraorbitais para expor aproximadamente 3 mm de comprimento do nervo óptico. Abra as camadas de dura-máter e matéria aracnoide ao redor do nervo óptico longitudinalmente usando uma lâmina oftálmica.
  5. Insira a pipeta de vidro no nervo óptico a uma distância de 2 mm posterior ao globo. A micropipeta de vidro é conectada a uma seringa Hamilton.
  6. Injete 1% de lisolecitina (0,4 - 1,0 μl, com 0,02% de azul de Evan, que não tem efeitos na mielinização) lentamente no nervo aproximadamente durante um período de 30 segundos.
  7. Suturar a incisão na pele. Aplique pomada antibiótica para prevenir infecções. Os olhos de outros podem ser servidos como controles internos para registros de eletrofisiologia.
  8. Coloque os animais em uma almofada de aquecimento para se recuperar da anestesia.

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Divulgações

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Não há conflitos de interesse declarados.

Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Cetamina 100 mg/ml (Ketamil)Laboratórios TroyAC 116
Medetomidina 1 mg/ml (Domitor)PfizerSC-204073
Sistema de manta homeotérmicaAparelho de HarvardNC9203819
Seringa HamiltonHamiltonRolamento 87930
LisolecitinasigmaL4129
Azul de EvansigmaE2129

Reimpressões e permissões

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Etiquetas

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