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Induzindo Infarto Agudo da Ponte em Modelo de Rato Usando Estimulação Elétrica

July 8th, 2025

In This Article

Abstract

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Fonte: Luo, M., et al. Estabelecimento de infarto pontino agudo em ratos por estimulação elétrica. J. Vis. Exp. (2020)

Este vídeo demonstra um procedimento para induzir dano tecidual ou infarto na ponte de um rato anestesiado usando estimulação elétrica.

Protocol

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Todos os procedimentos envolvendo modelos animais foram revisados pelo comitê institucional local de cuidados com animais e pelo conselho de revisão veterinária JoVE.

1. Estabelecimento de infarto na ponte

  1. Pré-aqueça a almofada de aquecimento imediatamente antes da anestesia.
  2. Prenda a broca de crânio ao suporte na estrutura estereotáxica.
  3. Injete intraperitonealmente nos ratos 50 mg / kg de cetamina e 5 mg / kg de xilazina. Verifique a falta de resposta de beliscões do dedo do pé.
  4. Monte o rato na estrutura estereotáxica na posição de bruços. Posicione as barras auriculares acima do canal auditivo para prender a cabeça. Certifique-se de que o crânio seja mantido na horizontal para evitar qualquer distorção da injeção.
  5. Mantenha a anestesia com isoflurano (100% de oxigênio, 2,5% de isoflurano) por meio de um acessório de cone nasal estereotáxico para ratos com portas de entrada e saída. Use uma almofada de aquecimento para manter a temperatura em 37 °C e monitore-a durante todo o procedimento.
  6. Use pomada para os olhos para evitar o ressecamento da córnea. Use uma pinça para beliscar as patas para garantir que não haja uma resposta à dor levemente.
  7. Raspe o cabelo do crânio com um micro-barbeador. Aplique circularmente o esfoliante cirúrgico com clorexidina, começando no local da incisão cirúrgica e girando para fora.
  8. Faça uma incisão na linha média de 3 cm com um bisturi da linha do canto lateral bilateral até 0,5 cm atrás da fontanela posterior, que um marcador cirúrgico deve marcar.
  9. Use um cotonete para remover o sangue.
  10. Um pedaço de fita cirúrgica deve ser colocado em cada lado do retalho cutâneo para exposição do couro cabeludo (Figura 1).
  11. Remova suavemente os tecidos conjuntivos do osso do crânio com um cotonete embebido em NaCl a 0,9%. Se não forem removidos, os tecidos conjuntivos ficarão presos na broca.
  12. Identifique o bregma. Escolha o ponto central do bregma como ponto de origem e marque-o com um marcador cirúrgico preto de ponta fina.
  13. Coloque uma broca a 6.0 mm AP, 2.0 mm ML (faixa de 0.5 a 3.0 mm, Figura 2A).
  14. Realize craniotomia (1 mm de diâmetro) usando uma broca automática. Proceda com cuidado porque este ponto está próximo ao seio venoso.
  15. Remova a broca da estrutura estereotáxica.
  16. Coloque uma sonda de 22 G com uma bainha isolada na estrutura estereotáxica (Figura 3A). A ponta da sonda deve ser colocada 2 mm acima da extremidade proximal da bainha (Figura 3A, B; Figura 2B).
  17. Certifique-se de que a bainha entra no cérebro 7 mm (7 mm DV, Figura 2B; Figura 1C).
  18. Avance a sonda ao longo da bainha (Figura 1D) até que a ponta da sonda esteja 9 mm abaixo da superfície do cérebro (Figura 2D).
  19. Conecte os eletrodos a um estimulador elétrico (Figura 3C). Conecte o ânodo à sonda conforme mostrado na Figura 1D. Conecte o cátodo aos ratos (geralmente ao ouvido dos ratos).
  20. Ligue o estimulador elétrico e configure os seguintes parâmetros: largura de pulso simples = 4.050 ms; tensão = 50 V; e corrente = 4 mA (Figura 3C). Durante a estimulação elétrica, o rato exibirá tremores. Neste estudo, o dispositivo não foi ligado para ratos do grupo controle usados para os testes comportamentais, ressonância magnética e TTC.
  21. Deixe a sonda na posição por 5 minutos após a estimulação.
  22. Remova a sonda do cérebro (Figura 1F).
  23. Use cimento ósseo para cobrir a craniotomia. Deixe o cimento secar antes da sutura da ferida.
  24. Suturar a ferida com filamentos de sutura de poliamida 4-0. Depois de três ou quatro pontos, amarre os nós cirúrgicos padrão 2-1-1.
  25. Injete nos ratos penicilina (0,25 mL, 80 UI diluídos em 4 mL de solução salina) por via intraperitoneal para prevenir a infecção.
  26. Injetar meloxicam nos ratos por via subcutânea na dose de 2 mg/kg e repetir de 24 em 24 horas.
  27. Monitore os ratos a cada 15 minutos até que estejam totalmente acordados e devolva-os à gaiola com uma almofada de aquecimento. Fornecer livre acesso a comida e água até o sacrifício.
    nota: Todos os procedimentos devem seguir os princípios cirúrgicos assépticos. Antes da cirurgia, coloque uma blusa, máscara cirúrgica e luvas estéreis após uma esfregada cirúrgica das mãos. Sempre mantenha o material de sutura estéril dentro do campo estéril.

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Results

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figure-results-1
Figura 1: Estabelecimento do infarto. (A) Um buraco feito no crânio. (B) A bainha é movida para o orifício. (C) Injeção da bainha. (D) Injeção da sonda. (E) O ânodo (seta vermelha) está conectado. (F) A sonda é removida. (G) Buraco (seta vermelha) à esquerda na superfície do cérebro....

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Disclosures

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Não há conflitos de interesse declarados.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
4-0 SucçãoXangai JinzhongInstrumentos cirúrgicos
fita adesivaXangai JinzhongInstrumentos cirúrgicos
Sistema de anestesia para animaisRwdUse máscara ao usar o sistema
Cimento ósseoXangai JinzhongInstrumento cirúrgico
Grampo curadoXangai JinzhongInstrumento cirúrgico
Tesoura de tecido geralXangai JinzhongInstrumento cirúrgico
IndoPhorsGuoyao da Chinaesterilização
IsofluranoRwd217181101
Dispositivo de Fabricação de LesõesXangai YuyanFazendo uma lesão
Sistema de ressonância magnéticaBruker BiospinConfirmação de infarto in vivo
Porta-agulhasXangai JinzhongInstrumento cirúrgico
PenicilinaGuoyao da ChinaPrevenção de infecções
sondarAnkePrecisa de alguma modificação
Dicas de perguntasXangai JinzhongInstrumento cirúrgico
Tesoura de corteXangai JinzhongInstrumento cirúrgico
Aparelhos estereotáxicosRwd
Agulha de suturaXangai JinzhongInstrumento cirúrgico
Forceptos de retenção de tecidoXangai JinzhongInstrumento cirúrgico
TtcSigma-AldrichBCBW5177Para confirmação de infarto in vitro

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Pons InfarctionElectrical StimulationRat ModelStereotaxic SurgeryCraniotomy ProcedureBrain StimulationTissue Damage InductionNeurological AnalysisBone Cement SealingSurgical Suturing

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