Artigo de método

Gerando uma lesão por facada cortical em um modelo de camundongo para induzir astrogliose reativa

8 de julho de 2025

Neste artigo

Resumo

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Fonte: Allahyari, R. V. et al. Desencadeando gliose reativa in vivo por uma lesão por facada no prosencéfalo. J. Vis. Exp. (2015)

Este vídeo demonstra o procedimento de lesão por facada cortical em camundongos, envolvendo exposição do crânio e criação de lesões cerebrais. Induz a astrogliose reativa, uma resposta neuroprotetora dos astrócitos, para estudar o trauma, a inflamação e os mecanismos de reparo do SNC.

Protocolo

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Todos os procedimentos envolvendo modelos animais foram revisados pelo comitê institucional local de cuidados com animais e pelo conselho de revisão veterinária JoVE.

1. Preparando o mouse para a cirurgia

  1. Remova o mouse da gaiola inicial e pese (g).
  2. Coloque o mouse em uma câmara de indução de isoflurano e defina o oxigênio para 2 L / min e o vaporizador de isoflurano para 5 para induzir um plano cirúrgico de anestesia, cerca de 3-5 min. Monitore a respiração lenta e a imobilização. Verifique se o mouse está totalmente sedado usando o reflexo de pinça do dedo do pé.
  3. Quando o mouse estiver totalmente sedado, coloque-o em uma estrutura estereotáxica e prenda o nariz no cone do nariz, que é preso com um tubo ao isoflurano. Insira as barras auriculares no canal auditivo e aperte, garantindo que a cabeça esteja estável.
  4. Raspe a cabeça de orelha a orelha e de entre os olhos até atrás das orelhas.
  5. Esterilize a pele com toalhetes alternados de álcool isopropílico e solução de iodo betadina, 3 vezes cada.
  6. Aplique lágrimas artificiais em ambos os olhos para evitar que sequem durante o procedimento cirúrgico.

2. Procedimento Cirúrgico

  1. Monitore a profundidade da anestesia beliscando o dedo do pé ou a cauda. O camundongo está no plano cirúrgico apropriado quando não há resposta e a respiração é lenta e uniforme.
  2. Faça uma incisão na pele parassagital logo atrás dos olhos até quase entre as orelhas em um único movimento firme usando uma lâmina de bisturi nº 11. Mova a pele para o lado e prenda o lado direito com o hemostático.
  3. Limpe o crânio da membrana sobrejacente usando o lado opaco do bisturi nº 11 e aplicadores com ponta de algodão. Opcionalmente, limpe o crânio com um aplicador com ponta de algodão embebido em solução salina a 0,9%. Deixe secar completamente.
  4. Com uma régua pequena, marcar a borda anterior da craniotomia a 1 mm caudal à sutura coronal e a borda esquerda da craniotomia a 1 mm lateral à sutura sagital (Figura 1) com um marcador permanente. Em seguida, marque as bordas direita e caudal da craniotomia a 4 mm das suturas sagital e coronal, respectivamente (Figura 1).
  5. Usando uma broca de 0,5 mm, comece a fazer uma craniotomia perfurando lentamente seguindo o contorno do marcador permanente. Certifique-se de não romper o crânio completamente. Pressione suavemente o pedaço isolado de osso parietal com uma pinça nº 5, as áreas de fraqueza cederão à pressão. Quando o osso afinado estiver suficientemente fraco em todo o perímetro, a peça óssea estará pronta para remoção.
    nota: Se o investigador tiver dificuldade em remover o osso inteiro, isso sugere que o osso não foi suficientemente diluído durante a perfuração. Considere perfurar ainda mais o crânio em animais subsequentes para facilitar a remoção fácil da peça óssea.
  6. Usando uma seringa de 10 ml equipada com uma agulha de 23 G, aplique uma pequena quantidade de solução salina a 0,9% para embeber o osso isolado e a área perfurada.
  7. Fixe o braço manipulador ao equipamento estereotáxico. Conecte uma nova lâmina de bisturi nº 11 ao suporte da sonda com o lado afiado da lâmina voltado para o rostral.
    nota: Embora os tecidos rostral e caudal experimentem as bordas afiadas e rombas da lâmina, respectivamente, o dano mecânico induzido pela lesão penetrante é comparável em toda a extensão da lesão. Não observamos diferenças apreciáveis nas principais características da gliose reativa, incluindo regulação positiva da expressão ou proliferação de GFAP, entre as seções rostral e caudal.
  8. Mantendo o braço manipulador fora do caminho, levante cuidadosamente o osso isolado usando uma pinça angular 5/45. Insira a ponta da pinça na lateral do osso isolado e levante, usando uma alavanca para puxar o pedaço de osso deixado para trás em um movimento completo.
    nota: Tenha cuidado para não esfaquear o cérebro ou perturbar a dura-máter embaixo do crânio.
  9. Pegue um pequeno pedaço da espuma de gel absorvível embebida e coloque-a no cérebro descoberto para evitar que seque e absorva qualquer sangue que possa estar presente.
  10. Assim que a espuma de gel estiver no lugar, gire o braço do manipulador no lugar e ajuste a lâmina no centro da craniotomia sobre a espuma de gel. Remova a espuma de gel e abaixe a lâmina até que a ponta toque na dura-máter sem perfurá-la. Marque as coordenadas dorsais / ventrais usando a escala vernier no braço vertical do estereotáxico.
  11. Usando o braço do manipulador, abaixe lentamente a lâmina precisamente 3 mm no cérebro. Isso é conseguido usando as marcações de escala vernier no braço do manipulador. Deixe a lâmina permanecer no lugar por 5 a 10 segundos. Mova o braço estereotáxico com a fixação da lâmina rostral para caudal três vezes, permitindo que a lâmina alcance os limites rostral e caudal da craniotomia antes de se mover para a extremidade oposta.
    nota: A dura-máter não é removida antes de inserir a lâmina. Em contraste com a dura-máter de rato, que tem ~ 80 μm de espessura7, a dura-máter de camundongo é consideravelmente mais fina (apenas algumas camadas de células de espessura) e não produz uma resistência apreciável à lâmina do bisturi durante a inserção. Use uma nova lâmina de bisturi para cada camundongo para garantir que cada animal receba uma lesão consistente.
  12. Levante lentamente o braço estereotáxico, removendo a lâmina do cérebro. Após a remoção da lâmina, coloque imediatamente outro pedaço de espuma de gel na superfície do cérebro para absorver qualquer excesso de sangue ou fluido.
  13. Enquanto isso, remova o braço estereotáxico e descarte a lâmina do bisturi nº 11. Assim que o sangramento parar, remova a espuma de gel.
  14. Feche a ferida suturando a pele com suturas não absorvíveis, como ethilon ou prolene. As suturas devem ser removidas 9 a 10 dias após a cirurgia.
  15. Retorne o mouse para sua gaiola inicial e permita que o mouse se recupere lentamente em uma almofada de aquecimento e monitore quaisquer sinais de angústia. A recuperação da anestesia induzida por isofluorano geralmente ocorre dentro de 2-5 minutos após a remoção do isofluorano. Não deixe o animal sem vigilância até que ele tenha recuperado a decúbito esternal.
  16. Administre 0,5-1 ml de solução de Ringer com lactato por via subcutânea para garantir a hidratação.

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Resultados

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Figura 1: Esquema do crânio do camundongo representando a área da craniotomia. As linhas azuis representam as marcações iniciais que identificam os limites da área a ser perfurada. As marcas superior e esquerda são medidas 1 mm abaixo ou lateralmente às suturas coronal ou sagital, respectivamente. As marcas inferior e direita são medidas a 4 mm das suturas coronal e sagital, respectivamente. A cranio...

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Divulgações

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Não há conflitos de interesse declarados.

Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
EstereotaxaAparelho de Harvard726049
Micro broca de alta velocidadeAparelho de HarvardRolamento 724950
lâmina de bisturi de aço inoxidável, #11MedVetJOR581S
5/45 pinça angularFerramentas de Belas Ciências11251-35
Esponja Gelfoam 12cmx7mmpescadorNC9841478
Anticorpos e outros reagentesfabricanteNúmero de catálogoDiluição (campo claro)
Diluição (fluorescência)
Rb anti-GFAPDAKOZ033429-21:20k
1:1k
Shp anti-BrdUAbcamAB18931:2k
1:500
Anti-coelho de cabra biotiniladoLaboratórios de vetoresBA-100007:40
Anti-ovelhas para coelhos biotiniladosLaboratórios de vetoresBA-600007:40
Alexafluor 488 cabra anti-coelhoTecnologias da VidaA-1100807:40
Alexafluor 568 burro anti-ovelhasTecnologias da VidaA-2109917:40
Coloração de ácido nucleico DAPITecnologias da VidaD357117:40
Acetato de violeta CresylSigma AldrichC5042-10G1% de sucesso

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