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Todos os procedimentos que envolvem amostras de animais foram revisados e aprovados pela revisão ética animal apropriada.
1. Preparação de reagentes
- Tampão de digestão (1 ml por hemisfério): Dissolva uma mistura padronizada de enzimas digestivas purificadas, por exemplo, Liberase com baixa concentração de termolisina (TL) para uma concentração de 2U / ml em Hanks Balanced Salt Solution (HBSS) contendo cálcio (Ca) e magnésio (Mg).
- Tampão de lavagem com DNAse: Dissolva DNAse I a uma concentração de 666U / ml em HBSS (Ca / Mg (cálcio / magnésio) livre) contendo 10% de soro fetal de bezerro (FCS).
- Tampão de lavagem sem DNAse: HBSS (livre de Ca/Mg) contendo 10% de FCS.
- Meio de gradiente de densidade (5 ml por hemisfério): preparar o meio de gradiente de densidade isotónico (SIP; 100%) misturando nove partes de meio de gradiente de densidade com uma parte de cloreto de sódio 1,5 M. Dilua o SIP a 25% de densidade adicionando um volume apropriado de HBSS (livre de Ca/Mg) contendo 3% de FCS.
2. Dissociação do tecido cerebral em suspensões unicelulares
- Remova cuidadosamente o tronco cerebral e o cerebelo com uma lâmina de barbear limpa. Use uma lâmina de barbear limpa para hemisseccionar o cérebro e corte cada hemisfério ao longo do plano coronal em três pedaços de tamanho aproximadamente igual.
- Pique o tecido dissecado de cada hemisfério através de um filtro de células de 100 μm usando a extremidade do êmbolo de uma seringa de 5 ml. Enxágue continuamente o filtro de células com HBSS gelado (+Ca/Mg). Armazene amostras homogeneizadas no gelo.
- Centrifugue a 286 x g e 4 ° C por 5 min, descarte cuidadosamente o sobrenadante. Ressuspenda o pellet em 1 ml de tampão de digestão e transfira a suspensão para um tubo de 2 ml. Incubar a suspensão sob rotação lenta e contínua a 37 °C durante 1 hora.
- Peneirar a suspensão celular através de um filtro de células de 70 μm e enxaguar abundantemente com 3 ml de tampão de lavagem contendo DNAse seguido de 15 ml de tampão de lavagem sem DNAse. Centrifugar a 286 x g e 18 °C durante 5 min e rejeitar o sobrenadante. nota: O uso de DNAse elimina o muco do DNA causado pela lise celular, o que pode levar à agregação celular, comprometendo a sobrevivência celular.
3. Centrifugação com gradiente de densidade para remoção de mielina e detritos celulares
- Ressuspenda o sedimento celular em 5 ml de meio gradiente de densidade de 25% e pipete a suspensão para um tubo de 15 ml. Misture bem por pipetagem repetida e suave, evitando a formação de bolhas. nota: O meio de gradiente de densidade deve ser usado em RT para evitar a aglomeração celular.
- Centrifugue a 521 x g e 18 °C por 20 min. Use o perfil de aceleração mais baixo do rotor e deixe o rotor parar sem freio. Remova cuidadosamente os tubos da centrífuga sem agitar. Aspirar cuidadosamente o revestimento de mielina e o sobrenadante, preservando o sedimento celular no fundo do tubo. nota: Certifique-se de remover todo o revestimento de mielina, pois qualquer sobra prejudicará a análise de citometria de fluxo.
- Ressuspenda o pellet em 10 ml de tampão de lavagem sem DNAse e pipete a suspensão para um novo tubo de 15 ml. nota: Esta etapa de lavagem é crucial, pois a remoção suficiente do meio de gradiente de densidade contribui significativamente para a quantidade e qualidade da amostra final da célula.
- Centrifugar novamente a 286 x g e 10 °C durante 5 min e rejeitar o sobrenadante. Ressuspenda as células em 100 μl de tampão de lavagem a frio e determine a contagem e a viabilidade das células por exclusão de azul de tripano em um hemocitômetro. Armazene as amostras a 4 °C e processe-as rapidamente.