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Estabelecendo um modelo de camundongo de desmielinização focal por meio de uma injeção de dois pontos de lisofosfatidilcolina

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8 de julho de 2025

Neste artigo

Resumo

Fonte: Pang, X., et al. Um modelo de desmielinização focal induzida por injeção de dois pontos de forma estável em camundongos. J. Vis. Exp. (2022)

Este vídeo demonstra a geração de um modelo de camundongo desmielinizante focal usando uma injeção de lisofosfatidilcolina (LPC) de dois pontos. O crânio de um camundongo anestesiado é exposto. As coordenadas de injeção são determinadas e um orifício é perfurado para permitir injeções de LPC em locais específicos. O LPC induz a desmielinização focal dos neurônios por meio da inflamação, enquanto uma injeção de dois pontos garante sua sustentabilidade.

Protocolo

Todos os procedimentos envolvendo modelos animais foram revisados pelo comitê institucional local de cuidados com animais e pelo conselho de revisão veterinária JoVE.

1. Preparação da solução de lisofosfatidilcolina (LPC)

  1. Dissolva 25 mg de pó de LPC (ver Tabela de Materiais) com 250 μL de solução mista de clorofórmio e metanol (1:1) para fazer uma solução de LPC a 10% e transfira-a para um tubo de centrífuga de 500 μL.
    NOTA: Se o LPC não estiver completamente dissolvido, coloque o tubo de centrífuga em um limpador ultrassônico e ultrassonice a 40 kHz por ~ 1 h para obter uma solução uniforme.
  2. Divida a solução em 3 μL / tubo e armazene a -80 ° C.
    NOTA: A solução pode ser armazenada por ~ 2 anos.
  3. Antes da cirurgia, diluir a solução (etapa 1.2) com 27 μL de solução de cloreto de sódio (NaCl) a 0,9% e manter a solução em banho-maria de temperatura constante a 37 °C.
    NOTA: Prepare a solução imediatamente antes de iniciar a injeção.

2. Preparo cirúrgico

  1. Use uma agulha de 32 G e 2 polegadas para conectar a uma seringa de 5 μL (consulte a Tabela de Materiais). Certifique-se de que a seringa de microlitros esteja desobstruída. Retire 5 μL de solução de LPC para preparar a injeção.
  2. Anestesiar o camundongo em uma câmara de indução conectada a um vaporizador de isoflurano com isoflurano a 3% misturado com oxigênio a 100% a uma taxa de cerca de 0,3 L/min.
  3. Confirme a profundidade da anestesia pela falta de reflexo de pinça do dedo do pé enquanto a respiração é suave.
  4. Raspe a cabeça do mouse entre as orelhas usando um barbeador elétrico. Aplique colírios lubrificantes para evitar o ressecamento da córnea durante o procedimento.
  5. Em seguida, posicione o mouse em uma estrutura estereotáxica (consulte a Tabela de Materiais) com o lado dorsal para cima e prenda a cabeça com um cone de nariz e uma pinça de dente. Manter a anestesia com isoflurano a 1,2%-1,6% pelo nariz.
    nota: A concentração de isoflurano pode ser ajustada de acordo com o estado respiratório dos camundongos.

3. Procedimento cirúrgico

NOTA: Os animais são colocados em uma almofada de aquecimento durante todos os procedimentos.

  1. Fixe o mouse ao aparelho estereotáxico com barras auriculares bilaterais. Certifique-se de que as barras auriculares estejam niveladas e a cabeça esteja horizontal e estável.
  2. Desinfete a pele da cabeça limpando-a várias vezes com iodóforo, seguido de álcool em movimentos circulares. Em seguida, um bisturi é usado para cortar uma pequena incisão de cerca de 1,5 cm ao longo da linha média do couro cabeludo para expor o crânio.
  3. Limpe o crânio com um cotonete embebido em peróxido de hidrogênio a 1% até que a bregma, lambda e fontanela posterior sejam expostas. Coloque a seringa no aparelho estereotáxico.
    NOTA: Use peróxido de hidrogênio com cuidado e evite tocar nos tecidos circundantes.
  4. Garanta o posicionamento horizontal da cabeça do animal (frente e traseira e esquerda e direita).
    1. Ajuste o botão do eixo Z da estrutura estereotáxica para que a ponta da agulha e o crânio se toquem sem dobrar e, em seguida, meça a coordenada do eixo Z. Verifique as coordenadas Z de bregma e fontanela posterior.
    2. Ajuste a barra auricular de modo que a diferença entre as coordenadas Z do bregma e da fontanela posterior não seja superior a 0,02 mm. Em seguida, siga o mesmo método para medir as coordenadas Z das posições correspondentes nos lados esquerdo e direito da linha média. Ajuste a barra auricular para garantir que a esquerda e a direita estejam no mesmo nível.
  5. Localize o corpo caloso. Defina a origem XYZ como bregma.
    NOTA: O primeiro local de injeção é 1,0 mm lateral ao bregma, 2,4 mm de profundidade e 1,1 mm anterior. O segundo local de injeção é 1,0 mm lateral ao bregma, 2,1 mm de profundidade e 0,6 mm anterior. Por exemplo, a coordenada do bregma é (0,0,0). Meça a coordenada Z do local correspondente marcado como (-1, 1,1, X) e (-1, 0,6, Y). Pode-se determinar que a coordenada do primeiro local de injeção do corpo caloso é (-1, 1,1, −[X + 2,4]), e o segundo local de injeção é (-1, 0,6, −[Y + 2,1]).
  6. Uma vez determinado o local da injeção, faça uma marca com um marcador estéril no crânio e registre as coordenadas.
  7. Perfure suavemente o local marcado com uma broca de crânio (consulte a Tabela de Materiais). Tome cuidado para evitar qualquer sangramento.
  8. Mova lentamente a agulha para as coordenadas indicadas e inicie a injeção. Para induzir a desmielinização do corpo caloso, injete 2 μL de solução de LPC (etapa 1.2) em cada local de injeção (etapa 3.5.) a uma taxa de 0,4 μL / min.
  9. Após a injeção, mantenha a agulha em cada local por mais 10 min.
    NOTA: Certifique-se de que o intervalo de duas injeções não seja superior a 20 min.
  10. Suturar a pele com uma sutura 4-0 e esperar o animal acordar em 10 min. Administrar analgésicos no pós-operatório de acordo com as normas institucionais de cuidados com animais.
    NOTA: O tempo recomendado para a eutanásia pode ser determinado de acordo com o objetivo do experimento.

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Divulgações

Não há conflitos de interesse declarados.

Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
L-α-lisofosfatidilcolina da gema de ovoSigma-AldrichL4129-25MG
Agulha de calibre 32HAMILTON7762-05
Seringa de 10 μlHAMILTON80014
Broca de crânio de alta velocidadestrong,coreiastrong204
PerfuraçãoHager & Meisinger, AlemanhaREF 500 104 001 001 005
Ventilador de Aneatesia Animal MatrxMARCA MÉDIAVMR
Instrumento Estereotáxico Portátil para MouseRecompensa68507
Micro seringaRecompensaKDS LEGATO 130
IsofluranoVETEASY
SuturaFUSUNPHARMA20152021225
Camundongos machos e fêmeas C57BL/6 adultosHunan SJA Laboratório Animal Co. Ltd

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