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1. Medição por citometria de fluxo de subunidades complexas MRC (cadeia respiratória mitocondrial) e TFAM (fator de transcrição mitocondrial A) em células fixas
- No final do período de cultura, separar as células (~106) adicionando o reagente de dissociação celular; em seguida, granular e recolher as células num tubo de 15 ml. Lave as células por centrifugação com solução salina tamponada com fosfato (PBS) (1x) duas vezes centrifugando a 300 × g por 5 min.
- Fixe as células em paraformaldeído (PFA) a 1,6% (1 mL de PFA a 1,6% em um tubo de 15 mL) à temperatura ambiente (RT) por 10 min. Lave as células por centrifugação com PBS (1x) duas vezes centrifugando a 300 × g por 5 min.
- Permeabilize as células com metanol a 90% gelado (1 mL de metanol a 90% em um tubo de 15 mL) a -20 °C por 20 min.
- Bloquear as amostras em tampão de bloqueio contendo glicina 0,3 M, soro de cabra a 5% e albumina de soro bovino (BSA) a 1% - Fração V em PBS (1x) (1 mL de tampão de bloqueio em tubo de 15 mL). Lave as células por centrifugação com PBS (1x) duas vezes.
- Incube as células com os seguintes anticorpos primários por 30 min: anti-NDUFB10 (1:1.000) para medição da subunidade do complexo I, anti-succinato desidrogenase complexo flavoproteína subunidade A (SDHA, 1:1.000) para medição da subunidade do complexo II e anti-COX IV (1:1.000) para medição da subunidade do complexo IV e anticorpo anti-TFAM (fator de transcrição mitocondrial A) conjugado com Alexa Fluor 488 (1:400). Aplique a coloração do mesmo número de células separadamente com anticorpo anti-TOMM20 (translocase da membrana mitocondrial externa 20) conjugado com Alexa Fluor 488 (1:400) por 30 min (1 mL de solução de anticorpo primário em um tubo de 15 mL; consulte a Tabela de Materiais para obter detalhes sobre os anticorpos).
- Lave as células com PBS (1x) uma vez com centrifugação a 300 × g por 5 min. Adicione anticorpo secundário (1:400) em tubos de NDUFB10, SDHA e COX IV e incube as células com essas soluções por 30 min.
- Lave as células com PBS (1x) uma vez, centrifugando a 300 × g durante 5 min. Aspire os sobrenadantes, deixando cerca de 100 μL nos tubos. Ressuspenda os grânulos celulares em 300 μL de PBS (1x). Transfira as células para tubos de microcentrífuga de 1,5 mL mantidos no escuro no gelo.
- Analise as células no citômetro de fluxo (com uma configuração de laser 3 azuis e 1 vermelho). Detecte sinais no filtro 1 (FL1) usando um filtro passa-banda 530/30.