É necessária uma assinatura do JoVE para visualizar este conteúdo. Faça login ou inicie seu teste gratuito.

Artigo de método

Coloração de fluorescência de células da crista neural cultivadas em hidrogéis de rigidez variável

712 vistas

8 de julho de 2025

Neste artigo

Resumo

Fonte: Le, T. P., et al., Um sistema otimizado de O9-1/hidrogel para estudar sinais mecânicos em células da crista neural. J. Vis. Exp. (2021)

Neste vídeo, descrevemos o procedimento para realizar a coloração de fluorescência usando microscopia de fluorescência para demonstrar a coloração com faloidina de células da crista neural cultivadas em hidrogéis de rigidez variável para visualizar e analisar a organização do citoesqueleto.

Protocolo

1. Análise molecular da rigidez por meio de coloração por imunofluorescência

  1. Use uma pinça para transportar a lamínula para uma nova placa para minimizar os sinais falsos das células cultivadas diretamente na placa. Lave as células com 500 μL de PBS estéril três vezes para remover as células mortas e qualquer meio de cultura restante.
  2. Fixe as células usando 500 μL de paraformaldeído a 4% (PFA) por 10 min à temperatura ambiente. Em seguida, relavar as células três vezes usando 500 μL de PBS/poço por 2 min cada.
    NOTA: Armazene a 4 °C para uma parada de procedimento.
  3. Trate as células com 500 μL de Triton X-100 a 0,1% por 15 min em temperatura ambiente. Em seguida, lave as células três vezes com 500 μL de PBS/poço.
  4. Bloqueie as células com 250 μL de soro de burro a 10% (diluído em PBS e 0,1% Tween 20) por poço por 30 min em temperatura ambiente.
  5. Incube as células com faloidina usada para coloração de F-actina em uma diluição de 1:400 em 250 μL de soro de burro a 10% por 30 min em temperatura ambiente. Em seguida, lave as células três vezes com PBS por 5 min cada.
    NOTA: A faloidina de 568 nm pode ser co-incubada com anticorpos secundários de 488 nm ou 647 nm ou sozinha.
  6. Incubar as células com 4′,6-diamidino-2-fenilindol (DAPI, diluição 1:1000) em 250 μL de PBS por 10 min, seguido de uma última lavagem de PBS por 2 min.
  7. Adicione 3-4 gotas de meio de montagem a cada poço. Armazene as amostras a 4 °C para endurecer por pelo menos 2 h antes da imagem para garantir que o meio de montagem foi ajustado corretamente.
  8. Com um microscópio de fluorescência, capture imagens de pelo menos 3 quadros aleatórios por amostra de hidrogel, produzindo canais individuais e mesclados.

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Divulgações

Não há conflitos de interesse declarados.

Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
2 mm #1 Corning 0211 lamínula de vidroCiências da Vida ChemglassCLS-1763-012
25 mm #1 Corning 0211 Lamínula de VidroCiências da Vida ChemglassCLS-1763-025
Placa de cultura de células de 4 poçosThermo Scientific179830
4% ParaformaldeídoSigma AldrichJ61899-AP
40% de acrilamidaSigma AldrichA4058
Alexa Fluor 488 FaloidinaThermo FisherA12379
Colágeno tipo I (100mg)Corning354236
DAPI (4',6-Diamidino-2-fenilindo, dicloridrato)Thermo FisherD1306
Soro de burroSigma AldrichD9663
Estéril 1x PBSHycloneSH30256.02
Microscópio de fluorescênciaLeica

Etiquetas

Rigidez do HidrogelColora o com FaloidinaVisualiza o de F actinaOrganiza o Citoesquel ticaMicroscopia de Fluoresc nciaFixa o com Paraformalde doPermeabiliza o com Triton X 100Colora o Nuclear com DAPI