Artigo de método

Microdissecção por captura a laser para isolar células de Purkinje de um tecido humano post-mortem do cerebelo

8 de julho de 2025

Neste artigo

Resumo

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Fonte: Martuscello, R. T., L. et al., Um Protocolo Inoxidável para Isolamento de RNA de Alta Qualidade de Células de Purkinje Microdissecadas por Captura a Laser no Cerebelo Post-Mortem Humano. J. Vis. Exp. (2019)

Este vídeo demonstra como isolar células de Purkinje de um tecido cerebelar humano post-mortem usando microdissecção por captura a laser.

Protocolo

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Todos os procedimentos que envolvem a coleta de amostras foram realizados de acordo com as diretrizes do IRB do instituto.

1. Seccionamento de tecido

  1. Corte um pequeno pedaço do tecido (~ 1 cm x 1 cm) para seccionar. Retorne o lenço restante para gelo seco/freezer a -80 °C.
    NOTA: Certifique-se de que a seção do tecido tenha ~ 95% do córtex cerebelar, onde as células de Purkinje estão localizadas.
  2. Coloque um monte de OCT de aproximadamente 3 mm de altura para cobrir o 'mandril'. Comece construindo as camadas no topo em um movimento lento e circular até que haja um pequeno monte.
  3. Quando a OCT estiver parcialmente congelada, mas ainda tiver algum líquido no centro, coloque o lenço de papel em cima dela. Não empurre o tecido profundamente para dentro da OCT. Deixe o tecido descansar em cima dele até que esteja completamente congelado, o que levará de 1 a 2 minutos.
  4. Colocar o «mandril» com OCT congelado e o tecido no braço de corte do criostato. Ajuste o tecido para que fique nivelado com a lâmina de corte.
  5. Deixe o tecido descansar no braço de corte por 15 a 20 minutos para se ajustar à nova temperatura.
    NOTA: Dependendo da espessura do tecido, é necessário tempo para a aclimatação da temperatura. Deixe o tecido descansar o tempo necessário para cortar de forma limpa. Ajuste OT e CT para auxiliar na aclimatação à temperatura do tecido.
  6. Mova lentamente o tecido para mais perto da lâmina. Assim que o tecido atingir a lâmina, inicie o processo de corte. A espessura do corte deve ser definida para 30 μm.
  7. Apare 2–3x até que as camadas do córtex estejam visíveis.
  8. Coloque e alinhe a placa estabilizadora logo acima da lâmina do criostato.
    NOTA: Uma linha prateada aparecerá da luz no criostato na interface da lâmina e da placa estabilizadora. Isso indica que a placa estabilizadora está diretamente sobre a borda da lâmina.
  9. Comece a cortar as seções a 14 μm. As seções cortadas corretamente serão planas sob a placa estabilizadora.
    NOTA: Se o tecido estiver preso, certifique-se de que a placa estabilizadora esteja fria o suficiente. Se necessário, colocar um pedaço de gelo seco do lado de fora (lado que não toca no palco) resfriará rapidamente a placa estabilizadora.
  10. Corte de 4 a 6 seções e alinhe-as horizontalmente no criostato stage.
  11. Inclinando a lâmina, pegue todos os pedaços do tecido de uma só vez.
    NOTA: Usando as escovas, levante as extremidades do lenço de papel para torná-las mais prontamente disponíveis para a lâmina após a coleta. Não pegue uma seção de cada vez. A exposição ao ar à temperatura ambiente degradará a integridade do RNA.
    CUIDADO: Não deixe a membrana tocar o estágio do criostato. Se a membrana tocar o palco, ela começará a se soltar da lâmina de vidro e causará erros ao tentar o LCM.
  12. Vá imediatamente para a Etapa 6. Não atrase a fixação.

2. Fixação de Tecido/Visualização Stainless

  1. Passe imediatamente para o protocolo de fixação de etanol
  2. Coloque a lâmina no suporte da lâmina com etanol a 70% por 2 min - no gelo.
  3. Coloque a lâmina no suporte da lâmina com etanol a 95% por 45 s - no gelo.
  4. Coloque a lâmina no suporte da lâmina com etanol 100% por 2 min - em RT.
  5. Mergulhe a lâmina 3 vezes no suporte da lâmina com xileno 1 — em RT.
  6. Coloque o slide no suporte do slide com xileno 2 por 5 min - em RT.
  7. Deixe secar em local limpo por pelo menos 30 minutos. Tempos de secagem mais longos, de até 60 minutos, são ideais.
    CUIDADO: Use corrediças verticais para secar em uma capela de exaustão. O xileno é volátil. Colocar as lâminas planas fará com que o xileno se acumule na seção de tecido, tornando o tecido muito escuro.

3. Descongelar slides armazenados para uso

  1. Remova o tubo com uma única lâmina do freezer a -80 °C 1 h antes do uso pretendido.
  2. Não abra imediatamente o tubo. Deixe o tubo atingir a temperatura ambiente. A condensação ocorrerá apenas na parte externa do tubo.
  3. Assim que o tubo atingir a temperatura ambiente e toda a condensação desaparecer (aproximadamente 30–40 min), remova a tampa e exponha a lâmina ao ar em temperatura ambiente.
  4. Deixe o slide se aclimatar à temperatura ambiente por 15 a 20 minutos. Em seguida, deixe-o dentro do tubo com a tampa removida.
    NOTA: O slide agora está pronto para LCM.

4. Microdissecção por captura a laser de células de Purkinje:

NOTA: Esta seção do protocolo discutirá apenas detalhes relacionados à captura de células de Purkinje para sequenciamento de RNA subsequente. Esta seção pressupõe que o usuário esteja familiarizado com o microscópio de captura a laser UV e o software afiliado.

  1. Limpe o microscópio stage e o braço de coleta da tampa com o descontaminador RNase.
  2. Com as mãos enluvadas, coloque a lâmina no microscópio e a tampa opaca de 500 μL no braço de coleta.
    NOTA: Sempre garanta a técnica adequada de RNA limpando a área de trabalho com um descontaminante de RNase e usando as mãos enluvadas ao tocar na corrediça ou tampa opaca. As luvas podem ser removidas assim que a corrediça e a tampa estiverem no lugar e a captura a laser começar.
  3. Com baixa ampliação, alinhe a tampa opaca sobre o tecido cerebelar, garantindo que a tampa cubra toda a área visualizada na ocular.
    NOTA: Apenas a ocular do microscópio mostrará se a tampa opaca está centralizada. A câmera não mostrará se a tampa está centralizada sobre o tecido. Dependendo do design do escopo de captura a laser, a visualização através da tampa opaca será apenas na ocular ou visualizada na ocular e na câmera.
  4. Visualize as camadas cerebelares com lente objetiva de 5x - 10x e coloque o cursor sobre a seção onde a camada molecular e a camada de células granulares se cruzam (a camada de células de Purkinje).
  5. Mova para 40X e visualize as células de Purkinje.
    NOTA: Consulte Figura 1 e Figura 2 para obter exemplos de visualizações.
  6. Comece a capturar células de Purkinje.
    NOTA: Pelo menos 5 ng de RNA são necessários para realizar o sequenciamento de RNA. Aproximadamente 1600-2000 células de Purkinje produzem material de RNA suficiente para sequenciamento. O RNA ficará estável por até 8 horas no microscópio. Teste a energia UV e o foco UV antes da coleta para garantir que os níveis estejam corretos. Com o tempo, o tecido continuará a secar e a energia UV e o foco UV podem precisar ser alterados.

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Resultados

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Figura 1: Camadas cerebelares e visualização de células de Purkinje com e sem tratamento com xileno. Imagens representativas com e sem xileno após fixação de etanol e desidratação. A camada molecular (ML) e a camada de células granulares (GCL) são marcadas. As células de Purkinje são marcadas com setas. (A) Representação 5X da visualização da camada cerebelar sem xileno. Barra de escala: 10 μm. (B) R...

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Divulgações

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Não há conflitos de interesse declarados.

Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
MembraneSlide NF 1.0 PENZeiss415190-9081-000Lâminas de membrana para tecido. Não recomendamos o uso de lâminas de vidro.
AdhesiveCap 500 OpacoZeiss415190-9201-000As tampas opacas são usadas para aprimorar a visualização somente em escopos invertidos
RNase AusenteBioProdutos Moleculares7005-11Outros produtos de descontaminação RNase também são adequados. Use para limpar todas as superfícies antes do trabalho.
200 Etanol de ProvaLaboratórios Decon2701Se estiver usando etanol alternativo, garanta alta qualidade. Essencial para a fixação do tecido.
Xilenos (ACS certificado)Fisher ScientificX5P-1GALSe estiver usando xileno alternativo, garanta alta qualidade. Essencial para a visualização do tecido.
Água Destilada UltraPuraInvitrogen10977-015Outra água livre de RNA / DNA / Nuclease também é adequada. Utilizado apenas na diluição de etanol.
Frascos de slides Slide-FixPerene240-5440-G8KQualquer porta-slides/jarra também é adequado. Deve ser limpo antes do uso. Utilizado para fixação após seccionamento.
Placa anti-rolamento, Assy. 70mm 100umLeica Biosystems14041933980O tipo de placa estabilizadora é determinado pelo tipo de criostato e localização da fixação no palco. Todos os criostatos têm requisitos diferentes.
KimwipesFisher Scientific06-666AKimwipes podem ser encomendados de qualquer fornecedor e usados em qualquer tamanho. Kimwipes devem ser usados para limpar microscópio e criostato.
Composto Tissue-Plus O.C.T.Fisher Scientific23-730-571Qualquer marca de OCT é aceitável. Nenhum tecido será incorporado na OCT, é difícil anexar o tecido ao 'mandril'.
Lâminas de micrótomo de baixo perfil Edge-RiteThermo Scientific4280LO tipo de lâmina é determinado pelo tipo de criostato. Todos os criostatos têm requisitos diferentes.
Leica Microsystems 3P 25 + 30MM MANDRIS DE CRIOSTATOFisher ScientificNC0558768O tipo de mandril é determinado pelo tipo de criostato. Todos os criostatos têm requisitos diferentes. Qualquer tamanho é adequado.

Reimpressões e permissões

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Cerebelo HumanoSeccionamento de TecidoSeccionamento por CriostatoDesidrata o em EtanolClarifica o com XilenoCaptura por Laser UVIsolamento CelularExtra o de RNA

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