Method Article

Geração de um modelo esferóide tridimensional de invasão de células tumorais

April 28th, 2025

In This Article

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Fonte: Guyon, J., et al. Um modelo esferóide 3D para glioblastoma. J. Vis. Exp. (2020)

O vídeo demonstra a geração de um modelo esferóide tridimensional de invasão de células tumorais. Os esferóides são formados a partir de células tumorais cerebrais humanas e incorporados em uma matriz de colágeno. As células tumorais na periferia esferóide adotam um fenótipo invasivo, secretando proteases para degradar o colágeno e avançando para invadir a matriz circundante.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Geração de esferoides tumorais de tamanho uniforme

NOTA: As células-tronco são cultivadas em meio neurobasal complementado com suplemento B27, heparina, fator de crescimento de fibroblastos 2 (FGF-2), penicilina e estreptomicina. Essas células formam esferoides espontaneamente em cultura.

  1. Lave as células tumorais com 5 mL de solução salina tamponada com fosfato (PBS) e incube as células com 0,5-1 mL de enzima de dissociação por 5 minutos a 37 °C.
  2. Lave com 4-4,5 mL de PBS e adicione 10 mL do meio de crescimento completo (meio neurobasal completo, cNBM).
  3. Conte as células usando uma técnica de contagem automática com azul de tripano e uma lâmina de câmara de contagem de células.
  4. Para gerar 100 esferoides com 104 células por esferóide (de acordo com o tamanho preferido), misture 106 células em 8 mL de NBM com 2 mL de 2% de metilcelulose.
  5. Transfira a suspensão para um recipiente de sistema estéril e dispense 100 μL/poço com uma pipeta multicanal em uma placa inferior redonda de 96 poços.
  6. Incube a placa a 37 °C, 5% de CO2 e 95% de umidade. Esferóides de tamanho igual se formarão e podem ser usados após 3-4 dias.

2. Experimentos

  1. tridimensionaisInvasion
    1. Preparation
      1. Prepare a matriz de colágeno em um tubo de gelo com colágeno tipo I na concentração final de 1 mg/mL, 1x PBS,colágeno 0,023xV, hidróxido de sódio 1 M e H2O estéril. Incube a solução em gelo por 30 min.
      2. Colete os esferoides da placa de fundo redondo em tubos de 500 μL e lave 2x com 200 μL 1x PBS.
      3. Pipete os esferoides cuidadosamente em 100 μL da matriz de colágeno e insira no centro de um poço em placas normais de 96 poços.
      4. Incube o gel de colágeno por 30 min a 37 °C e, em seguida, adicione cNBM em cima do gel. Inibidores ou ativadores (por exemplo, cloreto de hidrogênio, conforme mostrado na Figura 1B, 1C) podem ser adicionados ao meio nesta etapa.
    2. Aquisição e análise de imagens
      1. Tire fotos sequencialmente com um videomicroscópio no modo de campo claro 24 h após a inclusão do colágeno.
      2. Use Fiji para analisar imagens manualmente ou de maneira semiautomatizada. Para fazer isso manualmente, desenhe ao redor do núcleo e da área total do esferóide com a ferramenta de seleção à mão livre e meça a área invasiva de cada esferóide subtraindo a área total com a área do núcleo. Para analisar as imagens de maneira semiautomatizada, use uma macro para determinar a área invasiva.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Results

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

figure-results-1

Figura 1: Glioblastoma P3 esferóide em ensaios de proliferação, invasão ou migração. (A) Ensaio de proliferação. Painel esquerdo: Imagens representativas com DMSO como controle ou com 20 μM de rotenona (inibidor do complexo I da cadeia respiratória) no tempo 0 ou 72 h. Painel direito: Quantificação da área esferóide representada como linhas tracejadas nas ...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

< >< classe de figura='tabela' estilo = 'largura: 727pt;' classe de tabela = 'ck-table-redimensionado'< estilo col = 'largura: 23,66%;'>< estilo col = 'largura: 12,52%;'>< estilo col = 'largura: 12,93%;'>< estilo col = 'largura: 50,89%;'>List of materials used in this article Name Company Catalog Number Comments < estilo td = 'altura: 14,5pt;'>96 placa de fundo redondo de poçoFalcon08-772-212 AccutaseGibcoA11105-01Armazenado a 4 ° C, enzima de dissociação de esferaB27Gibco12587Armazenado a -20 °C, descongelar antes de usarBasic Fibroblast Growth FactorPeprotech100-18BArmazenado a -20 °C, descongelar antes de usarDPBS 10XPan BiotechP04-53-500Armazenado a 4 °CMethylcelluloseSigmaM0512Diluído em NBM para uma concentração final de 2% NBMGibco21103-049Armazenado a 4 °CNeurobasal mediumGibco21103049Armazenado a 4 °CPenicilina - EstreptomicinaGibco15140-122Armazenado a 4 °CColágeno tipo ICorning354236Armazenado a 4 °C

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

3D Spheroid ModelTumor Cell InvasionGlioblastoma ModelCollagen Matrix EmbeddingMethylcellulose SuspensionDissociation Enzyme TreatmentSpheroid Formation ProtocolExtracellular Matrix DegradationProtease Secretion AnalysisInvasive Phenotype Assessment

Related Articles