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Análise ultraestrutural de uma seção cerebral de camundongo usando microscopia eletrônica de transmissão

April 28th, 2025

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Abstract

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Fonte: Lutz, D., et.al. Avaliação dos parâmetros de neuroplasticidade ultraestrutural após transdução in utero do cérebro e da medula espinhal de camundongos em desenvolvimento. J. Vis. Exp. (2019).

Este vídeo demonstra a preparação e análise de microscopia eletrônica de transmissão (TEM) de uma seção do cérebro de um filhote de camundongo. O protocolo começa com tecido fixado em tetróxido de ósmio embebido em resina, seguido de corte preciso para isolar a região de interesse e ultramicrotomia para produzir cortes semifinos e ultrafinos, que são visualizados usando microscopia de luz e TEM, respectivamente.

Protocol

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Todos os procedimentos envolvendo amostras de animais foram revisados e aprovados pelo comitê de revisão ética animal apropriado.

1. Seleção de Parâmetros de Neuroplasticidade Ultraestrutural para Análise Quantitativa

  1. Mapeando a área de interesse
    1. Escolha uma área de interesse (por exemplo, hipocampo ou cerebelo) e localize a área no atlas de seção escolhendo a imagem do atlas que contém essa área.
    2. Esboce as bordas da área de interesse na imagem da seção e encontre/sobreponha essas bordas da região na amostra de resina.
    3. Marque as bordas da área de interesse (por exemplo, hipocampo ou cerebelo) na amostra de resina, usando um calibre de agulha fina (26 G, 1 pol).
    4. Aqueça a amostra de resina a 85 °C em um forno para amolecer a resina para aparar ou, alternativamente, use um dispositivo de corte, uma lâmina fina ou lixa.
    5. Extirpar a área de interesse da amostra de resina com uma lâmina de barbear. Montar o provete em barras de suporte de vidro acrílico do calibre necessário (por exemplo, com um diâmetro de 8 mm e um comprimento de 1 cm) com cola. Apare a amostra montada para seccionamento semifino e ultrafino.
    6. Prepare seções semifinas (0,75 μm) e ultrafinas (70 nm) da área aparada usando um ultramicrótomo: ajuste-o em 1,5 mm/s para 0,75 μm de espessura e em 0,7 mm/s para 70 nm de espessura.
    7. Colete as seções semifinas em suportes de vidro e pinte as seções com azul de toluidina a 1% em PBS (por 4 min).
    8. Lave as seções várias vezes em água deionizada. Examine as seções coradas ao microscópio óptico usando objetivas 4x (NA de 0,1 ∞/-), 10x (NA de 0,22 ∞/0,17), 40x (NA de 0,65 ∞/0,17) e 100x (NA de 1,25 ∞/0,17).
    9. Colete seções ultrafinas em grades de níquel. Submeter as grades a TEM a 180 kV e a uma ampliação de 3.200x, 6.000x e/ou 8.000x.
  2. Análise TEM
    1. Escolha os parâmetros ultraestruturais de interesse para análise quantitativa de TEM (por exemplo, botões com vesículas e mitocôndrias ou axônios mielinizados e não mielinizados) e tire imagens TEM desses parâmetros com ampliação de 3.500x, 6.000x e/ou 8.000x.

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Microscópio óptico Basic DM ELeica-4x (N.A. 0,1 ∞/-), 10x (N.A. A. 0,22 ∞/0,17), 40x (N.A. 0,65 ∞/0,17), 100x (N.A. 1,25 ∞/0,17) objetivas
Pinça hemostática Mosquito (12,5cm, curva)FST13010-12
Nickel grids, 200 meshTed Pella1GC200
Razor bladesSchick87-10489
Technovit 4004 two components glueKulzer
Dispositivo de lâmina de barbear vibratória fina-com lâminas
Toluidine blueSigma-Aldrich89640
Microscópio eletrônico de transmissão C20Phillips-até 200 kV
Ultracut EReichert-Jung-ultramicrotome
AralditeCIBA-GEIGY23857.9resina para incorporação de tecido
Ósmio (VIII)-óxido Degussa 73219
< estilo td = 'largura: 179pt;'>Krup finas Szabo

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