Artigo de método

Imagem longitudinal de dois fótons de neurônios marcados com fluorescência em um hipocampo de camundongo vivo

29 de maio de 2025

Neste artigo

Resumo

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Fonte: Ulivi, A. F., et. al. Imagem longitudinal de dois fótons do hipocampo dorsal CA1 em camundongos vivos. J. Vis. Exp. (2019)

Este vídeo demonstra imagens longitudinais de dois fótons de neurônios piramidais marcados com fluorescência em um camundongo vivo, apresentando a preparação, alinhamento da cânula e imagem de dendritos e espinhas dendríticas para estudar a estrutura neuronal na região CA1 do hipocampo.

Protocolo

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Todos os procedimentos envolvendo modelos animais foram revisados pelo comitê institucional local de cuidados com animais e pelo conselho de revisão veterinária do JoVE.

  1. Preparação da sessão de imagem
  2. Ative a configuração da imagem com antecedência e deixe o laser aquecer e estabilizar, se necessário.
  3. Anestesie o mouse. Coloque o mouse na câmara de indução de anestesia a 3% de isoflurano em 1 L/min O2 e espere até que perca a consciência. Avalie a anestesia usando o teste do reflexo de pinça do dedo do pé.
  4. Use uma pinça para remover cuidadosamente o filme adesivo da placa de suporte da cabeça. Segure o mouse com a mão e a placa de suporte da cabeça com os dedos. Remova o filme com cuidado, para evitar danificar a preparação.
  5. Posicione o mouse sob o microscópio, sobre o tapete de aquecimento, e prenda a placa da cabeça ao suporte (Figura 1D).
  6. Posicione o cone do nariz para cobrir o focinho e diminua o isoflurano para 1,5-2%.
  7. Aplique pomada oftálmica nos olhos do camundongo.
  8. Limpe a cânula de imagem enxaguando-a com água deionizada. Use uma seringa e uma agulha fina para colocar água na cânula e uma bomba de vácuo para removê-la.

2. Sessão de imagem

  1. Use objetivas de baixa ampliação e longa distância de trabalho para verificar visualmente a cânula quanto a água residual, sujeira, integridade e presença de fluorescência.
  2. Alinhe a cânula ao eixo óptico ajustando os ângulos dos braços do suporte da cabeça.
  3. Mude para as objetivas de imersão em água 25X 1.0 NA (abertura numérica), 4 mm WD (distância de trabalho) ou 40X 0.8 NA, 3 mm WD. Adicione água deionizada suficiente para encher a cânula e mantenha o excesso de água em cima da cânula. Evite a formação de bolhas de ar.
  4. Use excitação de dois fótons (2P) e sinais fluorescentes de imagem.
    NOTA: O protocolo de imagem é altamente dependente das escalas de tempo e espacial a serem visualizadas. Consulte os resultados representativos da seção e a discussão para obter detalhes sobre as configurações de imagem que usamos para produzir as imagens mostradas neste artigo.

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Resultados

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

figure-results-1

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Tubo de aço inoxidável Ø 3,0 x 0,25 mm (Ø interno 2,5 mm) L = 500 mmSawadeR00303Tubo de aço inoxidável para o anel de metal da cânula
Microscope Cover glass (4 mm round)Engelbrecht Medizin e Labortechnik Lamínulas de vidro para a cânula de vidro
Isofluran CP, Flasche 250 mlHenry Schein VET GmbH798932Liquid isoflurano para anestesia
Harvard Apparatus Isoflurane Funnel-Fill VaporizerHarvard Apparatus GmbH34-1040Vaporizador de isoflurano
Lab Active ScavengerGropper MedizintechnikUV17014Isoflurano sistema de limpeza
CMA 450 Temperature ControllerHugo Sachs Elektronik - Harvard Apparatus GmbH8003770Cobertor de aquecimento
Bepanthen Augen- und NasensalbeBayer AG Ophtalmic oftalmic
Head platesCustom feito 30 mm x 10 mm tamanho; orifício de 8 mm de diâmetro, titânio
Head plate clampFeito sob medida Head plate holder
Suportes de postes de pedestalThorlabsPH20E/MSuporte da placa da cabeça
Poste de aço inoxidávelThorlabsTR30/MSuporte da placa da cabeça
Poste de aço inoxidávelThorlabsTR75/MSuporte da placa da cabeça
Poste de aço inoxidávelThorlabsTR150/MSuporte da placa da cabeça
Post grampos do conectorCustom made Suporte da placa de cabeça
Placa de ensaio de alumínio, 300 mm x 450 mm x 12,7 mm, M6 TapsThorlabsMB3045/MEstágio do microscópio
7" x 4" Lab JackThorlabsL490/MEstágio do microscópio
Low profile face mask small miceEmka TechnologiesVetFlo-0801Suporte de máscara facial de anestesia
Power Meter Model 1918-RNewport Medidor de potência
X-Cite 120QExcelitas Technologies Lâmpada de fluorescência
Microscópio de dois fótonsBrukerUltima IVMicroscópios de dois fótons
Microscópio de dois fótonsThorlabsBergamoMicroscópios de dois fótons
Plan N 4x/0.10 ∞/-/FN22Olympus Objetivos
Plan N 10x/0.25 ∞/-/FN22Olympus Objectives
LMPlan FLN 20x/0.40 ∞/-/FN26.5Olympus Objetivos
XLPlan N 25x/1.00 SVMP ∞/0-0.23/FN18Olympus Objectives
Ultafast laser sintonizável para excitação 2PSpectraphysicsMai Tai Deep SeeExcitaiton lasers
Ultafast laser sintonizável para excitação 2PSpectraphysicsInSight DS+ Dual beamExcitaiton lasers
Ultafast laser sintonizável para excitação 3PCoerenteMonacoExcitaiton Lasers

Reimpressões e permissões

Solicitar permissão para reutilizar o texto ou as figuras deste artigo JoVE

Solicitar permissão

Etiquetas

Neur nios FluorescentesCA1 HipocampalAlinhamento de C nulaEspinhos Dendr ticosImagem LongitudinalObjetiva de Imers o em guagua DeionizadaPlaca Craniana

Artigos relacionados