Artigo de método

Visualizando a morfologia dos astrócitos usando iontoforese de corante fluorescente em uma fatia de cérebro de camundongo fixa

29 de maio de 2025

Neste artigo

Resumo

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Fonte: Moye, S. L., et.al. Visualizando a morfologia dos astrócitos usando a iontoforese amarela de Lúcifer. J. Vis. Exp. (2019).

Este vídeo demonstra o uso de iontoforese de corante fluorescente para estudar a morfologia de astrócitos em fatias fixas de cérebro. Ele detalha a perfuração do soma do astrócito com um eletrodo para fornecer um corante aniônico e hidrofílico no citoplasma sob uma corrente de baixa voltagem, permitindo que o corante se difunda e rotule o soma e os ramos. A microscopia confocal é então usada para visualizar os astrócitos marcados, fornecendo informações morfológicas.

Protocolo

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Todos os procedimentos envolvendo amostras de animais foram revisados e aprovados pelo comitê de revisão ética animal apropriado.

1. Preenchendo astrócitos com iontoforese

  1. Teste o eletrodo.
    1. Coloque uma fatia de cérebro delicadamente em um prato com fundo de vidro cheio de 0,1 M PBS em temperatura ambiente. Segure a fatia no lugar com uma harpa de platina com cordas de náilon.
    2. Certifique-se de que o eletrodo esteja conectado a um voltage fonte e coloque o eletrodo de aterramento no banho contendo a fatia de cérebro.
    3. Mova o objetivo para a região do cérebro de interesse.
    4. Abaixe o eletrodo na solução. Sob o campo claro, mova-o para o centro do campo de visão e examine-o cuidadosamente com a lente de imersão em água de 40x para garantir que pareça claro e sem detritos ou bolhas. Se houver algo entupindo a ponta do eletrodo, substitua-a por uma nova.
      NOTA: O entupimento é uma preocupação para o eletrodo de 200 MΩ. Com centrifugação e filtração da solução de corante antes de cada experimento, isso não deve ser um problema frequente. No entanto, como a ponta do eletrodo é pequena, o tecido às vezes pode ficar preso na abertura. Os autores não encontraram uma maneira de evitar isso, mas pode ser facilmente resolvido simplesmente usando um novo eletrodo.
    5. Sob o campo claro, abaixe lentamente o eletrodo em direção à fatia, parando logo acima da superfície.
  2. Encha o astrócito com iontoforese.
    1. Identifique astrócitos 40−50 μm abaixo da superfície da fatia com o contraste de interferência diferencial infravermelho (IR-DIC). Procure células com somata alongada e oval com cerca de 10 μm de diâmetro. Depois que um astrócito for escolhido, mova-o para o centro do campo de visão.
      NOTA: Uma boa célula para iontoforese tem bordas claras e definidas ao seu redor. Não escolha células muito próximas da superfície da fatia porque elas não podem ser completamente preenchidas. É preciso um pouco de prática ao longo de alguns dias para ser capaz de identificar rotineiramente astrócitos para preenchimento de corante. Dependendo da área do cérebro usada para o experimento, o número de astrócitos pode variar. Isso pode afetar o tempo necessário para identificar um astrócito antes do enchimento.
    2. Abaixe lentamente a ponta do eletrodo na fatia, navegando pelo tecido, até que esteja no mesmo plano do corpo celular.
      NOTA: Mova o eletrodo lentamente para evitar danificar o tecido.
    3. Uma vez que o corpo celular do astrócito esteja claramente visível e delineado, avance lenta e suavemente o eletrodo para frente. Mova o eletrodo até que a ponta empale o soma da célula. Mova o foco da objetiva lentamente para cima e para baixo para observar se o eletrodo está dentro do soma.
      NOTA: A ponta do eletrodo deve estar dentro do corpo celular e um pequeno recuo no soma deve ser observado. Não mova mais o eletrodo para evitar que a ponta atravesse a célula.
    4. Assim que a ponta do eletrodo estiver dentro da célula, ligue o estimulador em ~0,5−1 V e ejete continuamente a corrente para dentro da célula. Usando o microscópio confocal, observe o enchimento da célula. Aumente o zoom digital para ver os detalhes da célula e certifique-se de que a ponta do eletrodo esteja visível dentro da célula.
      NOTA: Diminua a tensão se parecer que o corante está vazando da célula ou preenchendo outras células nas proximidades. Se parecer que o corante ainda está vazando para fora da célula, puxe o eletrodo lentamente e encontre outra célula. É importante que o corante não vaze para ter uma alta relação sinal/fundo na imagem final.
    5. Aguarde cerca de 15 min até que os ramos e processos mais finos pareçam definidos, desligue a tensão e retire suavemente a ponta do eletrodo da célula.
  3. Imagem da célula preenchida.
    NOTA: A imagem pode ser realizada imediatamente após o preenchimento. Uma objetiva com uma abertura numérica (NA) mais alta resulta em melhor resolução.
    1. Aguarde até que a célula retorne à sua forma original antes de obter imagens (15 a 20 min) com objetiva de 40x. Para criar imagens da célula, ajuste a configuração no confocal para garantir que as ramificações e processos mais finos pareçam definidos.
    2. Configure uma pilha z com um tamanho de passo de 0,3 μm. Durante a imagem, mova a objetiva até que não haja sinal da célula e defina-a como o topo. Em seguida, mova o objetivo para baixo (focando através da célula) até que não haja sinal, defina-o como a parte inferior.

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Pipetas de vidro borossilicato com filamentoInstrumentos de precisão mundiais1B150F-4
Microscópio confocal de varredura a laserOlympusFV1000MPEUma alternativa semelhante pode ser usada
Software Imaris (Versão 7.6.5)Bitplane Inc. Uma alternativa semelhante pode ser usada
Lucifer Yellow CH dilithium saltSigmaL0259
Lucifer Yellow CH dipotassium saltSigmaL0144
Lente objetiva (40x)OlympusLUMPLFLN 40XWUma alternativa semelhante pode ser usada
Lente objetiva (60x)OlympusPlanAPO 60XUma alternativa semelhante pode ser usada
Comprimidos PBS, 100 mLVWRVWRVE404Uma alternativa idêntica pode ser usada
Micromanipulador de pipeta - Modelo ROE-200SutterMP-285 / ROE-200 / MPC-200Uma alternativa semelhante pode ser usada
Cloreto de potássioSigmaP3911Uma alternativa idêntica pode ser usada
Estimulador- Modelo Omnical 2010World precision instrumentsOmnical 2010Uma alternativa semelhante pode ser usada

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