É necessária uma assinatura do JoVE para visualizar este conteúdo. Faça login ou inicie seu teste gratuito.

Artigo de método

Injeção viral estereotáxica para edição de genes neuronais direcionados no cérebro de camundongos

2.4K visualizações

7 de agosto de 2025

Neste artigo

Resumo

Fonte: Fricano-Kugler, C. J., et al. Projeto, embalagem e entrega de CRISPR retro e lentivírus de alto título por meio de injeção estereotáxica. J. Vis. Exp. (2016)

Este vídeo demonstra a injeção viral estereotáxica para edição precisa de genes neuronais no cérebro de camundongos. O protocolo garante a entrega precisa do vírus ao giro denteado, permitindo a marcação fluorescente e o nocaute genético mediado por CRISPR para estudar circuitos neurais, função gênica e mecanismos de doenças in vivo.

Protocolo

Todos os procedimentos envolvendo modelos animais foram revisados pelo comitê institucional local de cuidados com animais e pelo conselho de revisão veterinária do JoVE.

1. Injeção estereotáxica

  1. Confirme se a ventilação da sala de cirurgia está aberta para garantir o fluxo de ar adequado. Prepare o camundongo para a cirurgia anestesiando-o com isoflurano a 4% em uma câmara de indução. Após a anestesia, raspe a cabeça para preparar o local da injeção.
    1. Coloque o mouse no instrumento estereotáxico usando uma pinça para mover a língua para baixo e para o lado. Insira a barra de mordida na boca até que os dentes caiam na ranhura e, em seguida, prenda as barras auriculares. Certifique-se de que o corpo do mouse esteja na almofada de aquecimento e o nariz esteja situado no cone do nariz. Direcione o isoflurano a 4% para o cone do nariz. Confirme a anestesia beliscando o pé com uma pinça e garantindo que não haja reflexo de sobressalto.
    2. Aplique lágrimas artificiais para lubrificar os olhos. Termine de preparar o local da injeção esfregando a cabeça raspada com rodadas alternadas de iodopovidona e lidocaína.
  2. Usando um bisturi, faça uma pequena incisão ao longo do centro do couro cabeludo. Seque o crânio com um cotonete e peróxido de hidrogênio, se necessário, para ajudar a visualizar o bregma.
    1. Usando um escopo de dissecação, localize o bregma no crânio e coloque a ponta da broca no bregma. Zero (ou registro) as coordenadas estereotáxicas digitais nos planos x, y e z.
    2. Para garantir que a cabeça esteja nivelada no eixo y rostral para caudal, coloque a broca em lambda e nivele a cabeça de modo que a coordenada z seja aproximadamente igual em bregma e lambda.
    3. Para garantir que a cabeça esteja nivelada no eixo x, coloque a broca em y = 1/2 lambda. Certifique-se de que a coordenada z seja igual a 1 mm de cada lado (x = +/- 1 mm) da sutura sagital. Ajuste o crânio se houver uma diferença na coordenada z a 1 mm à esquerda e à direita de lambda.
  3. Coloque a broca sobre as coordenadas desejadas. Para o giro dentado, use as coordenadas y = -1,9 de bregma e x = +/- 1,1. Antes de perfurar, abaixe o isoflurano para 2% e, em seguida, perfure lenta e cuidadosamente o crânio.
    1. Depois de fazer todos os orifícios, fixe a seringa cheia no instrumento estereotáxico. Centralize visualmente a seringa sobre o orifício e zere a coordenada z no crânio.
    2. Abaixe lentamente a seringa até a profundidade z mais profunda. Para o giro denteado, as profundidades z são -2,5, -2,4 e -2,3. Inicie a injeção a uma taxa de 0,25 μl/min usando um injetor estereotáxico.
      1. Depois que a injeção estiver concluída na profundidade Z mais baixa, aguarde 1 min, aumente para a próxima coordenada e comece a injeção novamente. Continue esse padrão até que todas as coordenadas de injeção z sejam injetadas. Aguarde 2 minutos antes de remover a seringa após a última injeção.
        NOTA: Nenhum efeito adverso foi observado no tecido injetando até 2 μl de vírus por hemisfério no cérebro do camundongo.
    3. Repita a injeção para outros furos.
  4. Após a injeção, remova o mouse do instrumento estereotáxico e suture o couro cabeludo com suturas de seda 6-0. Aplique lidocaína e um creme antibacteriano na ferida.
    1. Injete 0,8-1,0 ml de solução salina + cetoprofeno (3-5 mg/kg) por via intraperitoneal (I.P.) para controlar a dor. Em seguida, coloque o mouse na câmara de recuperação aquecida. Não deixe o animal sozinho até que ele tenha recuperado a consciência suficiente para manter a decúbito esternal. Não devolva o animal à companhia de outros animais até que ele esteja totalmente recuperado.

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Stereotaxic Surgery Reagents
Vet-Syringe vet use T.B. Seringa apenas 1cc luer slip T.B. 100/bxMed-Vet International1CCVLS Isoflurano
 
Lâminas de bisturi de aço inoxidável, #10, 100-pkMed-Vet InternationalJOR580S
Pomada de lágrima artificialMed-Vet InternationalRXPARALUBE-O
PVP PrepSolutionMed-Vet InternationalHPIV108208H
Aplicadores de soro normalMed-Vet InternationalDYND500MLSH
CottonMed-Vet InternationalCTA6
Pomada antibiótica triplaMed-Vet InternationalRXTRIP-OI15
MONOJECT® Agulhas Soft Pack 25g x 5/8"Med-Vet International25058
6-0 suturas de sedaMed-Vet InternationalMV-711

Etiquetas

Inje o Estereot xicaEntrega ViralGiro DenteadoCRISPR Cas9Rep rter FluorescenteEstereot xicaInje o de V rusSutura Cir rgica