Purificação da Hsp104, um Disaggregase Protein

Resumo

Aqui, nós descrevemos um protocolo para a purificação de altamente ativa Hsp104, a AAA hexamérica + proteína de levedura, que acopla a hidrólise de ATP a desagregação de proteína. Este esquema explora uma construção His6 marcadas para a purificação de afinidade E. coli Seguido de cromatografia de troca aniônica, His6 tag-remoção com protease TEV e tamanho-exclusão cromatografia.

Resumo

Hsp104 é um hexamérica AAA + ¹ proteína de levedura, que acopla a hidrólise de ATP para a proteína desagregação ^10/02 (Fig. 1). Esta atividade dá dois principais vantagens seletivas. Primeiro, renaturalização de agregados desordenada por Hsp104 capacita sobrevivência levedura após várias proteínas-misfolding salienta, incluindo choque térmico ^3,5,11,12. Em segundo lugar, a remodelação das fibrilas de cross-beta-amilóide por Hsp104 permite levedura para explorar prions miríade (amilóides infecciosas) como um reservatório de benéfico e hereditárias variação fenotípica ^13-22. Notavelmente, Hsp104 diretamente remodela oligômeros preamyloid e fibrilas amilóides, incluindo aqueles composto de proteínas de levedura prion Sup35 e Ure2 ^23-30. Esta funcionalidade amilóide remodelação é uma faceta especializados de levedura Hsp104. O E. orthologue coli, ClpB, não oligômeros remodelar preamyloid ou fibrilas amilóides ^26,31,32.

Orthologues Hsp104 são encontrados em todos os reinos da vida, exceto, perplexidade, os animais. De fato, se as células animais possuem qualquer sistema enzimático que os casais desagregação proteína para renaturalização (ao invés de degradação) permanece desconhecido ^33-35. Assim, nós e outros propuseram que Hsp104 pode ser desenvolvido como um agente terapêutico para várias doenças neurodegenerativas relacionadas com o misfolding de proteínas específicas em oligômeros preamyloid tóxicos e fibrilas amilóides ^{4,7,23,36-38.} Não existem tratamentos que visam directamente as espécies agregados associados a estas doenças. No entanto, se dissolve Hsp104 oligômeros tóxicos e fibrilas amilóides composto de alfa-sinucleína, que são conectados com Doença de Parkinson ^23, bem como formas de amilóide de PrP ^39. Importante, Hsp104 reduz a agregação da proteína e melhora a neurodegeneração em modelos de roedores da doença de Parkinson ²³ e doença de Huntington ^38. Idealmente, para otimizar o tratamento e minimizar os efeitos colaterais, Hsp104 seria projetado e potencializadas para seletivamente remodelar agregados específicos central para a doença em questão ^4,7. No entanto, a limitada compreensão estrutural e mecânica de como Hsp104 desagrega um repertório tão diversificado de estruturas agregadas e proteínas não relacionadas frustra estes esforços ^30,40-42.

Para compreender a estrutura e mecanismo de Hsp104, é essencial para estudar a proteína pura e reconstituir a sua actividade disaggregase com componentes mínimos. Hsp104 é uma proteína 102kDa com um pI de aproximadamente 5,3, que hexamerizes na presença de ADP ou ATP, ou em concentrações da proteína na ausência de ^43-46 nucleotídeos. Aqui, nós descrevemos um protocolo otimizado para a purificação de altamente ativa, Hsp104 estável de E. coli. O uso de E. coli simplificado permite produção em larga escala e nosso método pode ser realizado de forma rápida e confiável para inúmeras Hsp104 variantes. Nosso protocolo aumenta Hsp104 pureza e simplifica a sua remoção ₆ tag em comparação com um método de purificação prévia do E. coli ^47. Além disso, o nosso protocolo é mais fácil e conveniente do que dois protocolos mais recentes ^26,48.

Protocolo

1. Expressão de Hsp104

1. O plasmídeo utilizado para a purificação em E. coli, pPROEX-HTB-Hsp104, contém o Hsp104 estrutura aberta de leitura sob o controle do promotor induzível trc ^26. O plasmídeo produz Hsp104 com um N-terminal Seu ₆ tag que pode ser removido por clivagem da protease TEV. PPROEX transformar-HTB-Hsp104 em códon otimizado E. coli BL21-CodonPlus-RIL células (Stratagene, Agilent Technologies) usando um procedimento típico de transformação bacteriana (por exemplo, de acordo com as instruções do fabricante). É importante usar um E. códon otimizado coli cepa Hsp104 porque tem um viés códon incomum.
2. Inocular uma cultura 100mL 2XYT (USB. Receita: 16g / L de caseína peptona, 10g / L de extrato de levedura, 5g / L NaCl, pH 7,0) suplementado com ampicilina e cloranfenicol 100μg/mL 34μg/mL com transformantes fresco e crescer durante a noite a 37 ° C com agitação de 200 rpm.
3. Inocular 10 ml da cultura durante a noite em 6 X 1L 2XYT com 100μg/mL ampicilina e cloranfenicol 34μg/mL em frascos de 2L. Agite a 250rpm a 37 ° C até OD ₆₀₀ = ,4-0,6. Parar de tremer e reduzir a temperatura para 15 ° C. Permitem que as células para equilibrar sem agitação por 30min na incubadora até atingir 15 ° C. Uma vez que 15 ° C é atingido induzir a expressão da proteína pela adição de IPTG a uma concentração final de 1mM. Retomar a agitação a 250rpm durante a noite (12-16 horas).

2. Colheita de células e de Lise

1. Células colheita por centrifugação (em um rotor pré-resfriada) a 4.000 rpm por 20min a 4 ° C (usamos um Sorvall RC 3BP centrífuga +). Etapas subseqüentes devem ser realizados imediatamente, porque Hsp104 atividade é diminuída quando E. células coli são congelados. Além disso, todas as etapas subseqüentes devem ser realizados no gelo ou a 4 ° C.
2. Ressuspender pellets de células em prechilled (no gelo) 10 ml tampão de lise (40mm HEPES-KOH pH 7,4, 500mM KCl, 20mM MgCl _2, 2,5% (w / v) de glicerol, 20mM imidazol, 5m pepstatin A, cocktail inibidor da protease completa (1 EDTA sem tablet/50mL), e 2mM β-mercaptoetanol).
3. Lisar as células com uma imprensa francesa homogeneizador (Emulsiflex) que usa um trocador de calor imerso em água gelada. Antes da utilização, garantir que todos os aglomerados celulares foram solubilizados. Depois de equilibrar homogeneizador com tampão de lise, duas passagens do cilindro com uma pressão de 15,000-18,000 psi é suficiente para a lise completa. Se uma imprensa francesa não está disponível, a incubação com a lisozima seguido de sonicação pode ser usado (ver discussão). Salvar uma pequena amostra de células lisadas por SDS-PAGE análise (1μL) (Lysate na figura. 2).
4. Remover restos celulares por centrifugação a 16.000 rpm por 20min a 4 ° C (usamos um RC5C Sorvall centifuge +). Reter sobrenadante para o próximo passo e salvar uma pequena amostra (1μL) do sobrenadante para análise SDS-PAGE (Ni Load na figura. 2).

3. Purificação Hsp104

1. Mix sobrenadante do passo 2.4 com 12 ml (2 ml Ni-Sepharose pérolas por 1L de células) de dejetos de 50% de tampão de lise equilibrada Ni Sepharose-beads (GE).
2. Rode a amostra lentamente por 3 horas a 4 ° C tal que Ni-Sepharose permanece uniformemente suspensa e espuma é minimizado. Menor tempo de incubação são possíveis, mas vai diminuir o rendimento. A 4 ° C na presença de inibidores de protease, a degradação ocorre pouco, e um tempo de incubação 3 horas Ni Sepharose-não diminui a atividade do produto final. Coletar Ni-Sepharose por centrifugação por 2 min a 4 ° C a 2.000 rpm (Eppendorf 5810R centrífuga). Salvar uma pequena amostra do sobrenadante para análise SDS-PAGE (1μL) e descartar o resto (Ni Flow Through (FT) na figura. 2).
3. Lavar os recuperados Ni Sepharose com 25 volumes de coluna de tampão de lavagem (40mm HEPES-KOH pH 7.4, 150mm KCl, 20mM MgCl _2, 2,5% (w / v) de glicerol, 20mM imidazol, 2mM β-mercaptoetanol), 5 volumes da coluna tampão de lavagem com KCl 1M para remover os contaminantes ligados eletrostaticamente para Hsp104, e 25 volumes de coluna de tampão de lavagem. Coletar Ni-Sepharose após cada lavagem por centrifugação por 2 min a 4 ° C a 2.000 rpm (Eppendorf 5810R centrífuga). Após cada ciclo de lavagem e centrifugação, remover tampão por aspiração.
4. Para eluir Hsp104, misture Ni-Sepharose com 1mL tampão de eluição (40mm HEPES-KOH pH 7.4, 150mm KCl, 20mM MgCl _2, 2,5% (w / v) de glicerol, imidazol 350mm, 2mM β-mercaptoetanol) por 1 ml Ni-Sepharose e girar a 4 ° C por 20 minutos. A concentração de imidazol alta interrompe o talão _Ni-6 Sua interação. Remover Ni-Sepharose com colunas vazias 1,2 mL de rotação (Bio-Rad) por centrifugação por 2 min a 4 ° C a 2.000 rpm (Eppendorf 5810R centrífuga). Salvar 1μL de eluato para análise SDS-PAGE (Ni eluato na figura. 2). Para cada litro de células, ~ 15mg de Hsp104 é obtido nesta etapa.
5. Tampão eluído em troca de buffer Q (20mM Tris-HCl pH 8, EDTA 0,5 mM, MgCl 5mM _2, 50 mM NaCl), utilizando MWCO 30.000 Amicon Ultra (Millipore) 15mL unidades concentrador centrífugo. Primeiro, concentrado protéico de ~ 1,5 ml em seguida, adicione 14.5mL de tampão para diluir proteína Q 10 vezes. Repita 3 vezes para a troca de buffer. O pH aumentou e baixo teor de sal garante que Hsp104 tem uma alta carga negativa.
6. Purify Hsp104 através de troca aniônica cromatografia usando um tampão Q equilibrada Resource Q coluna 6ml (GE). Antes da injeção, a proteína é filtrada através de uma baixa ligação protéica Millex GP PES Membrana 0.22μM seringa filtro (Millipore). Nós empregamos uma vazão de 1mL/min. Lavar fracamente proteínas de ligação com 1 volume de tampão de coluna 20% Q + (20mM Tris-HCl pH 8, EDTA 0,5 mM, MgCl ₂ 5mM, 1M NaCl). Eluir Hsp104 com gradiente linear (20% -50% de buffer Q +) mais de 5 volumes da coluna (Fig. 3). Coletar frações de 1ml. Hsp104 e mais variantes tipicamente eluída no NaCl ~ 400mm (31mS/cm). Salvar amostras de frações de pico (1μL) para análise de SDS-PAGE (Fig. 3, inset).
7. Para remover sua ₆ tag, proteína de troca utilizando o concentrador Amicon centrífuga como descrito acima (veja o passo 3.5) em tampão de clivagem (20mM HEPES-KOH pH 7.4, 140mm KCl, 10mM MgCl e _2). Use proTEV protease (Promega) ou AcTEV protease (Invitrogen) de acordo com instruções do fabricante. Para Hsp104, descobrimos que os rácios mais elevados de protease TEV: Hsp104 são necessários para a clivagem completa. Nós usamos uma proporção de 1 unidade de protease por 12μg Hsp104. Clivagem deve ser realizada a 30 ° C por 2-4 horas, seguido de incubação de 16 horas a 4 ° C. Hsp104 concentração final deve ser entre 20-75μM monômero. Destroem qualquer Hsp104 restantes His6-marcadas e protease TEV com Ni-Sepharose (GE), adicionando-Ni Sepharose em excesso para a quantidade de Hsp104 na reação de clivagem (assumir contas pode ligar 15mg de proteína por mL de resina embalado). Remover contas com colunas de spin vazia (Bio-Rad) por centrifugação de 2min a 2.000 rpm a 4 ° C. Coletar amostras antes e depois da clivagem (1μL) para SDS-PAGE análise para garantir clivagem, ea remoção de proteínas uncleaved (Fig. 4).
8. Em troca de tamanho do buffer de exclusão (20mM HEPES-KOH pH 7.4, 140mm KCl, 10mM MgCl _2, 0,1 mM EDTA, 1mM DTT) usando MWCO 30.000 Amicon Ultra (Millipore), como descrito no passo 3.5.
9. Purificar Hsp104 via tamanho-exclusão cromatografia. Use o tamanho do buffer Superose exclusão equilibrado 6 ou Superdex 200 coluna (ambos da GE) (Fig. 5). Antes da injeção, a proteína é filtrada através de uma baixa ligação protéica Millex GP PES Membrana 0.22μM seringa filtro (Millipore). Por menos de 10 mg de proteína, o 10/300 colunas tamanho (24mL) pode ser usado e frações de 0,5 ml são coletados. Para as amostras superiores a 10 mg, a coluna tamanho 12/60 (120ml) deve ser usado e 1 ml frações são coletadas. Consulte as instruções do fabricante para caudais e volumes de amostra a ser carregado. Após purificação, as frações Hsp104 são agrupados conforme mostrado na figura. 5 e concentrada em Unidades Concentrador Amicon centrífugas (Millipore). Hsp104 é armazenado como descrito abaixo. Devido à perda de material em separar Hsp104 produtos de degradação e contaminantes no rendimento final da purificação full-length Hsp104 é ~ 1-3mg por litro de partida cultura.

4. Hsp104 Atividade Disaggregase

1. Após purificação, é uma boa prática para avaliar Hsp104 atividade em um ensaio de desagregação. Normalmente, nós empregamos um ensaio de reativação luciferase ² (Fig. 6). Neste ensaio, Hsp104 em conjunto com o sistema chaperone Hsp70 (Hsp70 e Hsp40) desagrega-uréia desnaturado agregados luciferase firefly ^2. Solúveis luciferase catalisa a oxidação da luciferina para oxiluciferina, uma reação que libera luz. Por luminescência de monitoramento, a reativação relativa, e, portanto, desagregação, da luciferase pode ser determinada. Hsp104 deve ser capaz de sinergicamente colaborar com o sistema de co-chaperone Hsp70. A quantidade de luminescência recuperado depende da Hsp70 exata: par Hsp40 utilizado. Empregamos rotineiramente Hsp72 e Hsp40 (Designs Assay). No mínimo, ativos Hsp104 deve produzir um aumento de 5 vezes na reativação da luciferase, quando comparado à reativação de Hsp72: Hsp40 sozinho (Fig. 6). Hsp104 preparações que não conseguem atingir esse nível de atividade são descartados.

5. Hsp104 Armazenamento

1. De curto prazo de armazenamento, Hsp104 pode ser mantido a 4 ° C em tamanho-exclusão buffer. No entanto, a atividade vai diminuir depois de 2-3 dias a 4 ° C e acentuadamente após uma semana a 4 ° C. Para ensaios de desagregação recomendamos que Hsp104 deve ser usado o mais rapidamente possível após a purificação. Idealmente, Hsp104 deve ser utilizado imediatamente para ensaios de desagregação amilóide.
2. Se a proteína deve ser armazenado a longo prazo, Hsp104 é trocada dentro do buffer de armazenamento (20mM HEPES-KOH pH 7.4, 140mm KCl, 10mM MgCl _2, 0,1 mM EDTA, 1mM DTT, glicerol 10% (w / v)). Alíquotas são 100μl pressão congelados em nitrogênio líquido e armazenadas a -80 ° C. Ciclos de congelamento e descongelamento reduzir drasticamente Hsp104 atividadee deve ser evitado. Recomendamos lentamente descongelamento Hsp104 no gelo. Amilóide disaggregase-atividade irá diminuir drasticamente depois de 1 mês a -80 ° C.

6. Resultados representante e números:

Figura 1. Hsp104 é um disaggregase bifuncional. Desagregação dos agregados desordenado (mostrado à esquerda) requer a cooperação do sistema chaperone Hsp70 (Hsp70 e Hsp40) ^2. Remodela Hsp104 ordenou agregados amilóides (mostrado à direita) sem o auxílio de Hsp70 e Hsp40 in vitro, mas Hsp70 e Hsp40 pode melhorar Hsp104 atividade contra amilóide ^26,28. Para ambos os tipos de estruturas de agregados, Hsp104 casais hidrólise de ATP a translocação do substrato através de seu canal central para promover a desagregação. Loops tirosina-bearing poros envolver e substrato de transporte através do canal central ^49-52.

Figura 2. SDS-PAGE análise de Ni-Sepharose etapa de purificação de afinidade. Lysate, Load Ni, Ni FT e amostras de eluato Ni foram fracionadas por SDS-PAGE usando um 40-20% Tris-HCl 1,0 milímetros Critério de gel (Bio-Rad) e corados Coomassie . Note que nem todos os Hsp104 é capaz de se ligar ao Ni-Sepharose. Ampla Faixa de marcadores de peso molecular (Bio-Rad) são mostrados (esquerda lane).

Figura 3. Recurso de purificação Q de Ni-Sepharose eluído. Traço azul representa a absorvância a 280nm traço eo verde representa% buffer Q + (máximo de 50%). O primeiro pico, que é eluído em 20% Q + contém impurezas, produtos de degradação e Hsp104 indevidamente dobrado. O segundo pico e os principais contém Hsp104 correctamente dobrados e ativo. Taxa de fluxo foi 1mL/min. Gradiente de 20-50% Q + é de 30 minutos ou 5 volumes da coluna. Detalhe: frações de pico são resolvidos por SDS-PAGE análise usando um 40-20% Tris-HCl 1,0 milímetros Critério de gel (Bio-Rad) e corados Coomassie. Ampla Faixa de marcadores de peso molecular (Bio-Rad) são mostradas (esquerda).

Figura 4. SDS-PAGE análise de proTEV etapa de clivagem da protease. Seus _6-Hsp104 de purificação Resource Q foi tratado com proTEV protease durante 4 horas a 30 ° C e 16 horas a 4 ° C. Amostras foram fracionadas por SDS-PAGE usando um 40-20% Tris-HCl 1,0 milímetros Critério de gel (Bio-Rad) e corados Coomassie. Note-se que proTEV clivada Hsp104 migra mais rapidamente. TEV protease e Hsp104 uncleaved foram esgotados com Ni-Sepharose, conforme descrito no Passo 3.7. Ampla Faixa de marcadores de peso molecular (Bio-Rad) são mostradas (esquerda).

Figura 5. Tamanho-exclusão purificação de Hsp104. Clivadas Hsp104 foi ainda purificada por meio de uma coluna de filtração Superose 6 gel (10/300, GE). = Vazão 0.4ml/min. O pico entre as linhas tracejadas representam frações agrupadas. Detalhe: frações de pico são resolvidos por SDS-PAGE análise usando um 40-20% Tris-HCl 1,0 milímetros Critério de gel (Bio-Rad) e corados Coomassie. Ampla Faixa de marcadores de peso molecular (Bio-Rad) são mostradas (esquerda).

Figura 6. Ensaio de reativação luciferase. Agregados desnaturadas firefly luciferase (50nm) foram incubadas com um Hsp72 e Hsp40 (1 Hm) (ambos dos projetos Assay), Hsp104 (6μM monômero) ou Hsp104, Hsp72 e Hsp40 de 90min a 25 ° C. Luciferase desnaturado só é totalmente reativado na presença de ambos os Hsp104 e Hsp40/Hsp72. Luminescência recuperado é medida em uma Infinito M1000 Leitor de placa (Tecan). Valores representam médias ± EPM (n = 3).

Discussão

Cronograma: Para a atividade Hsp104 máxima recomendamos que o sistema de purificação de todo ser concluída o mais rapidamente possível. No entanto, o número de etapas de purificação torna um calendário exigente, que nem sempre pode ser prático. Se as etapas de purificação são realizadas o mais rapidamente possível, o tempo a partir do final de expressão durante a noite até a 2-4 horas de incubação a 30 ° C com TEV protease é de aproximadamente 9-11 horas. Um lugar potencial para fazer uma pausa está seguindo o pa...

Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo

Nome	Empresa	Número de catálogo	Comentários
Nome do reagente	Companhia	Número de catálogo
BL21-CodonPlus-RIL células competentes	Stratagene, Agilent Technologies	230255
2XYT caldo	USB	75864
Completo, mini, EDTA livre inibidor da protease comprimidos	Roche	1836170
A Pepstatin	Sigma	P4265
Ni-Sepharose 6 Fluxo Rápido	GE Healthcare	17-5318-02
Amicon Ultra-15 centrífuga unidades de filtro (MWCO 30.000)	Millipore	UFC903008
Resource Q - coluna 6ml	GE Healthcare	17-1179-01
proTEV Protease	Promega	V6052
AcTEV Protease	Invitrogen	12575015
Superose 6 10/300 GL	GE Healthcare	17-5172-01
Hsp40	Designs ensaio	SPP-400
Hsp72	Designs ensaio	ADI-NSP-555