Todos os procedimentos envolvendo modelos animais foram revisados pelo comitê institucional local de cuidados com animais e pelo conselho de revisão veterinária do JoVE.
1. Preparação do kit de injeção e vetores virais
- Prepare a seringa de microlitro equipada com uma agulha romba de 33 G esterilizada com gás óxido de etileno. Dilua os vetores virais em PBS (solução salina tamponada com fosfato) para obter um título adequado no microtubo (ou seja, 1 x 106 TU / μl). Lave a seringa várias vezes com vetores virais para remover qualquer espaço morto na seringa.
2. Injeção sub-retiniana de vetores virais
- Anestesie os camundongos adultos (ou seja, 6 a 8 semanas de idade) com uma injeção intraperitoneal da mistura de tiletamina e zolazepam (1:1, 2,25 mg/kg de peso corporal) e cloridrato de xilazina (0,7 mg/kg de peso corporal) ou um regime alternativo de anestesia adequado.
- Dilate as pupilas com um colírio de fenilefrina 0,5% e tropicamida 0,5%.
- Prepare a seringa de microlitro carregando-a com 1,5 - 2 μl de vetores virais.
- Abra a pálpebra e projete o olho para expor o equador para uma injeção conveniente. Concentre-se nele sob o microscópio operacional. Mantenha a posição dos olhos salientes até terminar a injeção, ou pode ocorrer deslocamento da agulha durante a injeção. Para segurar o globo ocular com firmeza, coloque os dedos fora da borda orbital.
- Aplique uma gota de solução viscoelástica oftálmica na superfície da córnea.
- Coloque uma pequena lâmina de cobertura redonda na parte superior da córnea para visualizar a retina.
- Perfure um pequeno orifício na parte ligeiramente posterior ao limbo usando uma agulha estéril 30 G 1/2 para injeção sub-retiniana adicional. Por conveniência, faça o orifício inferior para o olho direito e superior para o olho esquerdo.
NOTA: Se o orifício for feito no temporal ou nasal, é difícil ser coberto pela pálpebra após a injeção. A punção inicial deve ser feita ligeiramente posterior ao limbo para evitar os vasos límbicos que correm ao longo do limbo e podem ser facilmente reconhecidos. Tenha cuidado para evitar bater na lente com uma agulha ao fazer a punção inicial. Não insira todo o chanfro da agulha para evitar furos na lente. - Coloque a agulha romba de 33 G da seringa de microlitro através do orifício pré-perfurado e aproxime-se da agulha no espaço sub-retiniano até sentir uma resistência leve.
NOTA: Para a injeção sub-retiniana, o melhor ângulo de aproximação da agulha é de cerca de 45 graus contra o plano da íris, e a agulha romba deve ser empurrada posteriormente em direção à área peripapilar. O quadrado pontilhado indica o caminho sugerido da agulha através da cavidade vítrea para a injeção sub-retiniana na Figura 1.
NOTA: Não haverá resistência sentida ao perfurar (ou passar) as camadas da retina, pois elas são muito macias. Assim, a primeira sensação de resistência leve indica que a agulha já tocou a camada de EPR (epitélio pigmentar da retina) e a inserção da agulha deve ser interrompida. Tenha cuidado para não penetrar no tecido escleral com pressão excessiva, pois a agulha deve ser colocada no espaço sub-retiniano potencial. Se a agulha perfurar o tecido escleral por força excessiva, ela entra nos espaços orbitais extraoculares sem resistência. (Esta etapa é crítica) - Injete os vetores virais (por exemplo, 1 x 106 TU / μl) suavemente no espaço sub-retiniano sem tremor para evitar danos indesejados aos tecidos. Em seguida, retire a agulha com cuidado. Segure o globo ocular firmemente durante a injeção, conforme descrito em 2.4.
- Observe a formação de bolhas sub-retinianas após a injeção sob um microscópio cirúrgico para garantir que não haja sangramento retiniano.