1. Preparando os cassetes
- Frente e verso limpo placas de um Nupage Invitrogen usado Novex cassete minigel, ou cassete minigel outro comercial.
- Preparar ml aproximadamente 1-3 de epóxi de plástico e misturar bem de acordo com as instruções do fabricante.
- Aplicar o epoxi para o bordo interior da placa frontal, onde as duas placas irá entrar em contacto quando a cassete é montado.
- Deslizar um pedaço de papel de filtro ou de papelão através da fenda inferior da placa traseira, quando a montagem da cassete para evitar excesso de epóxi de selagem da abertura. Remover o papel de filtro, logo que as duas placas são montados.
- Coloque grampos da pasta ao longo das bordas para uma perfeita vedação, e deixar que as cassetes sentar-se durante a noite para o epóxi para curar completamente.
- Selar a fenda na parte inferior da placa traseira com fita isolante.
2. Verter o gel resolver
- Para um frasco de 125 ml braço lado, adicione o seguinte:2,25 ml de Tris-Base de Dados de 4X Resolving gel tampão de pH 8,70, 3,50 ml de acrilamida 30,8% / bisacrilamida, 3,25 ml de Tipo I de água grau reagente (GIR-H2O) para um volume total de 9 ml.
- De-gás a solução durante 10 min, anexando o braço lateral do balão a um aparelho de vácuo, e colocando uma rolha invertido sobre o topo do frasco.
- Transferir a 9 ml de isentos de gases solução para um tubo de centrífuga de 50 ml descartável de polipropileno e adicionar 30 uL de persulfato de ammounium 10% (EPA) e 6 uL de N, N, N ', N', N-tetrametiletilenodiamina (TEMED) e misturar bem agitando a solução para evitar a introdução de bolhas.
- Imediatamente despejar a solução na cassete, permitindo que a correr para baixo do lado da cassete para evitar quaisquer bolhas de formar entre as placas de gel. Encher a cassete para cerca de 2 cm a partir da borda superior da placa (mais curto) da frente.
- Suavemente adicionar 0,5 ml de 1-butanol saturado com 1X tampão de gel de resolução e deixar que o gel polimerizar durante 1horas.
3. Verter o gel de empilhamento
- Adicionar o seguinte para um balão de 125 ml braço lateral: 0,75 ml de 4X tampão Tris pH-empilhamento de bases de gel de 6,80, 0,40 ml de acrilamida 30,8% / bisacrilamida, 1,85 ml de O 2 IRG-H para um volume total de 3 ml.
- De-gás a solução durante 10 min, como descrito no passo 2.
- Enquanto a solução de gel de empilhamento é desgaseificação, despeje o 1-butanol saturado com 1X tampão de gel de Resolving a partir do topo do gel de resolução. Lavar o topo do gel resolver uma vez com O. 2-H IRG Decantar a água e usar um papel absorvente ou filtro Whatman para absorver qualquer líquido remanescente.
- Remover 3 ml da sua solução desgaseif içada e adicionar 9 ul de APS 10% e 2 ul de TEMED e misturar bem.
- Rapidamente despejar a solução na cassete, permitindo que a correr para baixo do lado da cassete até que seja perto da borda superior da placa frontal curta de gel.
- Inserir um pente gel limpo no topo da cassete de gel,colocar um clipe de ligante sobre a cassete sobre o pente para manter no lugar. Deixe a gel de empilhamento polimerizar durante 1 hora para durante a noite.
4. Armazenar o gel
- Quando o gel foi completamente polimerizado, remover os grampos da pasta e colocar a cassete dentro de uma bolsa de calor-selável, plástico ou um saco de plástico re-selável.
- Introduzir 20 ml de 1X tampão de gel de empilhamento que contém azida de sódio a 0,1% para a bolsa.
- Sele a bolsa por 5 segundos e verifique se não existem vazamentos no saco.
- Armazenar o gel a 4 ° C.
5. Preparação das amostras
- Num tubo de microcentrífuga de paredes finas, adicionar até 6,5 uL de amostra de proteína, 7,5 ul de tampão de amostra 2x Novex Tris-Glicina de SDS, 1 ul de 100 mM de ditiotreitol (DTT) e IRG-H2O (se necessário) para uma volume total de 15 uL.
- Misturar a amostra em vórtice, e brevemente centrifugar a amostra para trazer o conteúdo para o fundo do tubo.
- desnaturar a amostra a 70 ° C durante 10 min.
6. Executando o gel
- Configure o aparelho de gel Novex.
- Adicionar 200 ml de Tris-Glicina tampão de corrida que contém 500 uL de antioxidante Nupage para a câmara interior, e 300 ml de Tris-Glicina O tampão de corrida para a câmara exterior.
- Carregar as amostras de proteína desnaturadas (15 uL) para os poços, utilizando uma carga de gel ponta da pipeta.
- Executar o gel a 200 V durante 60-70 min.
7. A coloração do gel
- Remova a cassete do aparelho de gel e quebrar o selo epóxi por erguer as duas placas de gel de plástico separados utilizando uma faca de gel ou de uma espátula rígida. Cuidadosamente separar o gel a partir das placas, tendo o cuidado de não rasgar o gel.
- Lavar o gel com IRG-H2O três vezes com agitação suave.
- Corar o gel com Invitrogen SimplyBlue SafeStain durante 1 hora com agitação suave.
- Decantar a solução de coloração edestain o gel com O. 2-H IRG
8. Limpando as gavetas
- Use uma espátula de metal para raspar ou descascar todo o epóxi sobre as cassetes para que possam ser reutilizadas.
- Lava-se cada uma das placas de gel de plástico com uma solução de detergente suave, e lavar bem com água da torneira seguida por água destilada.
9. Os resultados representativos
Devido epoxi irá formar uma vedação estanque a água, (Figura 1), as cassetes não irá vazar quando a solução é vertida em acrilamida-los. Além disso, as cassetes de gel pode ser facilmente aberto para recuperar o gel para a coloração, eo epóxi pode ser retirada das cassetes para permitir a sua continuação reutilização. Como mostrado na Figura 2, o gel mostra nítida separação de marcadores proteicos e bandas amostra adequada para a electroforese de proteínas de rotina.

Figura 1. Aplicaçãocatião de epoxi para selar cassetes minigel. Uma fina camada de epóxi é aplicada à extremidade de uma das cassetes antes da montagem. Para realçar o epóxi, que era falso-cor vermelha nesta imagem.

Figura 2. Separação de proteínas sobre um gel de SDS-Tris-glicina vertida usando re-utilizados cassetes minigel. SDS-PAGE foi realizada como descrito acima. Após electroforese o gel foi removido do cassete minigel, coradas em SimplyBlue SafeStain como por instruções do fabricante, e fotografados utilizando luz transmitida branco. Pista M contém SeeBlue Plus2 padrões pré-corados de proteína. Os pesos moleculares das proteínas em pista M são indicados no lado direito do gel em quilodaltons (kDa). As outras pistas mostram as proteínas a partir de um lisado limpo a partir de bactérias que expressam uma glutationa-S-transferase de proteínas (GST)-etiquetado. As proteínas são indicados os lavada a partir do ggrânulos lutathione antes da eluição da proteína GST-etiquetado.