O padrão 2 das Normas Internacionais para o Tratamento da Tuberculose afirma que todos os pacientes suspeitos de ter tuberculose pulmonar devem fornecer pelo menos duas amostras de escarro para exame bacteriológico. Sempre que possível, pelo menos uma amostra matinal deve ser coletada, pois o escarro coletado nesse horário apresenta maior rendimento.11 O ensaio Xpert MTB/RIF pode ser aplicado a amostras de escarro ou sedimentos de escarro concentrados, preparados a partir de escarros induzidos ou espontâneos, sejam eles positivos ou negativos para bacilos álcool-ácido resistentes (BAAR) no exame direto.6, 12, 13 O ensaio destina-se ao uso com espécimes de pacientes com suspeita clínica de tuberculose pulmonar que: 1) não receberam terapia antituberculosa, 2) tiveram < 7 dias de terapia, ou 3) não receberam terapia nos últimos 60 dias. Observe que ele não deve ser utilizado para monitorar os efeitos da terapia medicamentosa7, pois o DNA bacteriano pode persistir após o tratamento antimicrobiano.
Trate espécimes clínicos, incluindo cartuchos usados, como se fossem capazes de transmitir agentes infecciosos. Utilize precauções adequadas, como o uso de luvas descartáveis de proteção, jalecos laboratoriais e proteção ocular, e siga os procedimentos e diretrizes de segurança da sua instituição.
1. Amostras de Escarro Expectorado
Observação: Processe apenas tantos espécimes de cada vez quantos forem os módulos disponíveis no sistema GeneXpert Dx para executar o teste!
- Rotule cada cartucho Xpert MTB/RIF com o ID do espécime correspondente.
- Transfira 1,0 ml de escarro expectorado para um tubo cônico com tampa de rosca utilizando uma pipeta de transferência estéril. Alternativamente, todo o espécime pode ser processado no recipiente original de coleta de escarro à prova de vazamentos.
- Adicione 2,0 ml do Reagente para Amostra Xpert MTB/RIF (2:1; v/v) ao escarro expectorado utilizando uma pipeta de transferência estéril.
- Recoloque a tampa e agite vigorosamente o tubo de 10 a 20 vezes. Alternativamente, a mistura pode ser agitada em vórtex (30 segundos).
- Deixe o tubo em posição vertical por 5 minutos à temperatura ambiente.
- Agite vigorosamente o tubo de 10 a 20 vezes. Alternativamente, utilize um vórtex (30 segundos).
- Deixe o tubo em posição vertical por mais 10 minutos à temperatura ambiente.
- Examine os espécimes: as amostras devem estar liquefeitas, sem grumos visíveis de escarro.
2. Sedimentos Concentrados
Observação: Processe apenas tantos espécimes de cada vez quantos forem os módulos disponíveis no sistema GeneXpert Dx para executar os testes!
- Rotule cada cartucho Xpert MTB/RIF com o ID correspondente da amostra.
- Transfira 1,5 ml do Reagente para Amostra Xpert MTB/RIF para um tubo cônico com tampa de rosca, utilizando uma pipeta de transferência estéril.
- Adicione pelo menos 0,5 ml do sedimento concentrado ao tubo contendo o Reagente para Amostra, utilizando uma pipeta de transferência estéril.
- Recoloque a tampa e agite vigorosamente o tubo de 10 a 20 vezes. Alternativamente, utilize um vórtex (30 segundos).
- Deixe o tubo em posição vertical por 5 minutos à temperatura ambiente.
- Agite vigorosamente o tubo de 10 a 20 vezes. Alternativamente, utilize um vórtex (30 segundos).
- Deixe o tubo em posição vertical por mais 10 minutos à temperatura ambiente.
- Inspeccione as amostras: os espécimes devem estar liquefeitos, sem grumos visíveis de escarro.
3. Carregamento do Cartucho Xpert MTB/RIF
Observação: Inicie o teste dentro de 30 minutos após adicionar a amostra à cartela!
- Verifique as etiquetas no cartucho Xpert MTB/RIF e no ID da amostra.
- Abra a tampa do cartucho.
- Usando a pipeta de transferência estéril fornecida, aspire a amostra liquefeita para dentro da pipeta até que o menisco esteja acima da marca mínima e transfira a amostra para a abertura aberta do cartucho Xpert MTB/RIF.
Observação: Dispense lentamente para minimizar o risco de formação de aerossóis!
- Feche a tampa do cartucho.
4. Iniciando o Teste
Observação: Antes de iniciar o teste, certifique-se de que o sistema GeneXpert Dx esteja equipado com o software GX2.1 e de que o ensaio Xpert MTB/RIF tenha sido importado para o software! 9
- Ligue o computador e, em seguida, ligue o instrumento GeneXpert Dx.
- No desktop do Windows, clique duas vezes no ícone de atalho do GeneXpert Dx.
- Faça login no software do Sistema GeneXpert Dx utilizando seu nome de usuário e senha.
- Na janela do Sistema GeneXpert Dx, clique em Criar Teste. A caixa de diálogo Ler Código de Barras do Cartucho aparece.
- No campo ID da Amostra, leia ou digite o ID da amostra.
- Leia o código de barras do cartucho Xpert MTB/RIF. A janela Criar Teste aparece.
- Clique em Iniciar Teste e insira sua senha na caixa de diálogo que aparece.
- Abra a porta do módulo do instrumento com a luz verde piscando e insira o cartucho.
- Feche a porta. O teste é iniciado e a luz deixa de piscar, permanecendo constantemente verde. Quando o teste for concluído, a luz se apaga.
- Aguarde até que o sistema libere o travamento da porta ao final do processo, abra a porta do módulo e remova o cartucho.
- Descarte os cartuchos usados nos recipientes apropriados para resíduos, de acordo com as práticas-padrão da sua instituição.
5. Resultados Representativos
Cada cartucho Xpert MTB/RIF inclui reagentes para a detecção do complexo MTB e da resistência à RIF, bem como um controle de processamento da amostra (SPC) para verificar o processamento adequado da bactéria-alvo e monitorar a presença de inibidor(es) na reação de PCR. O controle de verificação da sonda (PCC) confirma a reidratação dos reagentes, o preenchimento do tubo de PCR no cartucho, a integridade da sonda e a estabilidade do corante.9 Os iniciadores no ensaio Xpert MTB/RIF amplificam uma porção do gene rpoB que contém a região "central" de 81 pares de bases. Cinco sondas de hibridização de ácidos nucleicos fluorogênicas com cores diferentes, denominadas balizas moleculares, analisam toda a região central de 81 pb.14 Cada baliza molecular foi projetada para ser tão específica que não se liga ao seu alvo se a sequência-alvo diferir da sequência selvagem de rpoB por apenas uma substituição de nucleotídeo. Como as balizas moleculares emitem fluorescência apenas quando ligadas aos seus alvos, ou seja, à sequência selvagem de rpoB, a ausência de qualquer uma das cinco cores no ensaio diferencia a sequência conservada selvagem das mutações na região central associadas à resistência à RIF.6
O CPS deve ser positivo em uma amostra negativa e pode ser negativo ou positivo em uma amostra positiva. O resultado do teste será "Inválido" se o CPS não for detectado em um teste negativo. Antes do início da reação de PCR, o sistema GeneXpert Dx mede o sinal de fluorescência dos sondas para monitorar a reidratação das microesferas, o preenchimento do tubo de reação, a integridade das sondas e a estabilidade do corante. O CPS é aprovado se o sinal de fluorescência das sondas atender aos critérios de aceitação atribuídos. Os resultados são interpretados pelo sistema GeneXpert Dx a partir dos sinais de fluorescência medidos e de algoritmos de cálculo embutidos e são exibidos na janela Visualizar Resultados9, conforme indicado abaixo:
MTB Detectado: O DNA alvo do MTB é detectado; ambos os controles, SPC e PCC, atendem aos critérios de aceitação estabelecidos. Valores de Ct mais baixos representam uma concentração inicial mais alta de molde de DNA; valores de Ct mais altos representam uma concentração mais baixa de molde de DNA. Nos resultados de MTB DETECTADO, "RESISTÊNCIA À RIFAMPICINA DETECTADA" (Figura 1A), "RESISTÊNCIA À RIFAMPICINA NÃO DETECTADA" (Figura 1B) ou "RESISTÊNCIA À RIFAMPICINA INDETERMINADA" serão exibidos em uma linha separada.
MTB Não Detectado: O DNA alvo de MTB não é detectado; ambas as controles, SPC e PCC, atendem aos critérios de aceitação estabelecidos (Figura 2).
Inválido: A presença ou ausência de MTB não pode ser determinada: o controle de processo de amostra (SPC) não atende aos critérios de aceitação, ou seja, a amostra não foi adequadamente processada ou houve inibição da PCR (Figura 3). Observação: repetir o teste com espécime adicional!
Erro: Um ou mais dos resultados do PCC falharam (FAIL). Tanto o MTB quanto o SPC exibem NENHUM RESULTADO. Observação: repetir o teste com espécime adicional! Se o PCC for aprovado (PASS), o erro é causado por uma falha em um componente do sistema.
Figura 1: O DNA alvo de MTB é detectado; ambos os controles, SPC e PCC, atendem aos critérios de aceitação atribuídos. Valores de Ct mais baixos representam uma concentração inicial mais alta do molde de DNA; valores de Ct mais altos representam uma concentração mais baixa do molde de DNA. Nos resultados de MTB DETECTADO, "RESISTÊNCIA À RIFAMPICINA NÃO DETECTADA" (Figura 1A), "RESISTÊNCIA À RIFAMPICINA DETECTADA" (Figura 1B) ou "RESISTÊNCIA À RIFAMPICINA INDETERMINADA" serão exibidos em uma linha separada.

Figura 1A. MTB DETECTADO; Resistência à RIF NÃO DETECTADA, ou seja, apenas a sequência de ácido nucleico selvagem da região determinante de resistência à RIF (RRDR) de 81 pb do gene rpoB estava presente.6 Clique aqui para visualizar a figura em tamanho maior.

Figura 1B. MTB DETECTADO; RESISTÊNCIA À RIF DETECTADA. Queda completa da sonda B (seta), que cobre as posições 513 a 517 da RRDR do gene rpoB.6 No exemplo, o sequenciamento parcial revelou que foi detectada a mutação D516V no gene rpoB.8 Clique aqui para visualizar a figura em tamanho maior.

Figura 2. O DNA alvo de MTB não foi detectado; ambos os controles, SPC e PCC, atendem aos critérios de aceitação estabelecidos. Clique aqui para visualizar a figura em tamanho maior.

Figura 3. Resultado de teste inválido, ou seja, a presença ou ausência de MTB não pode ser determinada: o controle de processo de amostra (SPC) não atende aos critérios de aceitação, porque a amostra não foi adequadamente processada ou porque a PCR foi inibida. Clique aqui para visualizar a figura em tamanho maior.