Todos os procedimentos descritos neste artigo foram realizados de acordo com as diretrizes e regulamentos do Landesamt für Gesundheit und Soziales, Berlin, Alemanha.
Procedimentos pré-cirúrgicos
1. Preparação de monofilamentos
- Para a preparação de filamentos intraluminais, suturas de monofilamento de nylon 8-0 foram utilizadas e foram cortados com um comprimento de 13 mm cada.
- Para o revestimento dos monofilamentos, Xantopren M mucosa (Heraeus Kulzer GmbH, Hanau, Alemanha) foi utilizado activada pela adição de uma gota de uma solução de activador (Activator, mais universal, a Heraeus Kulzer GmbH, Hanau, Alemanha).
- O monofilamento foi puxado lentamente através do silicone, até que foi completamente coberto com ele. Ao fazê-lo, o monofilamento seriam igualmente coberto por silicone. Evite esperar muito tempo porque o material de revestimento ativado se tornará firme e seca rapidamente.
- Antes de o silicone começa a solidificar, Recomenda-se para retirar o excesso de silicone a partir do filamento, puxando-o sobre uma folha de papel. Ao fazer isso, a camada de silicone pode ser diluído para uma espessura aproximada de 200 um.
- A base do monofilamento silicone coberta foi preso em massa de modelar, a fim de deixá-lo secar durante a noite.
Comentário: Idealmente, só esterilizada ou, pelo menos, monofilamentos desinfectadas deve ser usado para assegurar a esterilidade no local cirúrgico. Na prática, a esterilização ou desinfecção dos monofilamentos feitos à mão é muito difícil, porque a qualidade dos monofilamentos podem piorar 9. Portanto, pode ser preferível utilizar monofilamentos estéreis disponíveis comercialmente em seu lugar.
2. Preparação de instrumentos cirúrgicos e dos animais
- Todos os instrumentos cirúrgicos foram mantidas em 70% de álcool etílico. Além disso, antes de cada novo procedimento cirúrgico, todos os instrumentos cirúrgicos foram cuidadosamente limpos and desinfectados com 70% de álcool etílico.
- A área cirúrgica foi completamente desinfectados com 70% de álcool etílico em todos os animais antes da transecção. Os sites de desinfecção foram autorizados a secar completamente antes de executar as incisões. Corte adicional da pele não foi realizada, pois isso pode causar microabrasions e inflamação da pele posterior 9.
Os procedimentos cirúrgicos
3. Posicionamento da Sonda LDF e Monitoramento LDF
- Para a indução da anestesia, os ratos foram expostos a uma mistura gasosa constituída por 30% de oxigénio, 70% de N 2 O e 2,5% de isoflurano utilizando um vaporizador. Para manutenção da anestesia, a concentração de isoflurano foi reduzida para 1,5%. Ratos estavam respirando espontaneamente via máscara de respiração durante todo o procedimento cirúrgico.
- A sonda de temperatura retal foi inserido e os ratos foram fixados ao quadro estereotáxico expondo a cabeça parietal. Durante a cirurgia, os ratos estavam descansando em umtermostato controlado almofada de aquecimento, assegurando uma temperatura constante de núcleo de 37,0 ± 0,5 ° C. Uma incisão na linha média sagital (~ 1 cm de comprimento) foi realizada para expor o crânio parietal.
- O lado esquerdo do crânio foi cuidadosamente dissecado e uma sonda de fibra óptica foi fixada directamente ao crânio 2 milímetros caudal ea 5 mm lateral desde bregma usando cola instantânea. Em seguida, os bordos da ferida, foram cuidadosamente adaptado para evitar a hipotermia cerebral, bem como infecções.
- O mouse foi se virou para expor o lado ventral do pescoço. A sonda de fibra óptica foi conectado ao dispositivo de LDF (PeriFLUX System 5000, Perimed, Järfälla, Suécia) através de ligação do adaptador de sonda (Master Sonda 418-1, Perimed; Järfälla, Suécia).
Comentário: Ao girar o mouse, a sonda de fibra ótica deve ser dobrado com cuidado, a fim de evitar que ele rompe a partir do crânio.
- O dispositivo FDL foi ligada a um computador portátil comcomputador. A gravação contínua de valores FDL foi iniciado usando PeriSoft para Windows (versão 2.50, Järfälla, Suécia). Figura 1 demonstra o curso médio CBF obtida de dez gravações FDL durante BCCAO e reperfusão.
4. Oclusão bilateral artéria carótida comum
- A anestesia foi mantida como descrito em 3.1. Rato foi colocado em suas costas. Cauda e patas do animal foram fixados para a almofada de aquecimento com fita adesiva. A incisão mediana ventral sagital (~ 1 centímetro de comprimento) foi realizada.
- As glândulas salivatório foram cuidadosamente separados e mobilizados para visualizar a base de CCA.
- Ambos foram cuidadosamente CCA de separados das respectivas nervos vagais e veias anexas sem danificar estas estruturas. Manipulações dos nervos vagais pode conduzir a uma disfunção temporária ou permanente do sistema nervoso parassimpático, que tem o potencial para a ocorrência de arr cardíaca significativahythmia ou parada cardíaca até mesmo irreversíveis. Portanto, é crucial para evitar manipulações dos nervos vagais. Um fio de seda 5-0 laço frouxo foi feito em torno de cada CCA.
- Um pequeno tubo de silicone (2 mm de diâmetro) foi inserido entre o CCA e as suturas de seda em cada lado. Este tubo foi utilizada como uma tala do CCA do, a fim de evitar danificar as paredes arteriais, quando as suturas foram apertadas (Figura 4).
- Ambos CCA da ocluídas por um minuto, apertando as suturas de seda. Apenas os ratos, em que o sinal FDL foi reduzido a <10% do sinal de linha de base foram incluídos no estudo. Após a reabertura dos dois CCA de um período de cinco minutos de reperfusão foi iniciado. Por FDL foi assegurada uma completa reperfusão. Foram excluídos animais com reperfusão incompleta (ie <90% de recuperação da CBF em relação à linha de base CBF). A sequência de um minuto de BCCAO e cinco minutos de reperfusão foi repetido duas vezes para um total BCCAO duratiem de 3 min. Figura 1 mostra o curso significativo CBF obtida de dez gravações FDL durante BCCAO e reperfusão. Durante o procedimento, é recomendável manter o pescoço ferida húmida usando solução salina normal.
- Após a última reperfusão, todos os tubos e as suturas, bem como a sonda de fibras ópticas ligada ao crânio foi removido, as feridas foram suturadas e unguento de lidocaína (2% xilocaína; AstraZeneca GmbH, Wedel, Alemanha) foi aplicada várias vezes para as feridas como necessário para gestão analgésico.
- Ratos foram transferidos para um pré-aquecido (30 ° C) caixa de recuperação (MediHEAT. PecoServives Ltd. Brough, Cumbria, Reino Unido) até que tinha recuperado a consciência completa. Em seguida, os ratinhos foram devolvidos às suas gaiolas para animais.
5. Oclusão da artéria cerebral média
- Os ratinhos foram re-anestesiado, uma sonda de temperatura rectal foi inserido e os ratinhos foram colocados numa almofada de aquecimento para expor o lado ventral do pescoço. Posteriormente, eles were fixados como descrito na secção BCCAO.
- Uma ligadura permanente utilizando um longo 7-0 sutura de seda foi feito em torno da esquerda CCA proximal e o segmento foi cuidadosamente removido usando uma braçadeira caudalmente mosquito (Figura 4).
- Outra ligadura permanente foi feito em torno da artéria carótida externa esquerda (ACE) e o segmento foi puxado para o lado direito do animal (Figura 4).
- Tecido conjuntivo em torno do ICA esquerda foi cuidadosamente mobilizados e do nervo hipoglosso foi levantado suavemente para obter uma boa visão geral do curso distal do ICA. As curvas ICA esquerdo para a esquerda, enquanto a artéria pterigopalatina (PPA) segue o curso do ACI proximal para a direita (Figura 4).
Comentário: Há uma outra artéria a ser identificado que gira para a direita, em direção caudal. Esta é a artéria occipital, que variavelmente origina a partir da bifurcação CCA ou do prparte oximal da ECA (Figura 4).
- Um ciclo de sutura solto foi feito em torno da ACI proximal através de um fio de seda 5-0.
- Usando um pequeno grampo microvascular, a AIC foi temporariamente obstruída distalmente ao laço 5-0 sutura solto (Figura 4).
- Uma pequena incisão foi feita na parte distal do CCA, pouco antes da bifurcação CCA com uma tesoura microvasculares (Figura 4).
- Um monofilamento de silicone coberto de pré-seleccionada foi introduzida no CCA através da pequena incisão, e empurrado para dentro do ACI até parar no grampo microvascular (Figura 4).
- O microclampe foi cuidadosamente removido do ACI, enquanto que o monofilamento foi avançado mais profundamente na ICA até parar (Figura 4). Comentário: Neste ponto, virar a pinça na mão esquerda de modo que você não mantê-lo como uma caneta. Isto ajuda a agarrar o filamento com a pinça mais facilmente.O grampo aplicador vascular deve ser realizada na mão direita. Pode ser necessário para quase apertar a sutura 5-0 solta em torno do ACI, a fim de evitar o sangramento a partir do lado da incisão.
- A localização exata da ponta do monofilamento foi identificado para verificar se ele foi avançado para o ICA e não para o PPA. Se a ponta de monofilamento foi introduzida no PPA proximal, o filamento foi gentilmente puxado para trás pouco antes do ICA / PPA bifurcação. Foi tentou avançar o monofilamento no ICA, novamente, enquanto puxa suavemente o ICA proximal um pouco para o lado direito. Ao fazer isso, o curso natural da ACI distal foi simulado tornando mais fácil para acessar o ICA.
- Após o monofilamento foi avançada no ICA quase completamente, o laço frouxo 5-0 sutura ao redor do ICA proximal foi reforçada, a fim de manter o filamento no lugar. Depois, todos os fios de seda foram encurtadas ea pele ferida foi suturada.
- A perda de fluidos durante a cirurgia foi replentada por injecção ip de 1,0 ml de solução salina normal, Em seguida, o ratinho foi transferida para o quadro de recuperação pré-aquecido até que recuperaram a consciência completa.
- Para a reperfusão, os ratos foram re-anestesiados e o monofilamento removido, depois foi cuidadosamente o afrouxamento de seda de sutura 5-0 em torno da ICA proximal. Em seguida, o fio de sutura 5-0 foi novamente apertados cuidadosamente, a fim de evitar o sangramento.
- Após a confirmação da hemostasia completa, a ferida foi suturada pescoço.
- A lidocaína unguento foi repetidamente aplicado localmente na pele, conforme necessário para alívio da dor e o rato foi transferido para o pré-aquecido (30 ° C) até que a caixa de recuperação completa recuperou a consciência.
- Uma vez que foi observado um primeiro sinal de um procedimento bem sucedido MCAO, um horário circular do animal. A gravidade do déficit funcional foi quantificada pelo escore Bederson modificado para ratos 10. De acordo com esta pontuação Bederson modificado, os resultados neurológicos queestá classificada da seguinte forma: 0 (função motora normal), 1 (flexão do tronco e dos membros anteriores contralateral quando o mouse foi levantada pela cauda), 2 (circulando para o lado contralateral quando o mouse foi realizada pela cauda em uma superfície plana, mas normal, postura em repouso), 3 (inclinando-se para o lado contralateral em repouso) e 4 (sem atividade motora espontânea ou morto).
6. BCCAO Sham Cirurgia
Para procedimentos sham BCCAO, os ratinhos foram anestesiados para a duração de um verdadeiro procedimento BCCAO PC, as glândulas foram mobilizados salivação ea do CCA foram expostos. É fundamental que as manipulações diretas para as artérias carótidas ou nervos vagais são evitados durante procedimento simulado. Manipulações do CCA podem danificar a sua camada endotelial, o que pode resultar numa libertação de compostos vasoactivos a partir de endotélio ou induzir trombose local dentro do lúmen arterial. Como conseqüência, os eventos tromboembólicos pode ocorrer após a cirurgia sham. Este seria um grande fator de confusão of thprocedimento e. Por outro lado, manipulações dos nervos vagais pode conduzir a uma disfunção temporária ou permanente do sistema nervoso parassimpático, que tem o potencial para a ocorrência de arritmia cardíaca significativa ou mesmo paragem cardíaca irreversível. Portanto, é crucial para evitar manipulações dos nervos vagais durante BCCAO.
Procedimentos pós-cirúrgicos
7. Infarto Desconto Medidas
Para a avaliação de tamanhos de infarto, os ratos sobreviveram durante 72 horas após MCAO. Em seguida os animais foram profundamente anestesiados, os cérebros foram removidos, snap-congelado em metil, seccionado e corado com hematoxilina (usando o protocolo de Papanicolau) para medições de volume de infarto. Secções do cérebro foram recolhidos em intervalos de 600 micrometros de enfarte e os volumes foram determinados utilizando um analisador de imagem (MCID núcleo 7,0 Rev.2.0, GE Healthcare Niagara Inc) e foi corrigida para o edema de acordo com o método de Lin et ai. 7,11 .
8. Critérios de inclusão
Foram incluídos apenas os animais que tiveram uma redução CBF LDF medido por mais de 90% em cada um dos três episódios BCCAO. Idealmente, o monitoramento LDF deve ser realizada em ambos os hemisférios cerebrais durante BCCAO. Para a praticabilidade, é realizada a monitorização LDF apenas os hemisférios esquerdo, o que irá ser submetido a MCAO mais tarde. Esta abordagem tem sido descrito antes 6,12. Reperfusão após cada episódio BCCAO foi necessário para ser completo (ou seja, retorno aos valores basais). Por razões de reduzir o tempo de duração camundongos foram mantidos sob anestesia, não monitorar CBF durante a cirurgia MCAO. Em um estudo piloto com um grupo separado de animais no entanto, acompanhámos CBF por LDF durante a cirurgia MCAO. Neste grupo de ratos, nós sempre medido a redução CBF em 90% em relação à linha de base antes CCA oclusão. Além disso, após a remoção de monofilamentos CBF recuperado a> 90% da respectivavalores basais após oclusão da ACC. Estes critérios são FDL estabelecido na literatura e resultar em volumes infarto consistentes 7. Somente foram incluídos animais que tiveram uma pontuação Bederson de pelo menos de 1 após a recuperação da anestesia após MCAO. Além disso, apenas os animais que sobreviveram por 72 horas após MCAO e que não mostrou sinais de hemorragia intracraniana foram incluídos no estudo.