Artigo de método

Implantação de fibra óptica para Estimulação Crônica optogenética do Tecido Cerebral

DOI:

10.3791/50004

29 de outubro de 2012

Neste artigo

Resumo

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$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

O desenvolvimento de Optogenetics agora fornece os meios para estimular precisamente neurônios geneticamente definidas e circuitos, tanto In vitro E In vivo. Aqui, descrevemos a montagem e implantação de uma fibra óptica para fotoestimulação crônica do tecido cerebral.

Resumo

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Elucidando padrões de conectividade neuronal tem sido um desafio para a neurociência clínica e básica. Eletrofisiologia tem sido o padrão ouro para analisar padrões de conectividade sináptica, mas emparelhados registros eletrofisiológicos pode ser tanto complicado e experimentalmente limitante. O desenvolvimento de Optogenetics introduziu um método elegante para estimular os neurónios e circuitos, tanto in vitro e in vivo 1 2,3. Ao explorar tipo de célula-atividade do promotor específico para dirigir a expressão opsina em discretos populações neuronais, pode-se precisamente estimular geneticamente definidas subtipos neuronais em circuitos distintos 4-6. Métodos bem descritos para estimular os neurônios, incluindo a estimulação elétrica e / ou manipulações farmacológicas, são muitas vezes de células do tipo indiscriminada, invasivo e pode danificar os tecidos circundantes. Estas limitações podem alterar a função sináptica normal e / ou o comportamento do circuito. Além disso, devidoa natureza da manipulação, os métodos actuais são, muitas vezes aguda e terminal. Optogenetics proporciona a capacidade de estimular os neurónios de uma maneira relativamente inócua, e em neurónios alvo geneticamente. A maioria dos estudos in vivo envolvendo em Optogenetics actualmente utilizar uma fibra óptica guiada através de uma cânula implantada 6,7, no entanto, limitações deste método incluem o tecido cerebral danificado com inserção repetida de uma fibra óptica, e quebra potencial da fibra no interior da cânula. Dada a florescente campo de optogenética, um método mais confiável de estimulação crônica é necessária para facilitar estudos de longo prazo com o mínimo de danos colaterais tecido. Aqui nós fornecemos nosso protocolo modificado tal como um artigo de vídeo para complementar o método eficaz e elegante descrito em Sparta et al. 8 para o fabrico de um implante de fibra óptica e a sua fixação permanente sobre o crânio de ratos anestesiados, assim como a montagem do fibraacoplador óptico de ligar o implante a uma fonte de luz. O implante, conectado com fibras ópticas a um laser de estado sólido, permite um método eficiente para cronicamente photostimulate circuito neuronal funcional com menos danos do tecido 9 usando pequenos destacáveis, amarras. Fixação permanente dos implantes de fibra óptica fornece consistentes, a longo prazo, em estudos in vivo optogenética de circuitos neuronais em ratos acordados, comportando 10 a uma lesão tecidual mínima.

Protocolo

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* Todos os materiais, juntamente com respectivos fabricantes e / ou fornecedores estão listados a seguir o protocolo.

1. Assembleia de Implante

  1. Prepara-se uma mistura de calor epoxi curável de fibra óptica através da adição de 100 mg de endurecedor a 1 g de resina.
  2. Medir e cortar aproximadamente 35 mm de 125 fibra óptica com 100 mM mM núcleo marcando-lo com um escriba carboneto cunha ponta. Posicione o escriba perpendicular à fibra óptica e pontuação em um movimento único unidirecional. Cortando a fibra completamente irá danificar o núcleo da fibra.
  3. Insira uma cerâmica LC ponteira com um 127 mM levavam para o vice, lado convexo apontou para baixo.
  4. Insira o de fibra óptica no ponteira. A fibra óptica deve deslizar suavemente e marginalmente se projetam além do final convexa da ponteira (Figura 1a).
  5. Aplique uma gota de calor curável epóxi fibra óptica para a extremidade plana e calor com a arma de fogo até epóxi fica preta. O epóxi deveencher a virola como ele é aquecido e antes da cura. O epóxi deve curar dentro de ~ 1 min de aplicação de calor constante.
  6. Limpar qualquer epoxi ao longo dos lados da manga, uma vez que irá dificultar a interface com o acoplador.
  7. Polir a extremidade convexa da virola com um disco de polimento LC fibra óptica (FOPD) em folhas de alumínio óxido de polimento sobre a almofada de polimento (Figura 1b). Fazer padrões circulares de rotação e polonês em quatro graus, na seguinte ordem: 5, 3, 1 grão mM 0,3.
  8. Cortar a fibra óptica na extremidade plana com o comprimento adequado de tal forma que tem como alvo a região de interesse. O comprimento pode ser determinado utilizando o atlas estereotáxico.
  9. Testar o implante, ligando-a a laser, através do cabo de acoplamento descrito abaixo. A extremidade polida do implante é inserido na manga do dispositivo de acoplamento e deve entrar directamente em contacto com a virola de oposição. O implante deve ser capaz de manter a 10 mW de saída de luz, medida na extremidade do thfibra implante e. Um implante mau terá um ponto fraco focal próximo da ponta da fibra óptica.
  10. Armazenar os implantes acabados (Figura 1c) de espuma, até utilização.

2. Assembleia de Cabo Acoplador de fibra óptica

  1. Prepara-se uma mistura de calor epoxi curável de fibra óptica como descrito acima.
  2. Meça e corte um comprimento adequado de 220 fibra óptica com 200 mM mM núcleo marcando-lo com um escriba carboneto de cunha ponta. O comprimento da fibra deve permitir que o rato se mover livremente em torno da caixa, mas não permitem que o rato para mastigar através da fibra.
  3. Inserir a fibra óptica para um comprimento de tubagem de furca ligeiramente mais longo do que o comprimento da fibra óptica. O tubo deve ter um diâmetro interior ligeiramente maior do que a da fibra óptica.
  4. Faixa ~ 25mm em uma das extremidades da fibra óptica e inseri-la na extremidade de metal de um MM FC Multimode virola Assembly com 230 uM furo até que pare. A fibra óptica deve ficar fora através da ferrule final (Figura 2a).
  5. Assegurar a ligação com o cianoacrilato (super-cola) na extremidade de metal. Cubra a conexão com um conector de inicialização e polir a final com uma ponteira FOPD FC. Fazer padrões circulares de rotação e polimento em quatro graus na seguinte ordem: 5, 3, 1, 0,3 mM grão (Figura 2b).
  6. Tira e insira a outra extremidade da fibra óptica para uma cerâmica LC virola (230 uM ID furo) com a extremidade distal convexa. Aplicar uma gota de epóxido para a extremidade plana e calor até a cura.
  7. Polir a extremidade convexa da virola com um FOPD FC em folhas de alumínio óxido de polimento como descrito acima.
  8. Deslizar a manga LC virola sobre a extremidade convexa do casquilho até ao ponto médio da manga.
  9. Lugar tubo termorretráctil sobre o tubo de bifurcação e manga e calor para fixar e proteger a ligação (Figura 2c).
  10. Testar o acoplador, ligando-a à fonte de laser e de medição da luz output através do acoplador com um espectrofotómetro. A perda de luz entre a saída do laser e o acoplador de saída medido não deve exceder 30%.

3. Implantação cirúrgica

* Este é um procedimento pontas apenas. Instrumentos são estéreis mas as luvas não precisam ser devido a manipulação constante entre os instrumentos e equipamentos.

  1. Anestesiar o rato com uma injecção intraperitoneal mistura ketamina / xilazina 100 e 10 mg / kg, respectivamente, utilizando uma agulha de calibre 30.
  2. Raspar o couro cabeludo com clippers. Limpar o couro cabeludo, com 70% de álcool isopropílico seguida de Betasept limpar (solução de clorexidina a 4%) durante dois minutos, repetindo-se uma vez.
  3. Posicione o mouse na plataforma sterotaxic e proteger a cabeça, garantindo que o crânio é de nível. Aplicar pomada oftálmica nos olhos para evitar a secura e dor pós-operatória. Manter a anestesia usando% isoflurano (1-3 volatilizados diluído com o oxigênio, dependendo do estado fisiológico do mouse, o qual deve ser continuamente monitorizado por resposta a uma pitada de cauda).
  4. Fazer uma incisão pela linha média do couro cabeludo, expondo o crânio das órbitas oculares de lambda. Afastar do tecido conjuntivo, como necessário.
  5. Use grampos Serafin para segurar a pele e manter um acesso ao crânio (Figura 3a).
  6. Um padrão quadriculado Etch toda a superfície do crânio com uma palheta dental. Lave os detritos com uma solução salina estéril. Seque bem.
  7. Aplicar o peróxido de hidrogénio (3%) ao crânio exposta com uma mecha de algodão para ~ 2-3 segundos para criar microporos. Lave várias vezes e seque bem. Alternativamente, as âncoras pode ser aparafusado na cavidade craniana, como descrito em Sparta et al. (2012).
  8. Novamente, um padrão xadrez etch todo o crânio com uma picareta dental e lavar os detritos com solução salina. Seque bem.
  9. Usando uma ferramenta rotativa, fazer um pequeno orifício de trepanação craniotomia (<1 mm de diâmetro) com uma broca estéril(Autoclavado) acima da região de interesse, determinada pelo atlas estereotáxico calibrado para bregma e lambda. Tenha cuidado para não quebrar a dura ou danificar qualquer tecido. Lave e seque bem os detritos.
  10. Insira a ponteira de fibra óptica (implante) para o suporte da sonda e ligar para o braço estereotáxico.
  11. Posicionar o implante no local directamente acima da região de interesse, utilizando o braço estereotáxico (Figura 3b). Se a inserção da fibra óptica no tecido cerebral, a fibra deve ser avançada lentamente, a uma taxa de ~ 2 mm / min. A ponteira deve descansar no crânio restante.
  12. Prepara-se uma mistura de cimento dentário. A mistura deve ter uma viscosidade suficientemente baixa para aplicar facilmente através do crânio. Mistura será utilizável para 2-4 min.
  13. Utilizando um palito estéril, aplicar uma camada fina e uniforme de cimento dentário através do crânio e para a porção inferior do implante. A camada de base de cimento dental deve cobrir área de superfície, tanto no crânio comopossível. Não deixe que o cimento dental entrar em contacto com a pele do rato. Isto levará a dificuldade acrescida de sutura, bem como irritação para o rato. Se o cimento dental não entrar em contacto com a pele, permitir a secar parcialmente de tal forma que toda a camada de cimento pode ser retirada antes do ajuste.
  14. Deixe-a secar completamente.
  15. Aplicar até mesmo camadas de cimento dentário para formar um pequeno monte por cima do crânio e em torno do implante, permitindo que cada camada secar completamente (Figura 3c). Deixar ~ 3-5 mm da extremidade convexa da ponteira limpa de cimento para permitir uma ligação suave e desobstruído.
  16. Suturar o couro cabeludo sobre o monte de cimento dentário e em torno do implante usando suturas estéreis, de uso único de seda entrançada (6-0) com uma agulha de C22. Remover após 7 dias. Opcional: Bond Vet Uso para ligação adicional após a sutura. Certifique-se de usar de Bond Vet mínimo. O excesso pode levar a danos na pele graves devido a arranhões.
  17. Immediately após a cirurgia, o rato deve ser injectado por via subcutânea com Ketprophen (5 mg / kg) para diminuir a dor no pós-operatório. Isto deve ser repetido 24 horas depois. Aplicar analgésicos tópicos (Bupivicaine) e antibióticos (Neosporin) para a pele suturada e em torno da base do implante.
  18. Posicione o mouse em uma gaiola sobre uma manta de aquecimento para a recuperação da anestesia. Posicione o mouse em uma gaiola estéril, recuperação pós-operatória. A gaiola de recuperação não deve conter qualquer cama a fim de manter a temperatura e evitar a asfixia. O rato pode ser devolvida à gaiola original ou uma nova gaiola uma vez acordado.

Montagem adequada do implante de fibra óptica e os resultados do acoplador na perda de fotões mínima entre a fonte de luz e a extremidade da fibra óptica na região de interesse. Ótica bem polidas fibra devem transmitir a luz em um uniforme, círculo concêntrico (Figura 2d). Com a implantação cuidadosa e sutura, o implante não causa irritação visívelo rato e pode permanecer no lugar por estudos de longo prazo (Figura 3D,> 1 mês, observações não publicadas), sem qualquer degradação significativa da fibra óptica ou da quantidade de luz transmitida. Implantação inadequada ou sutura pode causar irritação e pode resultar no rato arranhões através do seu couro cabeludo, expondo o cimento dentário, ou quebra da ponteira do cimento dental devido à manipulação persistente. Um diagrama esquemático do sistema montado pode ser visto na Figura 4.

figure-protocol-1
Figura 1. Assembleia da fibra óptica implantáveis. (A) A fibra óptica é inserido na manga, ligeiramente saliente para além da extremidade convexa indicada pela seta. (B) A extremidade convexa da virola é polida utilizando um FOPD em graus progressivamente mais finos de folhas de polimento. (C) O opt fibra acabado implantávelIC. Clique aqui para ver maior figura .

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Figura 2. Montagem do acoplador de fibra óptica utilizado para amarrar o conjunto rotativo de fibra óptica para o implante. (A) a aderência fibra óptica através do conjunto ponteira. (B) O lado da virola do conjunto é inserido nos graus FOPD e polidas usando progressivamente mais finas de papel de lustro. (C) A manga ponteira é colocada sobre a manga e fixada com um tubo de retracção térmica. (D) O acoplador de fibra óptica deve terminar produzem uma luz concêntrico com perda mínima de fotões.

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Figura 3. Implante cirúrgico das fibras ópticas. (A) A superfície total do cranium é exposta e o tecido conjuntivo é apagada. (B) O implante de fibra óptica é mantida em posição com o braço estereotáxico. (C) de cimento dental é aplicado fixação do implante de fibra óptica ao crânio. (D)> 1 mês após a implantação, a pele tenha cicatrizado em torno do implante e não existem sinais de irritação.

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Figura 4. Diagrama esquemático do sistema funcional

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Discussão

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Optogenética é uma nova e poderosa técnica que permite o controle sem precedentes sobre subtipos específicos de neurônios. Isto pode ser explorado para modular os circuitos neurais com precisão anatómica e temporal, evitando ao mesmo tempo o tipo de célula indiscriminada e efeitos invasivas de estimulação eléctrica através de um eléctrodo. O implante de fibras ópticas permite uma estimulação consistente e crónica dos circuitos neurais mais sessões múltiplas em desperto, comportando camundongos com danos mínimos para o t...

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Agradecimentos

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Gostaríamos de reconhecer que esta técnica foi descrita originalmente por Sparta et al., 2012 e foi facilmente adaptado para uso em nosso laboratório.

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Nome do reagente ou Equipamento Companhia Catálogo # Comentários
LC Manga Ferrule Fibra produtos de precisão (PFP) SM-CS125S 1,25 mm ID
FC MM pré-montados Conector PFP MM-CON2004-2300 230 mM Virola
Miller FOPD-LC Disco PFP M1-80754 Para LC virolas
Tubulação de furca PFP FF9-250 900 ^ M od, 250 uM ID
MM LC Vara Virola 1,25 milímetros PFP MM-FER2007C-1270 ID 127 mM Diâmetro
MM LC Vara Virola 1,25 milímetros PFP MM-FER2007C-2300 230 mMID Diâmetro
Heat-curável epóxi, resina e endurecedor PFP ET-353ND-16OZ
FC / PC e SC / PC Conector Disk Polimento Thorlabs D50-FC Para o FC virolas
Potência óptica digital e medidor de energia Thorlabs PM100D Espectrofotômetro
Polir Thorlabs NRS913 9 "x 13" 50 Durômetro
Óxido de alumínio lapidação (polimento) Folhas: 0,3, 1, 3, 5 grits mM Thorlabs LFG03P, LFG1P, LFG3P, LFG5P
Fibra Revestimento rígido padrão Multimodo Thorlabs BFL37-200 OH baixo, 200 Núcleo uM, 0,37 NA
Ferramenta de descascamento da fibra Thorlabs T10S13 Clad / Coem: 200 um 300 um /
SÍLICA / sílica de fibra óptica Polymicro Technologies FVP100110125 Alta-OH, UV Enhanced, 0,22 NA
1x1 Conjunto Fiberoptic Rotary lentes dóricas FRJ_FC-FC
Mono Fiberoptic Patchcord lentes dóricas MFP_200/230/900-0.37_2m_FC-FC
Dissipadores de calor, tubos 1/8 polegada Aliado Eletrônica 689-0267
Pistola de calor Aliado Eletrônica 972-6966 250 W; 750-800 ° F
Algodão derrubou aplicadores Puritano Medical Products Company 806-WC
Adesivo de tecido VetBond Fischer Scientific 19-027136
Flash acrílica para base de prótese Yates Motloid ColdPourPowder + Liq
BONN Miniatura Iris Tesoura Miltex Integra 18-1392 3-1/2 "(8,9 centímetros), em linha reta, 15 lâminas milímetros
Johns Hopkins Bulldog Grampo Miltex Integra 7-290 1-1/2 "(3,8 cm), curvada
MEGA-Torque Elétrica Laboratório Motor Vetor EL-S
Pantera Burs-Bola 1 Clarkson Laboratório 77,1006
Violet Blue Laser System CrystaLaser CK473-050-O Comprimento de onda: 473 nm
Laser Alimentação CrystaLaser CL-2005
Dumont n º 2 Fórceps laminectomia FFerramentas ine Ciência 11223-20
Sonda Belas Science Tools 10140-02
5 Hemostat "Straight Excelta 35-PH
Vise com base ponderada Altex Eletrônica PAN381

Referências

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  1. Boyden, E. S., Zhang, F., Bamberg, E., Nagel, G., Deisseroth, K. Millisecond-timescale, genetically targeted optical control of neuronal activity. Nat Neurosci. 8, 1263-1268 (2005).
  2. Arenkiel, B. R. In Vivo Light-Induced Activation of Neural Circuitry in Trangenic Mice Expressing Channelrhodopsin-2. Neuron. 54, 205-218 (2007).
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  8. Sparta, D. R. Construction of implantable optical fibers for long-term optogenetic manipulation of neural circuits. Nature Protocols. 7, 12-23 (2012).
  9. Stuber, G. D. Excitatory transmission from the amygdala to nucleus accumbens facilitates reward seeking. Nature. 475, 377-380 (2011).
  10. Liu, X. Optogenetic stimulation of a hippocampal engram activates fear memory recall. Nature. 484, 381-385 (2012).

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