Uma variedade de processos celulares, tanto fisiológicos quanto fisiopatológicos, requerem ou são governados pelo cálcio, incluindo exocitose, função mitocondrial, morte celular, metabolismo celular e migração celular, para citar apenas alguns. O cálcio citosólico é normalmente mantido em baixas concentrações nanomolares; em vez disso, é encontrado em altas concentrações micromolares a milimolares no retículo endoplasmático, na matriz mitocondrial e no compartimento extracelular. Após a estimulação, um aumento transitório no cálcio citosólico serve para sinalizar eventos a jusante. A detecção de alterações no cálcio citosólico é normalmente realizada usando uma imagem de células vivas configurada com corantes de ligação ao cálcio que exibem um aumento na intensidade de fluorescência ou uma mudança no comprimento de onda de emissão após a ligação do cálcio. No entanto, uma configuração de imagem de células vivas não é acessível gratuitamente a todos os pesquisadores. Métodos alternativos de detecção foram otimizados para células imunológicas com citometria de fluxo e para células aderentes não imunológicas com um leitor de microplacas de fluorescência. Aqui, descrevemos um método simples e otimizado para detectar alterações nas células epiteliais com citometria de fluxo usando um corante de ligação de cálcio de comprimento de onda único. As células epiteliais do túbulo proximal renal aderentes, que normalmente são difíceis de carregar com corantes, foram carregadas com um corante de ligação de cálcio permeável a células fluorescentes na presença de probenecida, colocadas em suspensão e os sinais de cálcio foram monitorados antes e depois da adição de tapsigargina, tunicamicina e ionomicina.