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Técnicas de Análise de vesículas extracelulares utilizando citometria de fluxo

DOI:

10.3791/52484

March 17th, 2015

In This Article

Summary

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Existem muitos métodos diferentes para a medição de vesículas extracelulares (SVE) utilizando citometria de fluxo (FCM). Vários aspectos devem ser considerados para determinar o método mais adequado para usar. Dois protocolos de VE de medição são apresentadas, usando detecção individual ou uma abordagem baseada no talão.

Abstract

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Vesículas extracelular (VE) são pequenas, vesículas derivadas de membrana encontrados nos fluidos corporais que são altamente envolvido na comunicação célula-célula e ajudam a regular uma variada gama de processos biológicos. Análise de EVs usando citometria de fluxo (FCM) tem sido notoriamente difícil devido ao seu pequeno tamanho e falta de populações discretas positivas para os marcadores de interesse. Métodos de análise EV, enquanto melhorou consideravelmente na última década, ainda são um trabalho em andamento. Infelizmente, não há one-size-fits-all protocolo, e vários aspectos devem ser considerados para determinar o método mais adequado para usar. Apresentado aqui estão várias técnicas diferentes para o processamento de EVs e dois protocolos para a análise de EVs usando detecção individual ou uma abordagem baseada no talão. Os métodos descritos aqui vai ajudar com eliminando os agregados de anticorpos normalmente encontrados em preparações comerciais, aumentando a relação sinal-ruído, e portões configuração em um f racionalashion que minimiza a detecção de fluorescência de fundo. O primeiro protocolo utiliza um método individual de detecção que é especialmente adequado para a análise de um grande volume de amostras clínicas, enquanto que o segundo protocolo utiliza uma abordagem baseada no grânulo para capturar e detectar os VE e exossomas menores.

Introduction

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Vesículas extracelular (VE) são pequenas, vesículas derivadas de membrana encontrados nos fluidos corporais que são altamente envolvido na comunicação célula-célula e ajudam a regular uma variada gama de processos biológicos. Análise de EVs usando citometria de fluxo (FCM) tem sido notoriamente difícil devido ao seu pequeno tamanho e falta de populações discretas positivas para os marcadores de interesse. Métodos de análise EV, enquanto melhorou consideravelmente na última década, ainda são um trabalho em andamento. Infelizmente, não há one-size-fits-all protocolo, e vários aspectos devem ser considerados para determinar o método mais adequado para usar. Apresentado ....

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Protocol

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NOTA: Os seguintes protocolos foram realizados em conformidade com todas as diretrizes institucionais, nacionais e internacionais para o bem-estar humano. Todas as amostras de sujeitos humanos foram testados no âmbito de um Conselho de Revisão Institucional (IRB) protocolo -aprovado e com o consentimento informado dos sujeitos.

1. MÉTODO A: Método de Detecção Pessoa

1.1) Processamento de Amostra de Sangue / Isolamento de EVs

  1. Extrair o sangue do dador / paciente em duas 10 ml de tubos de vidro contendo 1,5 mL de solução ACD-A ou outro anticoagulante adequado e processo imediatamente (dentro de 30 min-ma....

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Results

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A Figura 1 apresenta o esquema de tratamento global para o isolamento e detecção de veículos eléctricos, utilizando quer o método baseado em grânulo ou método de detecção individual. Detecção individual de EVs usando FCM funciona bem para a análise de EVs maiores, mas a maioria dos cytometers não são capazes de detectar individualmente partículas tão pequenas como exossomos. Uma abordagem baseada em grânulo permite VE pequenas para serem detectados, no entanto, existem desvantagens associadas com a util.......

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Discussion

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Dois diferentes protocolos para o isolamento, tratamento e análise de VE foram apresentados, utilizando quer uma individual de detecção ou de aproximação baseadas em esferas. Selecionando o método mais adequado para usar nem sempre é fácil e requer uma compreensão da amostra a ser testada, bem como as subpopulações de interesse individuais. Além disso, a sensibilidade do citómetro usado para a aquisição deve ser considerado quando se escolhe o método mais adequado. Muitas vezes não há melhor protocolo único de usar, em .......

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Disclosures

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Os autores não têm qualquer conflito de interesse de divulgar.

Acknowledgements

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Os autores gostariam de agradecer a Dale Hirschkorn partir Systems Research Institute de sangue por sua ajuda com citômetro de fluxo configurações do instrumento. Este trabalho foi financiado pelo NIH concede HL095470 e U01 HL072268 e contratos DoD W81XWH-10-1-0023 e W81XWH-2-0028.

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Citômetro de fluxo de bancada LSR IIBD Biosciences3-laser (20 mW Coherent Sapphire 488 nm azul, 25 mW Coherent Vioflame 405 nm violeta, e 17 mW JDS Uniphase HeNe 633 nm vermelho)
Software FACS Diva BD BiosciencesPC versão 6.0
Software FlowJo Treestar USMac versão 9.6.1 ou PC versão 7.6.5
Sphero Rainbow partículas fluorescentesBD Biosciences 556298usado para ajustar todas as tensões de canal para manter a consistência da intensidade da fluorescência 
Partículas fluorescentes Ultra Rainbow SpherotechURFP-10-5usado além dos grânulos SSC Megamix-Plus para garantir a consistência do gating EV de lote para lote
Os grânulos Megmix-Plus SSCBiocytex7803usado para ajustar as tensões FSC e SSC para manter a consistência entre as execuções. Também pode ser usado para monitorar a taxa de fluxo e ajustar a discagem da taxa de fluxo, a fim de garantir que a mesma taxa de fluxo seja usada em todas as execuções
Kit de contas anti-mouse AbCLife TechnologiesA-10344usado para controles de compensação e contas AbC negativas usadas para o método baseado em contas
Nonidet P-40 Alternativa (NP-40) (CAS 9016-45-9)Santa Cruz SC-281108Usado no método de detecção individual apenas para lisar amostras após a leitura inicial para uso como controles negativos. O estoque pode ser diluído para 1:10 em PBS e armazenado na geladeira por até 1 mês.
Tubos BD TruCOUNT ABD Biosciences340334usada sempre que concentrações absolutas de EV são necessárias
Ultrafree-MC, GV 0.22 µ m Unidades de Filtro CentrífugoMillipore UFC30GVNBusado para lavagem pós-mancha Evs e/ou EVs fracionados com base no tamanho
Tubos de sangue total de vidro Vacutainer ACD-ABD Biosciences364606
Tubos Facs 12x75 poliestirenoBD Biosciences352058
50 ml Reservatórios embalados individualmente PhenixRR-50-1s
Green-Pak - 10 µ lRaininGP-L10S
Green-Pak -200 µ l RaininGP-L250S
Green -Pak - 1.000 µ l Pontas RaininGP-L1000S
Stable Stack L300 pré-esterilizadasRaininSS-L300S
Pipet-Lite XLS 8 Canais LTS  Ajustável  Espaçador RaininLA8-300XLS
E& K ScientificEK-20180
RPMI 1640 Mídia (sem Hepes)Instalação de Cultura de Células UCSFCCFAE001mídia usada para método de detecção baseado em esferas
Dulbeccos PBS D-PBS, CaMg-free, 0.2 µ m filtradoUCSF Cell Culture FacilityCCFAL003
Ultracentrifuge Tube, Thinwall, Ultra-ClearBECKMAN COULTER INC
PANEL I
CD3 PerCP-Cy5.5Biolegend3448082 µ l
CD14 APC-Cy7Biolegend3018202 µ l
CD16 V450BD Biosciences5604742 µ l
CD28 FITCbiolegend3029062 µ l
CD152 APCBD Biosciences5558552 µ l
CD19 A700Biolegend3022262 µ l
PAINEL II
CD41a PerCP-Cy5.5BD Biosciences3409302 µ l
CD62L APCBiolegend3048102 µ l
CD108 PE BD Biosciences5528302 µ l
CD235a FITCbiolegend3491042 µ l
PAINEL III
CD11b PE-Cy7Biolegend3013222 µ l
CD62p APCBiolegend3049102 µ l
CD66b PE Biolegend3051062 e micro; l
CD15 FITCexalphaX1496M5 µ l
CD9 PEBiolegend555372
CD63 APCBiolegend353008
APC-Cy7 Ms IgG2a, κBiolenda400230
Pontas de pipeta Pontas de pipeta Pontas de pipeta Placas de cultura de tecidos de 96 poços 344058

References

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  1. Andaloussi, S., Mäger, I., Breakefield, X. O., Wood, M. J. A. Extracellular vesicles: biology and emerging therapeutic opportunities. Nature Reviews Drug Discovery. 12 (5), 347-357 (2013).
  2. Sugawara, A., Nollet, K. E., Yajima, K., Saito, S., Ohto, H.

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Extracellular VesiclesFlow CytometryBead Based DetectionIndividual DetectionPlatelet Poor PlasmaAntibody StainingCytometer SetupFluorescent ParticlesPolystyrene BeadsForward Scatter

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