Preparação fácil e eficiente de glicopolímeros fluorescentes Tri-componente via polimerização controlada pelo JANGADA

Resumo

Uma síntese eficiente de três etapas de glicopolímeros fluorescentes à base de RAFT, consistindo em preparação de glicomonômeros, copolimerização e pós-modificação, é demonstrada. Este protocolo pode ser usado para preparar glicopolímeros estatísticos baseados em RAFT com estruturas desejadas.

Resumo

Glicopolímeros sintéticos são ferramentas instrumentais e versáteis utilizados em vários campos de pesquisa bioquímicos e biomédicos. Um exemplo de uma síntese fácil e eficiente de glicopolímeros estatísticos fluorescentes bem controlados usando reversível adição-fragmentação de transferência de cadeia (RAFT) polimerização baseados é demonstrada. A síntese inicia-se com a preparação de 2-metacrilamida glycomonomer lactobionamidoethyl contendo β-galactose obtido por reacção de lactobionolactone e N - (2-aminoetil) metacrilamida (AEMA). 2-Gluconamidoethyl metacrilamida (GAEMA) é usado como um análogo estrutural falta um β-galactósido terminal. A seguinte reacção de copolimerização mediada por RAFT envolve três monómeros diferentes: N - (2-hidroxietil) acrilamida como espaçador, AEMA como alvo para posterior marcação por fluorescência, e os glycomonomers. Tolerante de sistemas aquosos, o agente RAFT usado na reacção é (ácido 4-cianopentanóico) -4-dithiobenzoate.Low dispersities (≤1.32), composições de copolímeros previsíveis e alta reprodutibilidade das polimerizações foram observadas entre os produtos. Polímeros fluorescentes são obtidas através da modificação das glicopolímeros carboxifluoresceína com éster de succinimidilo alvejando os grupos funcionais de amina primária em AEMA. Especificidades de ligação de lectina das glicopolímeros resultantes são verificados por meio de testes com esferas de agarose correspondentes revestidos com glycoepitope reconhecendo lectinas específicas. Devido à facilidade de síntese, o apertado controlo das composições e produtos da boa reprodutibilidade da reacção, este protocolo pode ser traduzido no sentido preparação de outros glicopolímeros à base de balsa com estruturas e composições específicos, se o desejar.

Introdução

Nas últimas duas décadas, as investigações com glicopolímeros sintéticos tenham sido submetidos a um desenvolvimento lento, mas contínuo, demonstrando potencial significativo no exame infecciosas mecanismos que incluam actividades de investigação que incide sobre lectina reconhecimento processa ^1-3. Desde glicopolímeros sintéticos possuindo porções de açúcar multivalentes exibem eficácias de ligação a lectina muito mais elevadas, em comparação com os hidratos de carbono monovalentes, eles são de grande procura no campo Glycobiology ^3. De particular interesse na investigação clínica é a utilização de glicopolímeros fluorescentes para caracterizar a ligação com hidratos de carbono disponíveis na superfície das células do aparelho respiratório humano e glicoproteína mucosa bacteriana mediada por lectinas. No início de estudos in vitro empregues glicopolímeros baseados em poliacrilamida disponíveis comercialmente em testes de ligação bacterianas. Várias dessas sondas mostraram resultados promissores, mas levantou preocupações a respeito, variâncias obtainability, e de lote para lote, tanto polpeso molecular Ymer e conteúdo glycoepitope. Um protocolo econômico em laboratório foi desenvolvido o que proporcionaria para um controle satisfatório de conteúdo estrutura, tamanho e pureza de glicopolímeros sintéticos visando lectinas bacterianas.

Em busca de uma abordagem sintética adequada para glicopolímeros, uma técnica relativamente nova de polimerização foi testada usando um tipo de polimerização radical controlada que empregue reversível adição-fragmentação da cadeia de transferência (RAFT) agentes ^4. Tais reagentes RAFT foram recentemente utilizados em algumas preparações glicopoliméricos ^5-7. Em comparação com outros protocolos de preparação glicopoliméricos, polimerizações mediada por RAFT demonstrar várias vantagens, incluindo a tolerância a uma variedade de estruturas de monómeros e as condições de reacção, a compatibilidade potencial com soluções aquosas, e baixa dispersividade de tamanhos dos produtos poliméricos desejados ^8,9. De notável interesse são protocolos para a preparação de JANGADA-baglicopolímeros tri-componente sed, permitindo o controlo de composições de monómeros diferentes, cada um dos quais podem ter funções distintas ^10-13. No entanto, a maioria dos esforços de pesquisas anteriores ou faltava anom�icos carboidratos pingente ^10, ou empregada entrou polimerização, resultando em copolímeros tri-bloco, que consistem em homopolimeros covalente, que muitas vezes servem a propósitos diferentes do que os polímeros estatísticos que são copolímeros em que a sequência de monômero resíduos de seguir uma regra estatística ^9-13.

Recentemente, empregando o composto RAFT thiocarbonylthio (ácido 4-cianopentanóico) -4-dithiobenzoate num ambiente aquoso, a preparação de um grupo de TRAF baseado no glicopolímeros estatísticos tri-componente lineares contendo pendentes açúcares específicos e a sua aplicação em ligação bacteriana mediada por lectina testes foi relatado ^14. O objetivo geral deste método, apresentadas de forma visual, é preparar tri-componenteglicopolímeros fluorescentes estatísticos por copolimerização controlado-jangada. Devido à facilidade de o protocolo de polimerização de uma etapa, o controlo fino sobre o comprimento de polímeros e composições, e a elevada reprodutibilidade da reacção, este protocolo pode ser facilmente aplicado para outras sínteses à base de conjunto de glicopolímeros com estruturas desejadas.

Protocolo

1. Síntese de 2-Glycomonomer Lactobionamidoethyl metacrilamida

1. Dissolver 2 g de ácido lactobiónico em 3,0 ml de metanol anidro e lentamente adicionar etanol absoluto em uma gota forma prudente até que a solução apenas se transforma nublado, em seguida, remover os solventes via rotoevaporação.
2. Dissolve-se o resíduo, a partir do passo 1.1, em 3,0 ml de metanol anidro e, uma vez mais, adiciona-se lentamente etanol absoluto até pouco turvo, em seguida, evapora-se os solventes por meio de evaporação rotativa. Repetir esta etapa três vezes para se obter lactobiono-1,5-lactona (1,94 g, 98% de rendimento). Este produto tem pureza suficiente para ser utilizado nas reacções seguintes.
3. Adicionar 1,0 g de lactobionolactone em 3,0 ml de metanol a N - (2-aminoetil) metacrilamida (AEMA, 0,58 g) e éter monometílico de hidroquinona (MEHQ, 1,0 mg), um inibidor de auto-polimerização, em 2,0 ml de metanol, seguido em 1,0 ml de trietilamina. Agita-se à TA durante 48 h.
4. Adicionar 20 ml de _H2O desionizada ₍₂ dH O) ao balão de reacção, em seguida, remover o metanol e trietilamina livre por evaporação até à secura por meio de evaporação rotativa.
5. Para remover qualquer ácido lactobiónico remanescente, adicionar 20 ml de dH ₂ O, em seguida, passar a solução aquosa através de uma coluna de troca aniónica (forma OH ^-, em 10 mm x 20 mm) para uma proveta de recepção contendo 1,0 mg de MEHQ.
6. Remover trietilamina, produzido no Passo 1.5, por evaporação até à secura por meio de evaporação rotativa.
7. Adicionar 20 ml de _dH2O e remover AEMA que não reagiu por adição lenta de 1 mg alíquotas de resina de permuta de catiões (forma H ⁺⁾ até que não ninidrina materiais reactivos são detectáveis. Monitorizar a eliminação, tomando aliquotas de 1 mL da solução após cada adição de resina, aplicando-a a uma placa de cromatografia em camada fina, em seguida, pulverizando a placa com um teste da ninidrina de 2% em solução de etanol. Quando nenhuma cor azul profundo é observado o desenvolvimento quando a chapa é aquecida a 90 ° C durante 1 min, o ponto final tenha sido atingido.
8. Filtrar a solução através de um funil de vidro de frita, transferir o filtrado para um tubo de ensaio, congelar a amostra a -80 ° C, e, em seguida, liofilizar.
9. Remover MEHQ a partir da amostra através da dissolução do material seco por congelação em uma quantidade mínima de metanol (~ 0,5 ml), em seguida, adicionar acetona anidra fria (-20 ° C, 15 ml) para precipitar o produto. Recolhe-se o precipitado por filtração, utilizando um funil de frita de vidro, em seguida, secar-se o precipitado em um exsicador sob vácuo para se obter 2-metacrilamida lactobionamidoethyl (LAEMA) como um pó esbranquiçado (0,94 g, 68% de rendimento). Este produto tem pureza suficiente para ser utilizado nas reacções seguintes.

2. Síntese de monómero de 2-Gluconamidoethyl metacrilamida

Nota: A preparação de 2-gluconamidoethyl metacrilamida (GAEMA), que não possui um açúcar pendente, foi adaptado a partir de um método publicado em ^15.

1. Adicionar 2,0 g de AEMA dissolvido em 10 ml de metanol a uma solução dede D-gliconolactona (1,6 g) em 30 ml de metanol e, sob agitação, adiciona-se lentamente 1,6 ml de trietilamina.
2. Agita-se a reacção à temperatura ambiente durante 24 h.
3. Filtra-se o produto precipitado através de um funil de frita de vidro e lavar o precipitado três vezes com 10 ml de cada vez de isopropanol, em seguida, lava-se com 10 ml de acetona seca. Seca-se o produto precipitado em um exsicador sob vácuo.

3. JANGADA glicopoliméricos Síntese

1. Para remover o MEHQ inibidor presente em N comercial - (2-hidroxietil) acrilamida (HEAA), adicionar 1 ml de HEAA para um tubo de microcentrifugação de 2 ml, seguido pela adição de 0,5 g de nanopartículas de óxido de alumínio. Centrifuga-se o tubo a 300 xg durante 30 seg, e usar a camada de topo HEAA na reacção seguinte.
2. Adiciona-se cuidadosamente 32,8 mg de LAEMA (70,0 umol), 1,7 mg de AEMA (10,5 umol) e 27,5 uL de HEAA (270 umol), todos dissolvidos em 0,4 ml de dH ₂ O, para um tubo de 1 ml de Schlenk bem limpo, assim tendo um Monomer razão molar de 20: 3: 77.
3. Numa reacção paralela, a fim de produzir polímeros de controlo que não possuem qualquer açúcar pendente, em vez de utilizar LAEMA na etapa 3.2, 21,4 mg de substituir GAEMA (70,0 umol) na reacção.
4. Para o respectivo tubo de Schlenk (isto é, 3,2 ou 3,3), adiciona-se sequencialmente 50 ul de DMF contendo 0,53 mg de (ácido 4-cianopentanóico) -4-dithiobenzoate (1,9 umol, agente RAFT), e 50 ul de DMF contendo 250 mg de 4,4'-azobis- (ácido 4-cianovalérico) (0,9 umol, iniciador). Misture delicadamente com o dedo tocando.
5. Congelar os conteúdos contidos no tubo de Schlenk empregando um banho de gelo seco: banho de etanol (75 g de gelo seco em 100 ml de etanol), para aplicar um vácuo dentro de 10-50 mTorr, em seguida, fechar a válvula de Schlenk e permitir que a solução a descongelar lentamente à temperatura ambiente . Repita este ciclo de congelamento-descongelamento evacuar mais duas vezes. Certifique-se de que todos os reagentes são dissolvidos após o último degelo.
6. Coloque o tubo de Schlenk em um ba plástico lacradog, evacuar o ar do saco, e, em seguida, feche-o. Transferir o saco que contém o tubo de Schlenk a um banho de água pré-aquecido a 70 ° C e incubar durante 24 horas.
7. Transferir cuidadosamente a solução no tubo de Schlenk a um saco de diálise preparada (MWCO = 3,500), e dializar contra _dH2O (10 x 2 L) durante 24 horas, mudando o _dH2O a cada hora durante as primeiras 8 horas. Após a diálise, a transferência da amostra do tubo de diálise para um tubo de ensaio, congelar a amostra a -80 ° C, e, em seguida, liofilizar-lo.

Nota: A estatística resultante poli-metacrilamida / acrilamida (PMA) copolímeros que contêm 4-O pingente -β-D-galactopiranosil-D-gluconamide (lactobionamide) (a partir do Passo 3,2) ou D-gluconamide (do Passo 3.3), respectivamente, são obtida. Por conveniência de discussão, estas duas glicopolímeros são abreviados como PMA-LAEMA e PMA-GAEMA, respectivamente.

4. Pós-modificação de glicopolímeros com fluoróforos

1. Dissolve-se 5,0 mg de glicopoliméricos-LAEMA PMA ou PMA-GAEMA contendo ~ 0,9 mole de grupos funcionais de amina primária em 0,9 ml de solução salina de fosfato tamponada (PBS, fosfato de sódio 0,1 M, NaCl 0,15 M, pH 7,5), respectivamente.
2. Adiciona-se lentamente 0,6 mg de éster de succinimidilo de carboxifluoresceína em 100 ul de DMF para as soluções com agitação rápida. Agitar suavemente as reacções durante 16 horas no escuro à temperatura ambiente.
3. Enquanto protegido da luz, carregar a amostra para um tubo de diálise preparada (MWCO = 3,500) e dializar contra _dH2O (2 L) durante 16 horas, trocando a solução de diálise a cada hora durante as primeiras 8 horas. Após a diálise, a transferência da amostra do tubo de diálise para um tubo de ensaio, congelar a amostra a -80 ° C, e, em seguida, liofilizar-lo.

Nota: Após a liofilização, glicopolímeros fluorescentes PMA-LAEMA-fluoresceína e PMA-GAEMA-fluoresceína, respectivamente, são obtidos.

5. Caracterização do Glicopolímeros

1. Determinar o número médio de peso molecular (Mn), o peso médio de peso molecular (M w) e a dispersibilidade (M w / M n) dos glicopolímeros num sistema de HPLC comercial equipado com software de cromatografia de permeação em gel (GPC), um GPC coluna adequada para o peso molecular de interesse, e um detector de índice de refracção, utilizando Tris a 0,1 M / tampão de cloreto de sódio 0,1 M (pH 7) como eluente a um caudal de 0,6 ml / min ^14. Use padrões de polietileno glicol como padrões de peso molecular (MW: 200-1,200,000 g / mol).
2. Quantificar as concentrações reais de grupos funcionais de aminas primárias dentro dos glicopolímeros ^16. Analisar o teor total de hidratos de carbono das glicopolímeros sintetizados de acordo com um método publicado em ^17.
3. Realizar testes de composição estrutural e pureza do LAEMA glycomonomers, GAEMA e glicopolímeros PMA-LAEMA, PMA-GAEMA em D ₂ O por espectroscopia de RMN de ¹⁴.

6. Os ensaios de ligação da glicopolímeros sintéticas com Lectin revestido contas de agarose

1. Adicionar 1,5 ml de PBS a 50 ul de suspensão de corticeira lectina (ECL) esferas de agarose -Revestido, centrifugar a 300 xg por 1 min, e remova cuidadosamente e elimine o sobrenadante. Repetir este passo duas vezes, e, em seguida, voltar a suspender as pérolas em 0,5 ml de PBS.
2. Adiciona-se 3 ng de PMA-LAEMA-fluoresceína ou PMA-GAEMA-fluoresceína (controlo negativo) em 6 mL de PBS para a suspensão de pérolas, e incuba-se as misturas, no escuro, à temperatura ambiente durante 1 h.
3. Lavam-se as misturas com 1,5 ml de PBS três vezes, e os grânulos ressuspender em 0,2 mL de PBS. Coloque uma alíquota (4 ul) em um poço em um slide de microscópio de imunofluorescência (teflon), cubra com uma tampa de deslizamento, e observar por microscopia de fluorescência usando um filtro FITC (comprimento de onda de excitação: 467-498 nm, comprimento de onda de emissão: 513- 566 nm) e uma objectiva de 10X a examinar a ligação de tele fluorescentes glicopolímeros com as esferas ^14.

Resultados

Síntese de glycomonomer

Ácido lactobiónico foi aqui utilizado como um exemplo para a preparação de glycomonomers. Usando métodos no relatório inicial sobre a síntese de LAEMA ^11, foram observadas produções variadas na preparação com pureza insatisfatórias. O método de purificação modificadas utilizando resinas catiónica e de permuta aniónica para remover o material de partida que não reagiu, o rendimento do produto oferecido estável e de elevada pureza, que é confirmada por ¹ H e ¹³ C espectroscopia de RMN (Figura 1).

JANGADA síntese glicopoliméricos e pós-modificação de glicopolímeros com fluoróforos

Em contraste com o bloco-glicopolímeros preparados através de polimerizações RAFT escalonados, este protocolo de copolimerização de um passo proporciona uma distribuição glycomonomer uniforme ao longo da estrutura do polímero. Os glicopolímeros mostrados aqui conter 20% em mol de glycomonomer, 77 mol% de HEAA como um espaçador, e 3% molar de AEMA como alvo para modificações pós-(ver Figura 2). ¹ H- e ¹³ C-rmn confirmou as estruturas de PMA-LAEMA e PMA-GAEMA (Figuras 3 e 4). Como mostrado na Figura 5, quando representada graficamente contra os perfis de eluição de GPC do glicopoliméricos sintetizado sem RAFT, tanto PMA-LAEMA e PMA-GAEMA têm baixos dispersities, provando a eficácia da abordagem jangada. Como esperado, PMA-GAEMA tem um Mn menor do que a de PMA-LAEMA devido à falta de um açúcar pingente de PMA-GAEMA. Análise de hidratos de carbono e os grupos funcionais de amina primária conteúdo das glicopolímeros RAFT revelou que a proporção de monómeros na glicopolímeros produto é consistente com a relação estequiométrica dos monómeros de arranque utilizados na reacção de polimerização mediada por TRAF (Tabela 1). Isso significa um controlo apertado do compositio monômerons nos glicopolímeros sintetizados, como projetado.

A reacção de grupos funcionais de amina primária com fluoróforos activadas é uma técnica amplamente utilizada na marcação de proteínas. Esta técnica foi empregada aqui para rotular glicopolímeros purificados com carboxifluoresce�a. Na sequência de pós-modificação, polímeros fluorescentes foram obtidos (Figura 6). Nenhuma degradação dos polímeros marcados com fluoresceína da reacção foi detectado por análise de GPC (dados não mostrados).

Encadernação testes dos glicopolímeros sintéticos com pérolas de agarose revestidas com lectina

Para avaliar a especificidade de ligação a lectina das glicopolímeros sintetizados, foi utilizada pérolas de agarose revestidas com lectina-hidrato de carbono conhecida especificidade de ligação crista-galli lectina. Erythrina (ECL), empregadas nas experiências, tem uma especificidade de ligação para com β-D-galactósido. A Figura 7A mostra claramente que PMA-LAEMA-Fluorescein, que contém β-D-galactósido como um hidrato de carbono pendente, exibiram forte ligação com a lectina de ECL. Em contraste, a ligação para a ECL do glicopoliméricos PMA-GAEMA-fluoresceina, que não possuem um açúcar pingente negativo, é mostrado na Figura 7B. Este resultado exemplifica a eficácia de ligação e afinidade do glicopoliméricos fluorescente sintetizada.

Figura 1. Atribuído ¹ H- (a) e ¹³ C-NMR (b) os espectros (D ₂ O) para LAEMA. (Esta figura foi modificado de Wang et al ^14.) Por favor, clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

Figura 2. Ilustração esquemática da síntese de glicopoliméricos fluorescente PMA-LAEMA contendo β-galactoside como o açúcar pingente. Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

Figura 3. afectadas ¹ H- (A) e ¹³ C-RMN (B) os espectros (D ₂ O) para PMA-LAEMA glicopoliméricos. (Esta figura foi modificado a partir de ^{14 de} Wang et al.) Fundamentose, clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

Figura 4. Assigned ¹ H- (A) e ¹³ C-NMR (B) espectros (D ₂ O) para PMA-GAEMA. (Esta figura foi modificado de Wang et al ^14.) Por favor, clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

Figura 5. Gel vestígios de cromatografia de permeação de base-RAFT PMA-GAEMA e PMA-LAEMA preparados com e sem a utilização de agente de TRAF. Em contraste com o PMA-LAEMA preparada sem agente RAFT (azul), RAFT- baseada PMA-LAEMA (verde) tem uma dispersividade muito inferior (M w / M n). Baseado no JANGADA PMA-GAEMA (vermelho) e PMA-LAEMA têm perfis semelhantes GPC, mas o primeiro tem um menor M n, devido à ausência de quaisquer açúcares pingente. Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

Figura 6. PMA-LAEMA antes e depois pós-modificação com fluoróforo. (A) Em comparação com glicopoliméricos não marcado branco (tubo de esquerda), marcado com fluoresceína PMA-LAEMA mostra uma cor amarela forte (tubo direita). (B) De acordo com UV, não marcado PMA-LAEMA (tubo esquerda, 1 mg / ml em PBS) é escuro e apresenta-se com ausência de fluorescência, enquanto que a fluoresceína marcado com PMA-LAEMA (tubo direito, a 1 mg / ml em PBS) mostra forte fluorescência verde.: "Target =" _ blank //www.jove.com/files/ftp_upload/52922/52922fig4large.jpg "> Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

Figura 7. corticeira lectina (ECL) esferas de agarose -Revestido ligar β-D-galactósido contendo glicopolímeros, e não os que não possuem um açúcar pendente. (A) PMA-LAEMA-fluoresceína (3 ug) demonstraram forte ligação com ECL , enquanto que em (B) PMA-GAEMA-fluoresceina, que possui nenhum resíduo pendentes β-D-galactósido, não mostraram nenhuma ligação com as esferas revestidas com lectina. Barra de escala = 100 pm.

Tabela 1. Valores alvo ^um dos parâmetros sintéticos e composições reais dos glicopolímeros. A) Segmentação valores, valores quesão desejadas dos produtos; b) DP, grau de polimerização; c) NA, não disponível. Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

	DP b	Dispersity	Conteúdo real do glycomonomers mol%	Conteúdo real da amina primária mol%
Segmentação valores	100	<1,3	20	3
PMA-LAEMA	99	1.26	19	3.2
PMA-GAEMA	89	1.32	NA c	2.7

Discussão

Um protocolo fácil e eficiente para glicopolímeros fluorescentes baseados em RAFT tri-componente, com e sem um hidrato de carbono pendente, e a sua utilização num teste de ligação a lectina, é demonstrado no presente relatório. O protocolo começa com a preparação de glycomonomers LAEMA e GAEMA. Através de um controlo-RAFT copolimerização de um só passo, com rendimento glicopolímeros reprodutível, composição de monómero previsível e baixa dispersividade, são obtidos. Seguindo pós-modificação de glicopolímeros com éster de succinimidilo de carboxifluoresceína, a ligação do respectivo glicopoliméricos marcado com fluorescência resultante é facilmente verificável para a sua especificidade de ligação a lectina.

Nos passos preparativos iniciais dos glycomonomers que são para ser empregues nas sínteses glicopoliméricos subsequentes, foram utilizados ácido lactobiónico prontamente disponível e a gluconolactona. Em teoria, quaisquer hidratos de carbono de interesse a partir de monossacáridos, oligossacáridos complexos para, pode ser Converted para glycomonomers por conjugação do açúcar alvo para o grupo hidroxilo primário em C6 de glucose. Após a oxidação do resíduo de glucose redutores, e a sua desidratação subsequente a uma lactona, o produto pode então ser facilmente feito reagir com a amina primária em AEMA para formar o correspondente glycomonomer. Outros exemplos desta via pode ser visto em um relatório recente ^14. Deve notar-se que antes de iniciar qualquer passo de polimerização, de MEHQ, um potente inibidor de polimerização, deve ser removido a partir de todas as preparações de monómeros e glycomonomer imediatamente antes da utilização. Isto é facilmente conseguido através da utilização da quantidade mínima de metanol para dissolver o glycomonomer que possui MEHQ seguida tratá-la imediatamente com acetona à temperatura de -20 ° C para precipitar o produto isento de inibidor, com elevado rendimento.

Essencial em qualquer esquema de polimerização radical, atenção aos detalhes e de monômero purezas são enfatizados. Como é típico de um sistema de polimerização RAFT, que consiste deuma fonte de radicais, um reagente RAFT, um monómero e solvente. Nesta apresentação visualizada, um sistema de polimerização TRAF de um só passo é descrito que incide sobre a produção de copolímeros estatísticos gerados a partir de uma mistura de reacção que possua três monómeros diferentes em uma solução aquosa. Duas reacções mediadas por RAFT separadas são apresentados no qual se utiliza um glycomonomer que possui um pendente, não redutor do hidrato de carbono terminal (isto é, β-D-galactose), e o outro, possuindo um poliol, sem resíduo de hidrato de carbono ligado. Comum a ambas as reacções mediadas por RAFT foram monómeros que possuem um grupo hidroxilo singular que serve como uma molécula separadora, e uma outra que possua uma amina livre de pós-modificação com um fluoróforo amino-reactivo.

Uma vez que a presença de oxigénio na mistura de reacção e do ambiente é prejudicial para a polimerização TRAF-mediada, a sua remoção para níveis vestigiais é prontamente conseguida através de vários congelamento-evaciclos cuate-descongelação, mantendo o recipiente de reacção de tubo de Schlenk sob alto vácuo.

Deve notar-se que a razão molar de diferentes monómeros na reacção pode ser ajustada conforme necessário. Além disso, fazendo variar a quantidade de agente RAFT usado, o comprimento dos polímeros resultantes pode ser controlada ^18. No entanto, a proporção molar do agente de TRAF para iniciador deve ser sempre superior a dois para assegurar a baixa dispersibilidade do produto. Sob estas condições, a evolução da copolimerização é constante, e a reprodutibilidade da reacção é muito alta. Dito isto, é pouco provável que se obtém uma distribuição totalmente uniforme de todos os monómeros participantes dentro de um copolímero estatístico, devido às suas velocidades de polimerização diferentes. Caracterizar a distribuição de diferentes monómeros dentro do polímero ainda é muito difícil.

O método de pós-modificação, aqui apresentado, é ao mesmo tempo mais simples e mais amenable para a utilização de uma vasta selecção de marcadores fluorescentes, em comparação com outros protocolos aplicados para glicopolímeros etiqueta ^2,11. Estes incluem muitos dos fluoróforos reactivos com aminas solúveis em água, quantum dots, biotinas, e outros. As especificidades de ligação dos sintetizados, glicopolímeros marcadas são prontamente verificáveis ​​utilizando lectinas com afinidades de ligação conhecidas. PMA-GAEMA possuir nenhum açúcar pingente é um controle negativo apropriado. Glicopolímeros com diferentes etiquetas fluorescentes preparados por esta via tem sido utilizada com sucesso em investigações de lectina bacteriana mediada por ligação ^14. Como apresentado, esta preparação fácil e eficiente de glicopolímeros fluorescentes estatísticos deve fornecer um grande potencial para uma ampla variedade de pesquisa glycobiological.

Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo

Nome	Empresa	Número de catálogo	Comentários
Reagente
Ácido lactobiônico	Sigma-Aldrich	153516
D-Gluconolactona	Sigma-Aldrich	G2164
N-(2-hidroxietil) acrilamida (HEAA)	Sigma-Aldrich	697931
Orange II sal de sódio	Sigma-Aldrich	O8126
Éter monometílico de hidroquinona (MEHQ)	Sigma-Aldrich	54050	Inibidor de polimerização
N-(2-aminoetil) cloridrato de metacrilamida (AEMA)	Polysciences, Inc	24833-5
Trietilamina	Fisher Scientific	BP-616
Resina de troca aniônica IRN-78 forma de hidróxido, 80 mesh	Sigma-Aldrich	10343-U
Resina de troca catiônica 50Wx8, 200 mesh	Sigma-Aldrich	217514
Óxido de alumínio, ~150 mesh	Sigma-Aldrich	A1522	Tipo WN-6, Neutro, Grau de Atividade Super I
Ninidrina	Sigma-Aldrich	N4876	Uma solução de etanol de ninidrina a 0,2% foi usada no teste
Ácido 4-Ciano-4- (fenilcarbonotiotiltio) pentanóico	Sigma-Aldrich	722995	agente RAFT
4,4′-Azobis (ácido 4-cianovalérico)	Sigma-Aldrich	11588	Iniciador de polimerização
Carboxifluoresceína éster succinimidílico	Life Technologies	C1157
Erythrina Cristagalli lectina revestida com grânulo de agarose	Vector Laboratories	AL-1143
Solvente
dH2O			Produzido pelo sistema de purificação de água Barnstead, 18 megOhm-cm
Isopropanol	Fisher Scientific	A461-4	grau ACS ou melhor
Metanol	Fisher Scientific	A454-4	grau ACS ou melhor
Etanol absoluto	Fisher Scientific	BP2818-100	ACS grau ou melhor
Dimetilformamida	Sigma-Aldrich	22705	grau ACS ou melhor
Acetona	Fisher Scientific	A929-4	grau ACS ou melhor
Equipment
Membrana de diálise (MWCO: 3.500)	Spectrum Labs	132720
Padrão analítico de polietilenoglicol padrão	Sigma-Aldrich	Tubo Schlenk O2393
, 1 ml	Quark Glass		Personalizado
TSK-GEL G4000 PWxl	Tosoh Biociência	8022	Usado para análise GPC dos glicopolímeros
Empower 3 com pacote GPC/SEC	Sistema HPLC Waters Corporation
Waters Alliance	Waters Corporation		Equipado com detector de índice de refração (Waters 2414) e detector de fluorescência (Waters 2475)
Avance III 800 MHz NMR Espectrômetro	Bruker Corporation
BX43 microscópio de fluorescência	Olympus Corporation		Usado com filtro FITC no teste de ligação de glicopolímero
Rotavap / Rotoevaporador	Heidolph
Fritted funil de disco	Fisher Scientific	10-310-109
Liofilizador	Labconco
Lâmina de microscópio de imunofluorescência	Polysciences	18357-1
Revco Ultima Plus -80  ° C Freezer	Thermo Scientific
Saco de Vácuo de Plástico e Bomba de Mão	Ziploc
Bomba de Vácuo, Acionamento Direto, Maxima C Plus	Fisher Scientific
	Sargent-Welch