Artigo de método

Photopatterning proteínas e células em Aqueous Ambiente Usando TiO

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DOI:

10.3791/53045

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26 de outubro de 2015

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1Frontier Research Institute for Interdisciplinary Sciences, Tohoku University, 2CREST, Japan Science and Technology Agency, 3School of Fundamental Science and Engineering, Waseda University, 4Research Institute of Electrical Communication, Tohoku University, 5Graduate School of Biomedical Engineering, Tohoku University, 6Faculty of Science and Engineering, Waseda University

Neste artigo

Resumo

Descrevemos um protocolo para modificar a afinidade celular de uma superfície de andaime em ambiente aquoso. O método aproveita a fotocatálise de dióxido de titânio para decompor o filme orgânico na região foto-irradiada. Mostramos que ele pode ser usado para criar microdomínios de proteínas de andaimes, tanto ex situ quanto in situ.

Resumo

Os contaminantes orgânicos adsorvidos sobre a superfície de dióxido de titânio (TiO 2) pode ser decomposto por fotocatálise sob luz ultravioleta (UV). Descrevemos aqui um novo protocolo empregando o TiO 2 fotocatálise para alterar localmente afinidade de células da superfície do substrato. Para esta experiência, uma fina película de TiO2 era de uma lamela de vidro revestido por borrifamento, e a superfície de TiO2 foi posteriormente modificado com um derivado de organo-silano monocamada octadecyltrichlorosilane (OTS), que inibe a adesão celular. A amostra foi imersa em um meio de cultura celular, e focada luz UV foi irradiada para uma região octogonal. Quando uma linha celular de células PC12 neuronais foram plaqueadas sobre a amostra, as células aderiram apenas na área de irradiação com UV. Mostramos ainda que esta modificação da superfície pode também ser realizada in situ, ou seja, mesmo quando as células estão em crescimento sobre o substrato. Modificação adequada da superfície necessária uma matriz extracelular protein colagénio de estar presente no meio no momento da irradiação UV. A técnica aqui apresentada pode, potencialmente, ser empregues em vários tipos de células para a construção de sistemas de padronização ou co-cultura para manipular células arbitrariamente sob cultura.

Introdução

Processos de litografia de semicondutores e seus derivados, tais como 1,2 - fotolitografia, litografia por feixe de electrões 3-6, e microcontact impressão 7-10 - tornaram-se agora uma ferramenta estabelecida na biologia das células para crescer as células vivas numa posição definida e geometria. O método baseia-se na modelação da utilização de substratos microfabricados, que consiste em micro-ilha de revestimento celular permissiva em um fundo não permissiva. Tal substrato serve como um modelo padrão para as células. Essas tecnologias nos forneceu os novos métodos para manipular células e sua função em um nível simples e multi-celular, para extrair as propriedades intrínsecas das células, e para aumentar a taxa de transferência com base em células de triagem de drogas 11.

O grau de liberdade na modelação de células aumentariam grandemente, se a geometria do modelo padrão pode ser alterada in situ, ou seja, enquanto que as células são cultivadas sobre o Sseu rosto. Os métodos convencionais para a formação de padrão não pode ser directamente aplicados aqui, uma vez que eles processam amostras em atmosfera ou em vácuo. Por isso têm sido propostos várias novas técnicas de modificação de superfície, que se baseiam, por exemplo, em compostos fotorreactivos 12,13 ou ablação a laser 5,14, apenas para citar alguns. Os métodos propostos foram bem avaliada pelo Robertus et al. 15, e mais recentemente por Choi et al. 16 e 17 por Nakanishi.

Aqui neste artigo, descreve-se um novo protocolo de modificação in situ superfície, o que tira proveito da decomposição fotocatalítica de moléculas orgânicas num dióxido de titânio (TiO2) de superfície 18,19. Neste método, é inserida uma película de TiO2 entre o substrato de vidro e o filme orgânico que faz interface das células, e o filme orgânico é decomposto in situ por localmente irradiação ultravioleta (UV)luz de uma região de interesse (λ <388 nm). Mostra-se que o novo protocolo pode ser utilizado para criar micropadrões de proteínas da matriz extracelular e células vivas tanto ex situ e in situ. TiO 2 é biocompatível, quimicamente estável e opticamente transparentes, recursos de que o torna amigável para introduzir em experimentos de cultura celular. Este protocolo fornece uma alternativa ciência dos materiais à base de andaimes para a modificação de cultura celular no ambiente de cultura de células.

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Protocolo

1. Preparação de TiO 2 -Revestido vidro Lamela

  1. Número as lamelas usando um riscador de diamante. Isso ajuda não só para manter o controle de cada lamelas, mas também para garantir que o lado correto da amostra está virada para cima. Limpar as lamelas, pela primeira vez sob a executar ddH2O, seguida por imersão em solução de piranha (H 2 SO 4: H 2 O 2 = 4: 1). Após 10 minutos, enxaguar as lamelas completamente, 8 vezes em ddH 2 O. Secam-se as lamelas em fluxo de N2.
  2. Definir TiO2 alvo no sistema de pulverização de rádio-frequência (RF). Anexar as lamelas em um suporte de amostra do dispositivo de pulverização utilizando uma fita de poliimida. Coloque o suporte de amostras na câmara de pulverização. Evacuar a câmara até a pressão atingir 2,0 x 10 -4 Pa.
  3. Introduzir Ar gasoso para dentro da câmara e ajustar a pressão de deposição a 4,0 mTorr. Enquanto mantém o obturador fechado, aumentar gradualmentea energia RF a 70 W.
  4. Abrir o obturador e por pulverização catódica durante 15 minutos para se obter uma película com uma espessura de 120-150 nm (Figura 1: Passo A). A velocidade de crescimento do filme necessita de ser derivada para cada máquina.

2. Revestimento de Superfícies com Cell-repelente Film

  1. Hidrofilizar a superfície de TiO 2, tratando a amostra do plasma com O 2, seguindo as instruções fornecidas pelo fabricante do reactor de plasma. Nós tratar a amostra durante 5 minutos a 200 W com O2 fluxo de 100 sccm. Mergulhe a amostra em DDH 2 O e confirmar que a superfície é superhydrophilic. Secar completamente a superfície sob fluxo de N2.
  2. Preparar a solução 1 mM octadecyltrichlorosilane (OTS) por adição de 39,6 ul de OTS 100 ml de tolueno. Imergir a amostra na solução durante 1 h à TA. Realizar este passo dentro de um saco de luvas -filled 2 N (Figura 1: Etapa B).
  3. Para remover moléculas physisorbed, sonicate a amostra em tolueno, acetona, etanol, e ddH2O durante 5 min cada, por essa ordem. Lavar a amostra quatro vezes em fresco ddH2O e secar a superfície sob um fluxo de N2. A superfície deve ser hidrofóbico com um ângulo de contacto de 100-110 °.

3. Ex-Situ Superfície Patterning

  1. Trabalhando em fluxo laminar capô, desenhe várias marcas de arranhões com um riscador de diamantes na superfície. As marcas de ajudar a manter o controle das regiões processados ​​e também trazendo microscópios em foco. Esteriliza-se o TiO 2 OTS-revestidos por imersão da amostra em etanol a 70% durante 5 min. Em seguida, enxaguar a amostra duas vezes em esterilizado DDH 2 O.
  2. Colocar a amostra em um prato de 35 mm, e adicionar 2 ml de meio de crescimento PC12 (ver Passo 4.2). Incubar durante mais 3 horas num incubador de CO2 (37 ° C). Este procedimento destina-se a deixar albuminas do soro absorvem na superfície. Albuminas adsorvido inibir a adsorção posterior de outros proteins e células (Figura 1: o passo c).
  3. Enquanto espera, configurar o microscópio de fluorescência invertido.
    1. Ligue a lâmpada de arco, insira o cubo filtro UV, e definir a lente objetiva de 20X.
    2. Medir a intensidade da luz I (W cm-2) utilizando um medidor de intensidade de UV, e calcular o tempo de irradiação t (em segundos) para uma dose de d (em J cm-2) como: t = d / I.
      Por exemplo, para irradiar a uma dose de 200 J cm-2 utilizando uma fonte de luz de 600 mW cm de -2, é necessária a irradiação de 333 seg.
    3. Usar um micrómetro de plataforma e fechar o diafragma de campo para definir o tamanho da região a ser irradiada, por exemplo, 200 um.
  4. Após a incubação de 3 horas, completar o meio com 200 mL de 3,0 mg ml -1 de colágeno tipo IV (Col-IV; finais concentração de 300 ug ml -1).
  5. Transferir a 35 mm de prato de platina do microscópio. Encontre o zero marca, focar o microscópio sobre a superfície da amostra, e irradiar luz UV, numa dose de 200 J cm-2 (Figura 1: Passo D). A área de irradiação UV pode ser alterado quer através do ajuste da abertura do diafragma de campo ou por substituição do diafragma de campo com uma máscara metálica de geometria de arbitragem.
  6. Substituir o meio com um meio de crescimento fresco (sem Col-IV), e colocar a amostra de volta na incubadora.

4. Cultura celular

  1. Cultura de rotina de células PC12 é levada a cabo em um prato de plástico revestidas com colagénio.
    1. Para revestimento de 60 mm de cultura de tecidos prato com Col-IV, primeiro molhar a superfície com DDH 2 O e aspirar tudo DDH 2 O.
    2. Preparar 300 ng mL -1 Col-IV por diluição da solução original (3 mg ml-1) 10x com ddH 2 O.
    3. Adicionar 200 ul de 300 ng mL -1 Col-IV por 60 mm de prato. Deixe a solução se espalhar através da superfície.
    4. Seco tele prato em uma câmara de fluxo laminar durante aproximadamente 1 h.
    5. Lavar a superfície duas vezes com 4 ml de solução salina tamponada com fosfato de Dulbecco (D-PBS). Quando não utilizar a placa revestida imediatamente, lavar o prato uma vez com 4 ml de DDH 2 O. Após aspiração DDH 2 O, armazenar o prato na incubadora. Tente não para mantê-lo guardado por mais de duas semanas.
  2. As células PC12 são cultivadas num meio de crescimento, que consiste em: meio (baixo teor de glucose) de Eagle modificado por Dulbecco solução de penicilina-estreptomicina + 1% de soro + 10% de soro fetal de bovino a 5% + cavalo. Incubar as células em uma incubadora de CO 2 (37 ° C, 5% de CO 2), e substituir metade do meio todos os outros dias. Células de passagem antes que eles atinjam confluência.
    1. Aspirar o meio de crescimento, e adicionar 2 ml de PBS + (D-PBS + 10 mg mL -1 de albumina de soro bovino (BSA) + EDTA a 10 mM) pré-aquecido a 37 ° C. Incubar durante 5 min a 37 ° C. Bata levemente o prato para retirar todo cells.
    2. Recolher as células num tubo cónico de 15 ml. Lavar a placa com 3 ml de D-PBS fresco, pré-aquecido a 37 ° C.
    3. Centrifuga-se o tubo a 150 × g durante 4 min.
    4. Aspirar o sobrenadante e adicionar 1 ml de meio de crescimento.
    5. Para cultura de rotina, dividir as células 1: 3 a 1: 5.
  3. Ao prato células na OTS / TiO 2 amostra modificada-UV, contar densidade de células e adicionar 3,0 × 10 5 células em um prato de 35 mm (Figura 1: Passo E). Incubar a placa na incubadora humidificada (37 ° C, 5% CO2) durante 1-2 dias. Tanto o factor de crescimento ingénuos e do nervo (NGF), as células PC12 -differentiated pode ser usado para as experiências de modelação. Para a diferenciação de NGF, 100 ng ml -1 de 7S-NGF é adicionado ao meio o crescimento de vários dias antes do plaqueamento das células na amostra. NGF-diferenciação parece aumentar a adhesibility das células PC12 e torna o manuseamento mais fácil, especialmente no in situ e padronizaçãoxperiments.

5. In Situ superfície de modelação

  1. Após 1-2 dias de cultura na superfície do ex-situ modificado, confirmar que as células estão a crescer e anexar apenas na região do irradiadas com UV. Defina-se o microscópio, conforme descrito no Passo 3.4.
  2. Transferir a amostra para um novo 35-mm de placa de cultura de tecidos contendo o meio de crescimento, 100 ng ml -1 de NGF (no caso da utilização de células diferenciadas por NGF), e 100? G ml -1 Col-IV.
  3. Coloque o prato no palco microscópio. Localizar a posição adequada e irradiar luz UV, numa dose de 200 J cm-2 (Figura 1: Passo F, G). A região permissiva recém-criado é indicado com um asterisco na Figura 1: Passo G.
  4. Tente completar o processamento de uma única amostra no prazo de 30 min. Após a irradiação, transferir a amostra de volta para o meio sem Col-IV.
  5. Tenha muito cuidado ao transportar o prato com cucélulas ltured e transferir a amostra do prato de prato para evitar desanexação das células estampados.

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Figura 1. Ilustração esquemática do processo global. Veja o texto para maiores detalhes. Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

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Resultados

A Figura 2A apresenta uma imagem de microscopia electrónica de varrimento do corte transversal (SEM) do TiO 2 filme depositado por borrifamento. A partir da observação, da espessura do filme foi estimada como sendo de aproximadamente 150 nm. Perceptível aqui é a planura do filme depositado de TiO 2. Uma análise mais aprofundada por microscopia de força atômica (AFM) revelou que a rugosidade root mean square (RMS) da superfície foi de 0,2 nm (Figura 2B).

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Discussão

Em nosso protocolo atual, TiO 2 filme foi formado por RF-pulverização catódica. Somos a favor deste método de deposição, uma vez que nos permite preparar de forma reprodutível um fotocatalítico TiO 2 filme com uma rugosidade sub-nm. Embora os processos de deposição por pulverização catódica são familiares aos cientistas de materiais e engenheiros eletrônicos, não pode ser bastante acessível para os biólogos. Nesse caso, o TiO 2 película revestida por rotação seria uma escolha alternativa...

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Divulgações

Os autores não têm nada a divulgar.

Agradecimentos

Os autores agradecem ao Sr. Kotaro Okubo pela gentil assistência com imagens de MEV. Este trabalho foi apoiado pela Sociedade Japonesa para a Promoção da Ciência Grant-in-Aid for Basic Research (B) (20310069), Grant-in-Aid for Research Activity Start-up (25880021) e por bolsas de pesquisa da Kurata Memorial Hitachi Science and Technology Foundation e da Nippon Sheet Glass Foundation for Materials Science and Engineering.

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Lamínula de vidroWarner InstrumentsCS-15R1515 mm de diâmetro, espessura #1.5
Diamante riscadorOgura Jewel IndustryD-Point Pen
Sistema de pulverização catódica RFANELVASPC350
TiO2 alvo de pulverização catódicaKojundo Chemical LabÓxido de titânio (IV), pureza alvo, 99,9%
Reator de plasmaYamatoPR301
n-octadeciltriclorossilano (OTS)Aldrich104817
TolueneWako204-01866
Prato de cultura de tecidos (35  mm)Greiner627160
Prato de cultura de tecidos (60  mm)BD Falcon353002
Colágeno tipo IVGelatina NittaCellmatrix Tipo IV
D-PBSGibco14190-144
Meio de Eagle modificado por Dulbecco (DMEM)Gibco11885-084
Soro fetal bovinoGibco12483-020Inative o calor e passe por um 0.22  μ m antes de usar
Soro de cavaloGibco26050-088Passe por um 0.22  μ m filtro antes
de usar Penicilina-estreptomicina (100x)Nacalai tesque26253-84
7S fator de crescimento nervoso (NGF)Alomone LabsN-130
Albumina de soro bovino (BSA)SigmaA2153
EDTADojindoN001Solução de estoque em 0,5 M
TiO2 nanopartículaTaycaTKD-701

Referências

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