Ter sistemas in vivo e in vitro apropriados que forneçam modelos translacionais para doenças humanas é um aspecto integral da pesquisa em neurobiologia e neurociências. Os modelos experimentais in vitro tradicionais usados em neurobiologia incluem culturas neuronais primárias de ratos e camundongos, linhagens de células de neuroblastoma, incluindo células B35 de rato e Neuro-2A de camundongo, células PC12 de rato e culturas de fatias de curto prazo. Embora muitos pesquisadores confiem nesses modelos, eles carecem de um componente humano e os efeitos experimentais observados podem ser exclusivos das respectivas espécies e podem não ocorrer de forma idêntica em humanos. Além disso, embora essas células sejam neurônios, elas podem ter cariótipos instáveis, tornando seu uso problemático para estudos de expressão gênica e estudos reprodutíveis de sinalização celular. Portanto, é importante desenvolver modelos mais consistentes de doenças neurológicas humanas.
O procedimento a seguir descreve um método reprodutível e fácil de seguir para obter culturas neuronais humanas homogêneas e viáveis, diferenciando a linha celular de neuroblastoma humano cromossomicamente estável, SH-SY5Y. Este método integra vários métodos descritos anteriormente1-4 e baseia-se na remoção sequencial do soro do meio. A linha do tempo inclui a falta gradual de soro, com introdução de proteínas da matriz extracelular e fatores neurotróficos. Isso permite que os neurônios se diferenciem, enquanto as células epiteliais são selecionadas, resultando em uma cultura neuronal homogênea. Resultados representativos demonstram a diferenciação bem-sucedida de células de neuroblastoma SH-SY5Y de um fenótipo inicial de células epiteliais para um fenótipo neuronal mais expansivo e ramificado. Este protocolo oferece uma maneira confiável de gerar populações homogêneas de culturas neuronais que podem ser usadas para análises bioquímicas e moleculares subsequentes, o que fornece aos pesquisadores um modelo translacional mais preciso de infecções e doenças humanas.