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Artigo de método

A Cancer Cell Spheroid Ensaio para avaliar a invasão em um ambiente 3D

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DOI:

10.3791/53409

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20 de novembro de 2015

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Neste artigo

Resumo

Este método avalia a invasão de células cancerígenas de esferóides em uma matriz 3D circundante. Os esferoides são gerados através do método de cultura de gota suspensa e, em seguida, incorporados em uma matriz composta de materiais de membrana basal e colágeno tipo I. A invasão dos esferóides é posteriormente monitorada.

Resumo

Acredita-se que a natureza invasiva das linhagens de células cancerígenas se correlacione com seu potencial metastático. A maioria dos ensaios tradicionais, no entanto, não examina essas características invasivas em um ambiente tridimensional e os dados resultantes sofrem de aplicabilidade biológica reduzida. Aqui é apresentada uma abordagem para visualizar a capacidade invasiva das linhagens celulares em um ambiente fisiologicamente relevante. O ensaio de invasão de esferóides de células cancerígenas primeiro utiliza a gravidade para gerar esferoides dentro de gotas de meio que ficam penduradas na tampa de uma placa de cultura de células. Em seguida, esses esferoides são incorporados em uma matriz 3D que consiste em uma mistura de materiais de membrana basal e colágeno tipo I. A saída de células cancerígenas dos esferoides para a matriz circundante é então monitorada ao longo do tempo. O método descrito aqui pode ser modificado para examinar a invasão após cocultura de diferentes tipos celulares, inclusão de drogas/inibidores ou alterações nos constituintes da matriz extracelular (MEC).

Introdução

Está provado que a motilidade célula cancerosa é preditiva do potencial metastático, uma vez que tal comportamento facilita a invasão através da membrana basal e da entrada no sistema circulatório 1. Mais investigação sobre a motilidade tem-se centrado na forma como as células se comportam de uma configuração bidimensional (2D), embora se tornando-se amplamente reconhecido que o movimento das células em uma matriz tridimensional (3D) é mais representativo de como estas mesmas células vão realmente 2 comportar in vivo. Sistemas de cultura 3D são cada vez mais usados ​​para estudar comportamentos celulares que vão desde a morfologia celul....

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Protocolo

1. Geração de esferóides

  1. Prepare a suspensão de células individuais para pendurar culturas gota a separar culturas aderentes de células de cancro de ~ 70% de confluência utilizando uma lavagem com PBS, seguido por exposição a uma solução tripsina-EDTA 0,05%.
    1. Neutraliza-se a solução de tripsina com meio de cultura de células e contagem das células, utilizando-se uma alíquota da suspensão de células. Nota: O meio de cultura de células específico dependerá da linha celular a ser testada. Seguir as recomendações da ATCC media, onde o meio de cultura celular é normalmente de DMEM + 10% de FBS. Mais informação pode ser encontrada na Tabela Materiais.

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Resultados

Usando o ensaio de invasão esferóide (figura 1), um painel de linhas celulares de cancro foi testado quanto à sua capacidade para formar esferóides, bem como para a quantidade de egresso de células expostas após o implante numa matriz 3D que consiste em materiais de membrana basal e colagénio tipo I (Tabela 1). Estes resultados demonstram que nem toda linha celular de cancro criará esferóides bem formadas, onde as linhas de células que possuem uma morfologia epitelial in vitro,.......

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Discussão

Este estudo foi avaliado o desempenho de um painel de linhas celulares de cancro em um ensaio de invasão esferóide (Tabela 1). De um modo geral, descobrimos que a formação do esferóide é aumentada em mais as linhas de células epiteliais de aspecto, em que a presença de junções célula-célula promove a formação de uma arquitectura do tipo esferóide. Linhas celulares conhecidas que foram submetidos a uma transição epitelial-mesenquimal, tais como MDA-MB-231 não formar esferóides na cultura de gota suspensa.......

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Divulgações

Os autores declaram que não têm interesses financeiros concorrentes.

Agradecimentos

Financiado pelo NIH CA051008 subvenções P30 CA009686 e T32 (ATR).

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Matrigel Fator de Crescimento ReduzidoCorningCB-40234
Colágeno Tipo I, Cauda de Rato, 100 mgMillipore08-115
DMEMLife Technologies11995-065
RPMI 1640 Médio Life Technologies11875-093
PBSLife Technologies10010-023
0.05% Tripsina-EDTALife Technologies25300-054
Soro Fetal Bovino, Inativado por CalorOmega ScientificFB-12
100 mm Pratos tratados com TCCorning Incorporated430167
24 poçosNEST Biotecnologia702001
Olympus IX-71 Microscópio Invertido
As linhagens celulares foram mantidas em DMEM + 10% FBS, com a expectativa de células BT-474 e LNCaP, que foram mantidas em RPMI + 10% FBS.

Referências

  1. Chambers, A. F., Groom, A. C., MacDonald, I. C. Metastasis: Dissemination and growth of cancer cells in metastatic sites. Nat Rev. Cancer. 2 (8), (2002).
  2. Schmeichel, K. L., Bissell, M. J. Modeling tissue-specific signaling and organ function in three dimensions.

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Reimpressões e permissões

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