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Artigo de método

DNA Eletroporação, Isolamento e imagem das miofibras

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DOI:

10.3791/53551

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23 de dezembro de 2015

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Neste artigo

Resumo

Este protocolo utiliza eletroporação para introduzir e expressar proteínas marcadas com fluorescência em fibras musculares de camundongos. Após a recuperação após a eletroporação, as fibras são isoladas. As fibras individuais são então visualizadas usando microscopia confocal de alta resolução para visualizar a estrutura muscular.

Resumo

O músculo maduro tem uma estrutura única que é passível de imagens de células vivas. Aqui, descrevemos o protocolo experimental para expressar proteínas marcadas com fluorescência no músculo flexor curto dos dedos (FDB). As condições foram otimizadas para fornecer um grande número de miofibras de alta qualidade expressando o plasmídeo eletroporado, minimizando os danos musculares. O método emprega etiquetas fluorescentes em várias proteínas. A combinação desse método de expressão com microscopia confocal de alta resolução permite imagens de células vivas, incluindo imagens após danos induzidos por laser. Os corantes fluorescentes combinados com imagens de proteínas marcadas com fluorescência fornecem informações sobre a estrutura básica do músculo e sua resposta aos estímulos.

Introdução

Myofibers individuais são células sinciciais grandes, altamente organizados. Existem alguns modelos de cultura celular para o músculo; No entanto, estes modelos têm como principal limitação que não diferenciar plenamente em myofibers maduros. Por exemplo, as linhas de células C2C12 e L6 são derivados de ratinhos e ratos, respectivamente 1-4. Sob condições de privação de soro, as células mononucleares "mioblastos-like" cessar proliferação, submetido a retirada do ciclo celular, e entrar no programa miogênica formando células multinucleadas com sarcômeros, referido como myotubes. Com condições de cultura prolongados, myotubes podem exibir propriedades contrá....

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Protocolo

Os métodos neste estudo foram realizados de acordo com a ética Feinberg School of Medicine da Northwestern University Animal Care Institucional e Comitê de Uso (IACUC) aprovou diretrizes. Foram feitos todos os esforços para minimizar o sofrimento.

1. Processo Experimental para in vivo Eletroporação do brevis flexor (FDB) Bundle Muscle no mouse

  1. Plasmídeos de desenho para expressão in vivo utilizando um promotor conhecido para expressar em células de mamífero (por exemplo, citomegalovírus, CMV) ou no músculo (por exemplo, músculo de creatina quinase, MCK) 6,7. Plasmídeos maiores podem expressar em....

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Resultados

A electroporação é uma técnica minimamente invasiva que introduz eficientemente DNA de plasmídeo purificado no brevis flexor (FDB) feixe muscular (Figura 1A). Sete dias após a transfecção proteína marcada fluorescentemente é visualizado em miofibras isolados (Figura 1B). Isolado fibras são então colocadas em placas e preparado para imagiologia de um microscópio confocal. As fibras podem ser submetidas a uma lesão induzida por laser. Corante FM pode ser u.......

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Discussão

O uso de electroporação para estudar as proteínas marcadas por fluorescência in vivo, é idealmente adequado para o estudo do músculo devido à ausência de modelos de linhas celulares adequadas que reproduzem com fidelidade a estrutura da célula de músculo inteira. Este protocolo descreve a utilização de electroporação e microscopia confocal de alta resolução para fornecer imagens detalhadas de localização de proteínas e translocação após o ferimento a laser. Este método pode ser adaptado para estudar processos c.......

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Divulgações

Não há conflitos de interesse.

Agradecimentos

Este trabalho foi apoiado pelo National Institutes of Health concede NS047726, NS072027, e AR052646.

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
DMEMLife Technologies11995-073 Meios dedissecação
Diluição: 50 ml +100 g BSA
Colgenase, Tipo IILife Technologies17101-015Digestão de Fibras
Diluição: 160 mg / 4 ml DMEM (estoque de 40 mg/ml alíquota)
Pratos Falcon de 12 poçosRingers
de Digestão de Fibras 877229 da Fisher ScientificDigestão e imagem de fibras
Diluição: 146 mM NaCl
5 mM    KCl
2 mM    CaCl2
1 mM    MCl2
10 mM HEPES
pH7.4 in H2O
1 ml PipetasAxygenT-1000-C-RLâminas
BarbearPersonna94-120-71Digestion
Precision Glide 30 G agulhaBD Biosciences305128 Dissection
1x PBS (-/-)Life Technologies14190-250Dissection
Sylgard 184Fisher Scientific50-366-794Dissecção
FST by Dumont#5/45
PinçaDissecçãoRobozRS-4913
Tesoura deWorld Precision Instruments500260Dissecção
BSASigmaA7906Meio de dissecção
Diluição: 100 mg/50 ml DMEM
Falcon 60 mm pratosFisher Scientific08772BDissecção - usado para segurar sylgard
de Eletroporaçãode Argila
GramposEletroporaçãoGrass s88x
Radio Shack270-356Eletroporação
TriadineAplicare82-220Agulha de Eletroporação
Precision Glide 27 GBD Biosciences305136Simulador de Eletroporação
GramaSIU-VGaze de Eletroporação
Covidien2146Eletroporação
Injeção de HialuronidaseSigmaH4272
Diluição: Adicione 160 ul PBS (1x) a 40 µ l 5x estoque
1 cc U-100 Seringa de Insulina (28G1/2) BD Biosciences329420Injeção
Eppendorf TubesFisher Scientific02-682-550Injeção
35 mm prato Microwell com fundo de vidroMaTekP35G-1.5-14-CMicroscopia
FM 4-64Life TechnologiesT-13320Microscopia
Diluição: Final 2.5 ug/ml
FM 1-43Life TechnologiesT-35356Microscopia< Diluição br/>: Final 2,5 ug/ml
Plasmídeo Livre de Endotoxinas Maxi KitQiagen12362Purificação de Plasmídeo
Solução de de para Digestão Pinça de de Dissecção Estimulador de

Referências

  1. Blau, H. M., et al. Plasticity of the differentiated state. Science. 230, 758-766 (1985).
  2. Yaffe, D., Saxel, O. Serial passaging and differentiation of myogenic cells isolated from dystrophic mouse muscle. Nature. 270, 725-727 (1977).
  3. Richler, C., Yaf....

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Reimpressões e permissões

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