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NOTA:. Um esquema do protocolo geral descrito aqui é dada na figura 1 Todas as amostras utilizadas para o desenvolvimento deste método são amostras de diagnóstico clínico excedentes e ter aprovação ética do comitê de Londres Bloomsbury Ética.

Figura 1. Esquema ilustrando o processo geral de criação de um CSF MRM direcionados LC-MS / MS ensaio. Peptídeos marcador candidato para avaliação são seleccionados a partir de proteínas alvo. Através da utilização de péptidos sintetizados costume, um método de multiplex de LC-MS / MS de destino é criado. Após a avaliação, o ensaio pode ser utilizado para avaliar a eficácia de potenciais marcadores de neurodegeneração.
1. Peptide Selection and Design
NOTA: Critérios para um péptido marcador é que ele deve ser exclusivo (proteotípicos (quantotypic). Para determinar se um peptídeo é único ou não, a ferramenta 'explosão' busca no site da UniProt (http://www.uniprot.org/blast/) pode ser usado.
- Definir uma lista de proteínas-alvo (marcadores), ou seja, da ApoE (ver Tabela 2).
NOTA: Se o marcador foi identificado a partir de anteriores experiências de perfis proteômicos 8, em seguida, selecione o peptídeo que lhe dá a melhor resposta a partir desse conjunto de dados. - Se esta informação não estiver disponível, usar sites de código aberto, como in silico digestão com tripsina de proteínas-alvo, usando uma ferramenta de software como o MS-Digest.
- Escolha do péptido que é tríptica e não suscetíveis a modificação pós-traducional.
Nota: Esta informação pode ser verificada no site da UniProt www.uniprot.org. Evitar péptidos propensas a modificação química durante a preparação da amostra de LC-MS. - Ordenar a síntese de costume dos peptídeos escolhidos.
NOTA: peptídeos marcador pode ser personalizado sintetizado por várias empresas comerciais. Para o péptido ApoE quantotypic utilizado para medir os níveis totais de ApoE foi determinada como sendo AATVGSLAGQPLQER. As sequências peptídicas proteotípicos utilizados para determinar as variantes E2 e E4 são os péptidos trípticos para a posição 158 (RLAVYQAGAR e CLAVYQAGAR) e a posição 112 (LGADMEDVCGR e LGADMEDVR), respectivamente.
2. Preparação de ptidos
NOTA: Para selecionar as melhores transições quantitativos, a detecção da matriz (CSF) precisa ser otimizado. A maneira mais eficiente de optimizar péptidos multiplexados é criar conjuntos de péptidos em concentrações conhecidas. Estes agrupamentos podem, então, ser utilizado para o desenvolvimento de métodos e curvas padrão.
- Ressuspender péptidos sintéticos (detalhes de péptidos são apresentados na Tabela 2) a 1 mg estoque / mlconcentração de acordo com instruções do fabricante. Por padrão, se as instruções não estão disponíveis, os péptidos ressuspender em 50:50 (v / v) de acetonitrilo (ACN) / H 2 O.
- Preparar as diluições 1:10 do péptido a partir da concentração da piscina e 1,000 pmol de cada péptido para um tubo de microcentrífuga de ligação baixa. Seca-se para baixo num concentrador Speed-Vac o conjunto final e armazenar a -20 ° C. Prepare várias piscinas para uso futuro.
- Alíquota de 100 ml de CSF em tubos de ligação baixas. Liofilizar a CSF.
- Ressuspender uma alíquota de 1,000 pmol de péptidos combinados em tampão de digestão (Tris HCl a 100, pH 7,8, 6 M de ureia, 2 M tioureia, 2% ASB14) para se obter concentrações de 10 e 1 pmol / uL.
- Pico a péptidos reunidos numa das mL alíquotas liofilizados de 100 CSF a 0, 1, 2, 5, 10 e 15 concentrações de pM. Adiciona-se 20 ng de proteína não relacionada intacto, tais como enolase levedura para actuar como um padrão interno e de controlo para a eficiência da digestão de trypsin.
- Encher as alíquotas de LCR com digerir tampão a um valor final de 20 mL. Vórtice.
- Adicionar 1,5 uL de ditiotreitol (30 mg em 1 ml de Tris-HCl 100, pH 7,8) e agitar à temperatura ambiente durante 1 h.
- Adiciona-se 3 ul de iodoacetamida (35 mg em 1 ml de Tris-HCl 100, pH 7,8) e agitar à temperatura ambiente durante 45 min no escuro.
- Adicionar 165 ul de ddH 2 O.
- Adicionar 10 ul de 0,1 ug / ul de solução de tripsina modificada de grau de sequenciação ressuspensas em tampão de 50 mM de bicarbonato de amónio, pH 7,8. Incubar em um banho de água a 37 ° CO / N e parar a digestão por congelação amostras. Loja digere a -20 ° C até estar pronto para análise.
3. Optimização de MS Detecção Péptido
- Copiar e colar a sequência do péptido a ser optimizada, para um software apropriado, por exemplo, Horizonte 9. Clique sobre a sequência do péptido para obter as informaçõesde iões de massa ião precursor e produto esperado.
- Diluir os peptídeos de concentração de ações (ver secção 2.1) ainda mais para 1 ng / ml de concentração para o desenvolvimento do método MS.
- Diretamente infundir os peptídeos no espectrômetro de massa a uma taxa de fluxo otimizado (normalmente 0,1-0,8 ml / min) e com 0-5% de energia de colisão.
- Adquirir espectro de MS, a fim de identificar os íons precursores de cargas múltiplas experimentais 8. Escolha o íon precursor (m / z) que dá mais intensidade (doubly- ou íons precursores triplamente carregados são aconselhados).
- Reinfuse o péptido e aplicar a energia de colisão para fragmentar o péptido por induzida por colisão-dissociação (CID). Otimizar as energias cone e colisão para obter o melhor padrão de fragmentação (iões do fragmento unicamente ou duplamente carregadas e massa de iões de fragmento de preferência maior do que ion pai, são aconselhados).
- Verifique se as transições obtidos experimentalmente corresponder transições geradas in silico </ Em> (tal como descrito no passo 3.1). Salvar a lista de transição no arquivo método MRM usando pelo menos 2 transições mais intensos por íon precursor. Incluem 2 transições: 1 para a quantificação e 1 para a confirmação no ensaio final.
NOTA: Alguns fabricantes de MS têm uma função (ou seja, Waters Intellistart) para MRM automatizado ou otimização análise SRM. Se possível infundir peptídeos com fases móveis combinados a 50 - 70% ACN com 0,1% de FA.
4. LC-MRM Desenvolvimento Método
NOTA: Analisar a mistura de péptidos sintéticos por um sistema de cromatografia líquida (UPLC) acoplado ao triplo espectrómetro de massa de quadrupolo Ultra Performance. Certifique-se a fonte está limpo. Solvente A é DDH 2 0 com 0,1% de FA; Solvente B é ACN com 0,1% de FA.
- Usar o sistema de LC-MS equipado com uma coluna UPLC embalado com C-18 de fase (1,6 um de diâmetro, 90 poros Å, 2,1 mm x 50 mm de comprimento) e ligado a uma pré-coluna da mesma fase.
- Degelo digere CSF no gelo, centrifugar a 16.000 g durante 10 minutos e de transferência de 60 mL em 300 ml frascos de pastilhas de vidro e armazenar o resto de volta a -20 o C.
- Injectar a concentração mais elevada de ponto da curva padrão, utilizando 10 min 1 - gradiente ACN linear de 40% (ver Tabela 1 para definições de gradiente)
- Abra o cromatograma e retenção nota tempo resultante e duas transições (quantitativo) de topo mais intensos por peptídeo com todas as transições criadas na etapa 3.
- Com base nessas informações, atualizar um método MRM 10 min (criado no passo 3.6) com canais cronometrados para medir peptídeos (ver Figura 2 para um exemplo). Para manter a sensibilidade, manter cada canal com pontos por pico superior a 8 e tempo de permanência superior a 0,01 seg para, pelo menos, uma transição para cada péptido.
- Incluir 'atrasos de solventes' no método MRM: uma no início, até 10 segundos antes da primeira eluição de pico eoutra no final do método, 20 segundos depois do último pico de eluição. Faça isso selecionando "atrasos de solventes" em eventos de método no arquivo método MS.
- Executar a curva padrão através do método MRM cronometrado e garantir que não haja interferência picos inespecíficos com transições (gerados no passo 3.6) por verificação de linearidade.
- Determinar se os péptidos são detectáveis através da execução de controle de pool não-cravado e CSF doença através do método.
- Remover os péptidos que se encontram abaixo do limite de detecção do ensaio.

Figura 2. Exemplo de uma dinâmica MRM MS Method. Temporizado canais de transições de peptídeos podem ser agrupados de acordo com os tempos de retenção estabelecidos. Activar MRMs deve ser incorporada uma forma temporizada como os péptidos marcadores seleccionados eluir a partir da coluna de cromatografia, minimiza o número de TRAnsitions ao longo de um período de tempo e aumenta a sensibilidade do ensaio. Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
5. A adição de padrões internos
NOTA: Como descrito anteriormente 10, padrões internos marcados com isótopos estáveis podem ser incluídos no ensaio. Devido à custa destes padrões, é aconselhável primeiro avaliar os peptídeos na matriz.
- Determinar os peptídeos ideais otimizados para detecção no LCR: escolher os péptidos que são as mais recorrentes, com maior intensidade e sem picos de interferência.
- Desenho péptidos correspondente para incluir 13 C 15 N etiquetas de aminoácidos pesados que aumentam a massa do péptido de pelo menos 6 Da relação ao peptídeo endógeno. Além disso, adicionar uma marca de 4 - 6 aminoácidos adicionais, quer ao N ou C-terminal da cadeia pesada pepmaré de controlar para a digestão tríptica.
- Diluir padrões internos marcados com isótopos estáveis em tampão de digestão (veja o passo 2.4). Determinar a quantidade ideal de padrão interno marcada com isótopo estável, que será cravada em CSF por cravação em vários níveis, dependendo dos abundancies anteriormente observados durante o desenvolvimento. Destinam-se a atingir cerca de 1: 1 proporção de padrão marcado com isótopo estável de péptido endógeno.
NOTA: padrões internos marcados com isótopos estáveis podem ser sintetizados por várias empresas comerciais.
6. LC-MRM Ensaio de amostras de doentes CSF
- Pico optimizado quantidade de padrões marcados com isótopos estáveis em 100 uL de CSF e liofilizar a mistura.
- Ressuspender o CSF em 20 ul de tampão digest e realizar a digestão conforme descrito nos pontos 2.7 - 2.10.
- Analisar as amostras utilizando o método LC-MRM desenvolveu na etapa 4.
- Para a análise quantitativa, execute o pep padrãomarés em concentrações de 0 -15 pmol de uma curva padrão. Ver passo 2.5 para a preparação da curva padrão.
Análise 7. Os dados
NOTA: quantitativo de dados baseia-se na relação da intensidade da linha de base de padrões internos de pico (péptidos marcados) pesado. Informações detalhadas sobre a análise de dados / MRM SRM foi previamente descrito 10. dados de relação pode então ser utilizado numa curva padrão para determinar os níveis absolutos ou calcular-los a partir da concentração de péptido adicionado pesada-rotulados.
- Analisar dados LC-MRM utilizando software padrão dos espectrômetros de massa dos fabricantes 10. Como alternativa, use software Skyline para analisar os dados quantitativos MRM 10.
- Verifique a sensibilidade do prazo, verificando a resposta de um padrão interno, tais como a enolase levedura cravado ou um padrão marcado com isótopos estáveis em cada corrida. Assegure-se que o coeficiente de variação (CV) não é maior do que25%.
- rever manualmente a anotação de dados para garantir a precisão. Analisar cada péptido e relação a um padrão interno marcada com isótopo estável adequada, ou seja, utilizar a versão marcada com isótopo estável do péptido, se disponível.
- Para obter os valores absolutos de 100 pmol por uL de CSF, executar o rácio de dados através de curvas padrão apropriadas que foram executados ao mesmo tempo.
- Calcular o coeficiente de variação (CV). CV para cada péptido deve ser inferior a 25% e inferior a 15% para péptidos elevados abundantes.
NOTA: valor pmol Absolute por 100 valores CSF ul pode ser usado na análise estatística jusante subsequente.
8. A apolipoproteína E isoformas Estado
NOTA: Para determinar o estado de isoforma ApoE, a presença dos péptidos correspondentes pode ser realizada pela determinação da presença de cada isoforma.
- Considere o ApoE em 100 ul de limiar CSF de> 1.000 de sinal-to-ruído como positivo para esse péptido. Ver Figura 5 para os péptidos necessários / ausentes para determinar o estado de um paciente isoforma. Determinar a expressão alélica através do cálculo da% de cada uma das isoformas da ApoE ao total de expressão.