É necessária uma assinatura do JoVE para visualizar este conteúdo. Faça login ou inicie seu teste gratuito.

Artigo de método

Imunocoramento Secções biocitina-preenchidos e processados ​​para neuroquímicos Markers

23K visualizações

⸱

DOI:

10.3791/54880

⸱

31 de dezembro de 2016

 ,  ,  , 

Neste artigo

Resumo

Este protocolo apresenta um método para a recuperação morfológica dos neurónios durante patched registos electrofisiolicos utilizando biocitina de enchimento e de pós-processamento subsequente imuno-histoquímica. Mostramos que as seções encheu-biocitina grossas que estavam manchados e lamínulas pode ser restained com um segundo dia de anticorpos primários ou meses mais tarde.

Resumo

registos electrofisiolicos de células utilizando a técnica de fixação de membranas permitiram a identificação de diferentes tipos neuronais com base em padrões de disparo. A inclusão de biocitina / neurobiotin no eletrodo de gravação permite a recuperação post-hoc de detalhes morfológicos, que são necessários para determinar a arborização dendrítica e as regiões abrangidas pelos axônios dos neurônios registrados. No entanto, dada a presença de neurônios morfologicamente semelhantes com identidades distintas neuroquímicos e funções, coloração imuno-histoquímica de proteínas específicas de células-type-é essencial para identificar definitivamente neurônios. Para manter a conectividade de rede, secções do cérebro para gravações fisiológicas são preparadas com uma espessura de 300 nm ou mais. No entanto, esta espessura muitas vezes dificulta pós-processamento imuno devido a problemas com a penetração de anticorpos, sendo necessária a ressecção do tecido. Ressecção de fatias é uma arte difícil, muitas vezes ResulTing na perda de tecido e morfologia das células a partir do qual foi obtido dados electrofisiológico, tornando os dados inutilizável. Uma vez que a recuperação da morfologia iria limitar a perda de dados e guia na selecção de marcadores neuronais, adoptámos uma estratégia de recuperar a morfologia celular em primeiro lugar, seguido de imunocoloração secundário. Nós introduzimos uma abordagem prática para biocitina enchimento durante as gravações fisiológicas e subsequente imunocoloração de série para a recuperação da morfologia, seguido pelo restaining de secções para determinar a identidade neuroquímica. Relatamos que as secções que foram preenchidos com biocitina, fixadas com paraformaldeído (PFA), coradas, e lamínulas pode ser removida e corada novamente com um segundo anticorpo primário dias posteriores. Este restaining envolve a remoção da lamela, a lavagem das secções em uma solução tampão, e a incubação de anticorpos primários e secundários para revelar a identidade neuroquímica. O método é vantajoso para eliminar DATuma perda devido a uma incapacidade de recuperar morfologia e para estreitar os marcadores neuroquímicos a ser testados com base na morfologia.

Introdução

O cérebro é conhecido pela diversidade das características estruturais e funcionais dos seus elementos neuronais individuais. Compreender os papéis de tipos neuronais distintas na função cerebral e patologia exige caracterização e identificação inequívoca dos neurônios. Estruturalmente, as características morfológicas definidos pela localização somato-dendrítica determinar as potenciais entradas que um determinado neurônio recebe, enquanto o padrão de arborização axonal identifica alvos potenciais pós-sinápticos. A diversidade estrutural dos neurônios tem sido apreciado desde os dias de estudos histológicos seminais do Ramón y Cajal 1. O advento das técnic....

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Protocolo

1. biocitina enchimento durante Eletrofisiologia

NOTA: Os leitores podem se referir a fontes alternativas de técnicas básicas de patch-clamp gravação e instrumentação 19-22, que não são elaborados em cima aqui. As etapas detalhadas aqui supor que o equipamento e os procedimentos para as gravações de patch-clamp já estão estabelecidos, e a descrição será restrito aos detalhes relacionados com biocitina-enchimento e imunocoloração post-hoc. Todas as experiências descritas neste manuscrito foram realizadas em ratazanas.

  1. Usando um vibratome, preparar secções de cérebro vivo da região desejada, com uma espessura de 300-35....

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Resultados

Após a conclusão, as secções mantêm o preenchimento biocitina e a imunomarcação realizado no Passo 2 e pode ser fotografada usando confocal ou microscopia de epifluorescência. Além disso, as secções processadas também vai mostrar a imunocoloração para o antigénio marcado durante o processamento subsequente na etapa 3. Na secção ilustrada na Figura 2, a morfologia de um neurónio encheu-biocitina numa secção grossa (300 um) foi revelada utilizando estreptavidina visualizad.......

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Discussão

Passos críticos dentro do Protocolo

Encher a célula remendado com biocitina é o passo mais crucial para garantir a recuperação completa da morfologia. Para a completa recuperação da célula, é essencial para seleccionar uma orientação fatia ideal para minimizar o rompimento de processos durante o corte. Esta orientação pode variar de acordo com o tipo de circuito e celular em exame. Em seguida, é essencial para que haja tempo suficiente para o biocitina para difundir os dendr.......

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Divulgações

Os autores não têm nada para revelar.

Agradecimentos

Os autores gostariam de agradecer o apoio do NIH / NINDS R01 NS069861 e NJCBIR CBIR14IRG024 para VS.

....

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
NaClSigmaS7653Imunocoloração
KClFluka60129Imunocoloração
Na2HPO4 SigmaS7907Imunocoloração
KH2PO4 Sigma229806Imunocoloração
Triton X-100SigmaT8787Imunocoloração
para porquinho da Índia anti CB1 SigmaAf530-1Immunostaining
Mouse anti CCKCURE, UCLAcortesia de G. OhningImmunostaining
Rabbit anti ParvalbuminSwantPV27Immunostaining
Streptavidin, Alexa Fluor conjugadoSondas molecularesS11227Immunostaining
Soro de cabra normal (NGS)SigmaG9023Immunostaining
Vectashield Vector LabsH-1000Imunocoloração
AnticorposSecundários Invitogen Sondasmoleculares Alexa Corantes conjugados com flúorImunocoloração
Labnet orbit agitador de baixa velocidadeBioexpressS-2030-LSPinça de imunocoloração
Dumont11231-30Imunocoloração
Pastas de lâminasEMS71520Imunocoloração
Vibratome VT 1200 SLeica14048142066Electrophysiology
Multiclamp 700B amplificadorDispositivos molecularesMulticlamp 700BElectrophysiology
pCLAMP 10 SoftwareMolecular devicespCLAMP 10 Eletrofisiologia
DigitizerMolecular DevicesDigidata 1440 digitizerElectrophysiology
Filter tipsNalgene171-0020Electrophysiology
SonicatorFisher Scientific15-335-100de Eletrofisiologia
Eppendorf930001007
Electrophysiology BiocytinSigmaB4261Eletrofisiologia
Microloaders

Referências

  1. Garcia-Lopez, P., Garcia-Marin, V., Freire, M. The histological slides and drawings of cajal. Front Neuroanat. 4, 9(2010).
  2. Klausberger, T., Somogyi, P. Neuronal diversity and temporal dynamics: the unity of hippocampal circuit operations. Science. 321 (5885....

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Reimpressões e permissões

Explorar mais artigos

Preenchimento com BiocitinaColoração ImunohistoquímicaRecuperação da MorfologiaRegistro de Patch ClampImunocoloração SeriadaPreparação de Cortes CerebraisPenetração de AnticorposImagem ConfocalMorfologia Celular