Artigo de método

Analisando Efeitos benéficos de suplementos nutricionais sobre as funções intestinais epitelial de barreira Durante Experimental Colite

DOI:

10.3791/55095

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5 de janeiro de 2017

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1Department of Molecular Biomedicine, Center for Research and Advanced Studies of the National Polytechnic Institute, 2Department of Physiology, Biophysics and Neurosciences, Center for Research and Advanced Studies of the National Polytechnic Institute, 3Department of Infectomics and Molecular Pathogenesis, Center for Research and Advanced Studies of the National Polytechnic Institute

Neste artigo

Resumo

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Os tratamentos actuais de doenças inflamatórias do intestino (IBD) destinam-se a atenuar os sintomas da doença, mas pode causar efeitos laterais graves. Assim, estratégias alternativas estão a ser investigados em modelos de colite em animais. Aqui, vamos explicar como os efeitos benéficos da dieta suplementos em sinais clínicos IBD são analisados ​​de tal modelo de colite.

Resumo

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doenças inflamatórias intestinais (DII), incluindo a doença de Crohn e colite ulcerativa, são doenças reincidentes crônicas dos intestinos. Eles causar problemas graves, como cólicas abdominais, diarreia com sangue, perda de peso e, em indivíduos afetados. Infelizmente, não existe nenhuma cura ainda, e tratamentos só têm como objectivo aliviar os sintomas. Os tratamentos actuais incluem drogas anti-inflamatórias e imunossupressoras que podem causar efeitos colaterais graves. Isso garante que a busca de opções alternativas de tratamento, tais como suplementos nutricionais, que não causam efeitos colaterais. Antes de sua aplicação em estudos clínicos, tais compostos devem ser rigorosamente testados para a eficácia e segurança em modelos animais. Um modelo experimental de confiança é o modelo de dextrano sulfato de sio (DSS) A colite em ratos, que reproduz muitas das manifestações clínicas de colite ulcerativa em seres humanos. Recentemente aplicado este modelo para testar os efeitos benéficos de um suplemento nutricional contendovitaminas C e E, L-arginina, e os ácidos gordos poli-insaturados de w3-(PUFA). Foram analisados ​​vários parâmetros de doença e descobriram que este suplemento foi capaz de melhorar a formação de edema, danos nos tecidos, a infiltração de leucócitos, o stress oxidativo, e a produção de citocinas pró-inflamatórias, conduzindo a uma melhoria global do índice de actividade da doença. Neste artigo, vamos explicar em detalhe a correcta aplicação de suplementos nutricionais utilizando o modelo de colite DSS em camundongos C57BL / 6, bem como a forma como parâmetros de doença, tais como histologia, estresse oxidativo e inflamação são avaliados. Analisando os efeitos benéficos de diferentes suplementos dietéticos podem, eventualmente, abrir novos caminhos para o desenvolvimento de estratégias de tratamento alternativo que aliviam sintomas de DII e / ou que prolongam as fases de remissão, sem causar efeitos colaterais graves.

Introdução

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A colite ulcerosa é uma doença inflamatória do cólon que podem causar diarreia e dor abdominal. A colite pode ser aguda, em resposta à infecção ou ao stress, ou pode desenvolver-se como uma doença crónica, tal como em colite ulcerosa (UC), que pertence ao grupo das doenças inflamatórias do intestino (IBD). Embora os sinais clínicos da UC têm sido bem descrito, a patogênese ainda é pouco compreendida 1. Ele é aceito entre os especialistas que a UC é uma doença multifatorial, com mutações genéticas e respostas imunes aberrantes que jogam um papel importante 2. No entanto, fatores ambientais, tais como o estilo de vida e nutrição, também contribuem para o desenvolvimento e progressão da doença 3.

Infelizmente, IBD não é curável, mas existem muitas opções de tratamento que visam aliviar os sintomas clínicos. Os tratamentos actuais incluem medicamentos anti-inflamatórios, tais como sulfassalazina e corticosteróides; imunossupressores, tais como azathioPrine; Os anticorpos monoclonais que captura de citocinas pró-inflamatórias, tais como o factor de necrose tumoral-α (TNF-α), ou moléculas de adesão de bloco, tais como integrinas, para reduzir o recrutamento de leucócitos em excesso; e inibidores de quinases que têm como alvo que desencadeiam vias pró-inflamatórias, tais como Janus quinase (JAK) 4. Nem todos os pacientes respondem a todos os tratamentos, assim que estratégias terapêuticas deve ser individualizada 5. Além disso, a maior parte destes fármacos terapêuticos interferir com o metabolismo e as respostas imunes, causando muitas vezes efeitos colaterais graves. Por esta razão, as opções de tratamento alternativas têm sido investigadas.

Os tratamentos alternativos incluem probióticos e suplementos nutricionais, que tenham sido aplicadas em modelos animais e em ensaios clínicos com variados níveis de sucesso 6,7. Descobrimos recentemente que a aplicação de diferentes suplementos nutricionais individuais, tais como vitaminas anti-oxidantes, e ácidos gordos ω3-poli-insaturados (PUFAS), é inferior à aplicação de uma combinação de tais suplementos para aliviar os sintomas da colite e doença cardiovascular 8,9. Estes estudos foram realizados em ratinhos, assim estudos clínicos devem ser realizados em humanos para determinar se estes resultados também serão aplicáveis ​​aos seres humanos. Antes de estudos clínicos são iniciados, a eficácia ea segurança de novas opções de tratamento deve ser avaliada em modelos animais.

Para o IBD, o modelo de dextrano sulfato de sio (DSS) tem sido amplamente utilizada para estudar os mecanismos do desenvolvimento da doença e os efeitos benéficos dos medicamentos e suplementos nutricionais 6,10. Na maioria dos estudos, somente uma doença aguda ao longo de um período de tempo de sete dias é induzida; No entanto, os sinais clínicos observados nestes animais assemelham-se muito aos observados em pacientes com DII (isto é, diarreia com sangue, perda de peso, disfunção epitelial e infiltração de células imunes) 10. DSS induz erosões na mucosa,resultando em disfunção da barreira e no aumento da permeabilidade epitelial intestinal 11. O mecanismo exato permanece desconhecido. No entanto, um estudo sugere que DSS interage com ácidos gordos de comprimento de cadeia médio para formar nano-lipocomplexes que são capazes de entrar nas células epiteliais e para induzir a sinalização inflamatória vias 12. Neste artigo, descrevemos em detalhes como Colite é induzida e analisada em ratos, como os suplementos nutricionais são aplicadas por sonda para garantir uma dosagem constante em cada animal, e como os efeitos de tais suplementos sobre vários sintomas de colite são examinados.

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Protocolo

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Todos os experimentos com animais foram aprovados pelo Comitê de Cuidado e Uso Institucional animal de CINVESTAV.

1. Preparação de DSS água potável ea indução da colite

  1. Prepare uma solução / 3,5% w v sulfato de dextrano de sódio (DSS) em água potável autoclavado. DSS dissolve-se facilmente e não é necessária para filtrar a solução final.
    NOTA: 7 dias de tratamento com DSS induz colite grave. Se indução de colite ligeira, 3 - são recomendados 4 dias de tratamento. Enquanto a água de beber DSS permanece clara, não é necessário mudar a água. No entanto, se se turva, ele deverá ser substituído.
  2. Registar o peso de base de ratinhos machos. Certifique-se de que eles são de 8 - 12 semanas de idade e dentro de uma gama de 21 - 25 g de peso corporal.
    NOTA: A concentração DSS apropriada deve ser optimizada em cada laboratório. Os resultados podem variar bastante, dependendo das condições de habitação. Concentrações entre 2,5 - 5% são normalmente relatados para induzir forte colitis em camundongos C57BL / 6J WT ratos 10. DSS a partir de diferentes empresas e diferentes lotes deve ser testado, como resultado também pode variar com diferentes fontes de DSS.
  3. Fornecer água ad libitum e substituí-lo com água fresca DSS 3,5%, se necessário.

2. Aplicação de suplementos nutricionais por sonda

  1. Prepara-se uma solução "feedable" dos suplementos nutricionais desejados, num solvente adequado. Para este estudo, utilizou-se uma mistura contendo 200 mg / kg de L-arginina, 83 mg / kg de vitamina C, 46 mg / kg de vitamina E, 77 mg / kg de ácido eicosapentaenóico (EPA), e kg de ácido 115 mg / docosahexaenóico (DHA ) numa solução 1: 1 de água e óleo de cártamo.
  2. Encha uma seringa de 1 ml ligada a uma agulha de gavagem (15 g x 50 mm) com a mistura de suplemento nutricional. Passe o exterior da agulha de gavagem para remover qualquer composto fora da agulha e para assegurar a aplicação da dose adequada.
  3. Contenha o mouse, segurando a base da cauda comum lado, e ao agarrar firmemente uma dobra de pele na parte posterior do pescoço com o polegar e o dedo indicador da outra mão. Coloque a cauda entre o terceiro dedo e a base do polegar da mesma mão que segura o pescoço.
  4. Enquanto se mantém o rato numa posição vertical, inserir a agulha no lado esquerdo da boca do animal e seguir cuidadosamente o céu da boca para localizar o esófago. Se não for encontrada resistência, avançar a agulha para o estômago.
    NOTA: Verifique se o animal está respirando corretamente antes de prosseguir.
  5. Administrar a mistura lentamente, retirar o tubo lentamente puxando para fora da seringa, e solte o mouse. Aplicar suplementos nutricionais uma vez por dia por gavagem durante o curso da experiência colite.

3. Determinação do Índice de Atividade da Doença

NOTA: O índice de atividade da doença é a combinação das pontuações para perda de peso, sangramento perianal e consistência das fezes, que são obtained diária 13.

  1. Medir o peso corporal diariamente e atribuir uma pontuação de 0 a 4 de acordo com a percentagem de perda de peso (0: 0%, 1: 1 - 5%, 2: 5 - 10%, 3: 10 - 20%, e 4:> 20 %).
    NOTA: Peso corporal perda é determinada calculando a diferença em percentagem entre o peso basal antes da indução de colite DSS-e o peso real.
  2. Para determinar o nível de hemorragia perianal, recolher uma amostra de fezes frescas e usar os aplicadores fornecidos para aplicar uma mancha fina em um slide a partir de um kit fecal guaiac exame de sangue oculto. Use um novo aplicador para cada amostra.
    1. Fechar a tampa na parte da frente e abrir a janela na parte de trás da lâmina. Aplicar duas gotas da solução de revelação para a parte de trás na localização da amostra.
    2. Leia os resultados após 30 s. Qualquer traço de cor azul é positivo para sangue oculto. Atribuir uma pontuação de 0 a 4 (0: nenhum, 0,5-2,5: teste positivo guaiac fecal de sangue oculto (dependendo da intensidade do sinal) e 3-4: groSS sangramento).
      NOTA: Se o sangue nas fezes é visível, o teste de sangue oculto fecal com guaiaco não tem de ser realizada, e uma pontuação de 3, 3,5, ou 4 é atribuído, dependendo da quantidade de sangue visível.
  3. Determinar a consistência das fezes, observando uma amostra de fezes frescas. Atribuir uma pontuação de 0 a 4 (0: sólido, 0,5 Normal / - 2,5: fezes pastosas e 3-4: diarreia).

4. Determinar intestinal epitelial Permeabilidade in vivo por Evans Blue Assay

  1. Anestesiar os animais por injecção de lhes por via intraperitoneal com uma mistura de cetamina (100 mg / kg de peso corporal) e xilazina (13 mg / kg de peso corporal) diluído em solução salina (NaCl 0,9%), e avaliar a profundidade da anestesia através da monitorização do beliscão reflexo de retirada.
  2. Colocar os animais anestesiados numa posição supina e executar uma laparotomia para expor os intestinos.
  3. Localizar o ceco e fazer uma pequena incisão no segmento proximal do cólon umascendens (idealmente, imediatamente adjacentes ao ceco).
  4. Inserir uma agulha de alimentação (G22) e fixe-o com uma ligadura usando um fio de seda comum. Cuidadosamente lave abundante PBS através do tubo para lavar todas as fezes do cólon. Incutir solução de azul de Evans (1,5% w / v em PBS) no cólon até que se atinge o ânus.
  5. Incubar a azul de Evans para 15 min. Lavar o corante através de lavagem do tubo com abundante PBS até o washout perianal é clara.
  6. Eutanásia dos animais por deslocação cervical.
  7. Extirpar o cólon e lave-o novamente com abundante PBS. Lavar uma vez com 1 ml de 6 N -acetylcysteine mM em PBS para eliminar qualquer corante que adere ao muco do cólon.
  8. Cortar o cólon longitudinalmente e lavá-lo mais uma vez com PBS e 1 ml de 6 N -acetylcysteine mM.
  9. Grave o peso e comprimento. Para extrair o corante azul de Evans, colocar o cólon em 2 mL de N, N-dimetilformamida durante a noite à temperatura ambiente com suave Agitation. Medir a concentração do corante espectrofotometricamente a 610 nm.

Coleção 5. Tissue

  1. Anestesiar os animais por injecção de lhes por via intraperitoneal com uma mistura de cetamina (100 mg / kg de peso corporal) e xilazina (13 mg / kg de peso corporal) diluído em solução salina (NaCl 0,9%), e avaliar a profundidade da anestesia através da monitorização do beliscão reflexo de retirada.
  2. Eutanásia dos animais por deslocação cervical.
  3. Colocar os animais em decúbito dorsal e executar uma laparotomia para expor a cavidade abdominal.
  4. Com uma tesoura, dissecar todo o cólon e registrar o seu comprimento.
  5. Lavar o cólon cuidadosamente várias vezes com PBS arrefecido para remover as fezes. Registe o peso do tecido e para preparar as seguintes experiências, conforme descrito nas etapas 5.6 - 5.8.
  6. Para o isolamento do RNA e ensaios (MPO), corte uma amostra de tecido de tamanho apropriado (100 mg é geralmente suficiente), coloque-o dentro de um tubo, e snap congelar-lo em azoto líquido. Armazenar os tecidos a -80 ° C para uso futuro.
  7. Para a coloração de imunof luorescência e determinação estresse oxidativo (veja abaixo), cortado uma pequena amostra de cólon (0,5-1 cm) e mergulhe em taças de alumínio pequenos cheios com temperatura de corte óptima composto (OCT). Colocar os copos em gelo seco e deixá-los congelar lentamente, a fim de evitar a formação de bolhas. amostras de tecido congeladas podem ser armazenadas a -80 ° C para uso futuro.
  8. Para Swiss rolos 14, abra o cólon longitudinalmente e retire cuidadosamente fezes usando uma pinça. Enrolá-lo, com a mucosa virada para dentro, usando uma pinça de ponta fina ou, uma vara de madeira redonda fina. Com cuidado, coloque-o dentro de uma cassete de incorporação e continue com a etapa 6.1.
    NOTA: DSS induz danos no cólon. No entanto, a distribuição de danos varia de proximal para distal, do cólon, com a maioria dos danos geralmente visto no cólon distai e do recto. Assim, recomendamos a analisar a histologia, quer no colo distalou em papéis suíços de todo o cólon.

6. Análise de Histologia Colon por coloração de hematoxilina-eosina

  1. Preparação do tecido
    1. Para a análise histológica, quer submergir os rolos suíços ou os pequenos pedaços de tecido de certas regiões do cólon de controlo e murganhos tratados em 5 ml de formaldeído a 10% durante 48 h à temperatura ambiente (TA) para obter uma fixação adequada.
      NOTA: Todos os outros passos no passo 6 são realizadas à temperatura ambiente, a menos que indicado de outra forma.
    2. Lavá-los com água da torneira durante 18 horas.
    3. Desidratar-los com 15 mL de etanol a 70% durante 1 h, 96% durante 1 h, e etanol absoluto, durante 1 h. Repita cada etapa com álcool fresco antes de prosseguir para a próxima concentração.
    4. Continuar a desidratação em uma mistura de 7,5 ml de etanol absoluto e 7,5 mL de xileno absoluto, durante 1 h. Repetir uma vez antes de passar as amostras a 15 ml de xileno absoluto, durante 1 h. Repita este passo uma vez com xileno fresco.
  2. Incorporação amostras de tecido do cólon em parafina
    1. Mergulhar as amostras em 50 ml de parafina líquida durante 17 h. Repita este passo uma vez, mas por apenas 3 h.
    2. Mergulhar as amostras em cubos (plástico, molde quadrado, tamanho: 22 x 22 x 22 mm) em 810 ml de parafina líquida.
    3. Permitir que a parafina com as amostras de tecido do cólon para solidificar durante 24 h à TA.
  3. Corte de tecidos Secções usando um Microtome
    1. Cortar amostras do cólon usando um micrótomo, de acordo com as instruções do fabricante, com uma espessura de 5 um.
    2. Recolher os cortes em um banho de água (1 L) contendo 0,3% de gelatina. Isto evita a dobragem do tecido secções transversais. Recuperar os cortes de tecido e montá-los em lâminas de vidro.
  4. Hematoxilina e eosina de tecido Secções
    1. Desparafinar as amostras durante 18 h a 60 ° C em uma incubadora. Para esta finalidade, utilizar um vidro slide acumular com uma alça.
    2. Após desparafinização, mergulhe as lâminas em 70 mL de xileno absoluta para 5 min. Repita este passo uma vez com xileno fresco.
    3. Transferir as amostras em 70 ml de álcool absoluto para 1 min. Repita este passo uma vez com álcool fresco.
    4. Incubar as amostras de tecido do cólon em 70 ml de etanol a 96% durante 1 min. Repita este passo uma vez com álcool fresco.
    5. Lave as amostras da água de torneira duas vezes por 2 s.
    6. Incubar os tecidos em hematoxilina de Harris durante 7 min.
    7. Lave as amostras da água de torneira duas vezes por 2 s.
    8. Incubar as amostras em álcool ácida (70 mL de etanol a 70% e 700 ul de 1 M de ácido clorídrico) por 7 s.
    9. Lave as amostras da água de torneira duas vezes por 2 s.
    10. Incubar as amostras de tecido em 70 ml de carbonato de lítio (1 g de carbonato de lítio em 100 mL de água destilada) durante 7 s.
    11. Lave as amostras da água de torneira duas vezes por 2 s.
    12. Incubar as amostras em 70 ml de etanol a 80% Durante 1 min.
    13. Transferir as amostras em 70 mL de Eosina-Y durante 15 s.
    14. Incubar-los em 70 ml de etanol a 96% durante 1 min. Repita este passo uma vez com álcool fresco.
    15. Incubar as amostras de tecido em 70 ml de etanol absoluto (álcool etílico anidro absoluto) durante 1 min. Repita este passo uma vez com álcool fresco.
    16. Incubar as amostras em 70 ml de uma mistura de 35 ml de álcool absoluto e 35 ml de xileno absoluto durante 1 min.
    17. Transferir as amostras em 70 ml de xileno absoluto durante 1 min. Repetir esta etapa para 5 min em 70 ml de xileno absoluto fresco.
    18. Adicionar 80 ul de resina sintética para as amostras de tecido do cólon, cobri-los com lamelas, e deixar secar durante 24 h à TA. Finalmente, analisar as amostras usando microscopia de campo brilhante 8.

7. Analisar junção Composição por imunofluorescência

  1. Prepara-se o tecido, tal como descrito no passo 5.7 e cortar secções transversais 8 um de espessurautilizando um criostato.
  2. Fix e permeabilizar cólon secções transversais com 96% de etanol a -20 ° C durante 20 min.
    Nota: Todas as incubações subsequentes deve ser levada a cabo a temperatura ambiente, a menos que indicado de outra forma, dentro de uma caixa escura húmido para evitar a secagem e fluorocromo desvanecimento.
  3. amostras de ar seco, e em seguida lavá-los 3 vezes durante 5 minutos cada um com 1x PBS
  4. Incubar as amostras com a solução de bloqueio (PBS contendo 0,01% de Tween e BSA a 2%) durante 2 h.
  5. Remover a solução de bloqueamento e enxaguar com PBS-0,01% de Tween durante 10 minutos.
  6. Durante este tempo, dilui-se os anticorpos primários para as concentrações desejadas em PBS-0,01% de Tween.
  7. Remover a solução de lavagem, aplicam-se a solução de anticorpo a partir do passo anterior, e incubar durante a noite a 4 ° C numa caixa humidificada.
  8. Remover a solução de anticorpos e lavar 3 vezes com PBS-Tween 0,01% durante 5 min cada e uma vez com água desionizada durante 10 min, com agitação muito suave.
  9. Enquanto a lavagem, fluor centrífugaochromeconjugated, específicas da espécie anticorpos secundários a 14000 xg durante 20 min a 4 ° C.
  10. Dilui-se a anticorpos secundários, sem precipitados, tal como indicado pelo fornecedor em PBS-0,01% de Tween, aplicá-los, e incubar durante 1 h a RT.
  11. Repetir o passo 7.8 e remover a solução de lavagem tão completamente quanto possível.
  12. Pipeta de 4 mL de agente anti-desvanecimento sobre cada amostra no slide.
  13. Cobrir as amostras com uma lamela.
  14. Secar ao ar durante 1 h.
  15. slides Seal com unha polonês. As lâminas podem ser armazenadas a -20 ° C até análise posterior.
  16. Analisar num microscópio confocal de laser 8.

8. Determinação do estresse oxidativo por oxidação de Ethidium

  1. Após 7 dias de DSS colite, preparar o tecido, tal como descrito no passo 5.7 e cortar secções de cólon em um criostato com uma espessura de 5 um. Montagem de secções transversais em lâminas de vidro tratadas com uma solução de lisina de poli-L-e incubar o engenho amostrasH 5? M de dihydroethidium (DHE) em água a 37 ° C durante 30 min no escuro.
  2. Lavam-se as amostras com PBS (pH 7,6) três vezes durante 15 minutos cada, com agitação suave à temperatura ambiente. Ar secar as amostras e adicionar uma gota de meio de montagem para proteger a fluorescência. Observar a fluorescência do etídio oxidado em um microscópio confocal de varredura a laser (40X, 568 nm de comprimento de onda).

9. Análise de leucócitos Recrutamento pela MPO Ensaio

  1. Após 7 dias de DSS colite, recolher o tecido do cólon e homogeneizar as amostras (200-400 mg) com 1 ml de hexadeciltrimetilamónio (HTAB) tampão (0,5% HTAB em tampão fosfato 50 mM, pH 6,0) utilizando um homogeneizador em gelo.
  2. Lavar a ponta do homogeneizador duas vezes com 1 ml de tampão HTAB a incluir todo o tecido no ligado e sonicar que cinco vezes, em 40% de amplitude durante 10 s cada. Congelamento e descongelamento em azoto líquido três vezes.
  3. Centrifugar a 14000 xg durante 15 minutos e recolher o sobrenadante.Prepare 2,2'-azino-bis solução de (3-etilbenzotiazolina-6-sulfónico) (ABTS) por mistura de ABTS, 5 mL de citrato de sódio (1 M em água), 0,1 ml de peróxido de hidrogénio, e 45 ml de bi -água destilada.
  4. Misturar 0,1 ml de cada sobrenadante com 0,1 ml de solução de ABTS em uma placa de 96 poços de fundo plano. Após 10 min, medir a absorvência a 460 nm utilizando um espectrofotómetro.

10. Avaliação da expressão de citocinas pró-inflamatórias por PCR

  1. A homogeneização de tecidos
    1. Homogeneizar 50 a 100 mg de amostras de tecido do cólon em 1 mL de uma mistura de tiocianato de guanidina-fenol-clorofórmio ácido usando um homogeneizador de energia.
    2. Incubar-la à temperatura ambiente durante 15 min.
  2. A separação de fases
    1. Adicionar 0,2 ml de clorofórmio e agitar vigorosamente durante 30 s.
    2. Incubar a 4 ° C durante 30 min.
    3. Centrifuga-se a 12000 xg durante 60 min a 4 ° C.
    4. Transferir o upper fase aquosa para um tubo fresco (~ 500 mL).
  3. RNA Precipitation e ressuspensão
    1. Adicionar 0,5 mL de álcool isopropílico e incubar as amostras a 4 ° C durante 60 min.
    2. Centrifuga-se a 12000 xg durante 30 min a 4 ° C.
    3. Remover o sobrenadante completamente.
    4. Adicionar 1 mL de etanol 75% e vortex.
    5. Centrifuga-se a 12000 xg durante 30 min a 4 ° C.
    6. Remover o sobrenadante.
    7. Permitir que o etanol remanescente secar ao ar durante 3-5 min.
      NOTA: É importante não deixar o sedimento RNA secar completamente, pois isso irá diminuir consideravelmente a sua solubilidade.
    8. Re-dissolver o sedimento em 0,3 ml de dietilpirocarbonato (DEPC) de água tenha sido tratada com. transcrever imediatamente as amostras de RNA em cDNA (mais estáveis, consulte o passo 10.5) ou armazenar a -80 ° C.
  4. RNA Quantificação
    1. Dilui-se 1 uL de ARN com 99 uL de água tratada com DEPC.
    2. Leia the OD a 260 nm e 280 nm usando um UV / VIS para determinar a concentração e pureza da amostra.
  5. Síntese de ADNc
    1. Misturar as amostras de ARN (1-5 ug) com 1 ul de Oligo (dT) 12-18 (0,5 mg / mL) e água tratada com DEPC (volume total de 12 uL) em RNase tubos estéreis.
    2. Incubar a 70 ° C durante 10 min.
    3. Adicionar 2 mL de tampão de PCR 10x, 1 L de 50 mM MgCl 2, 1 mL de 10 mM de dNTP mix, e 2 mL de 0,1 M ditiotreitol (DTT).
    4. Incubar a 4 ° C durante 5 min.
    5. Adicionar 1 ml de transcriptase reversa e incubar a 42 ° C durante 5 min.
    6. Incubar a 70 ° C durante 15 min.
    7. Incubar a 4 ° C durante 15 min. ADNc pode ser armazenado a -20 ° C até à sua utilização.
  6. PCR
    1. Misture 2,5 ul de tampão 10X PCR, 1,5 mL de 25 mM de MgCl 2, 0,5? L de dNTP 10 mM de mistura, de 0,25 μL de polimerase de ADN de Taq, 0,25 L de cada iniciador (10 uM) e o ADNc (100 ng), e água estéril para um volume total de 25 uL.
    2. Executar as amostras num aparelho de ciclos térmicos de 96 poços. Para evitar a amplificação de DNA genômico, frente e verso, primers devem estar localizados em diferentes exons: IL1β-FW: GCAACTGTTCCTGAACTCAACT e IL1β-RE: TCTTTTGGGGTCCGTCAACT; IL6-FW: CCTTCCTACCCCAATTTCCAA e IL6-RE: AGATGAATTGGATGGTCTTGGTC; KC-FW: TGTCAGTGCCTGCAGACCAT e KC-RE: CCTGAGGGCAACACCTTCA; e actina-FW: TATCCACCTTCCAGCAGATGT e actina-RE: AGCTCAGTAACAGTCCGCCTA. Use as seguintes condies de PCR: 95 ° C durante 5 min, seguido de 30 ciclos a 95 ° C durante 15 s, 58 ° C durante 30 s, e 72 ° C durante 30 s, mais uma extensão final de 10 min a 72 ° C .

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Resultados

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Dieta Suplementos pode proteger do DSS Colite

suplementos de dieta anti-inflamatórias e anti-oxidantes, tais como a vitamina C, a vitamina E, o óxido nítrico (NO) -fonte L-arginina, e os ácidos gordos poli-insaturados de w3-(de w3-PUFA), têm sido utilizados com sucesso variável em animais modelos para aliviar os sinais de doenças inflamatórias 3,6,15. A má nutrição, o stress oxidativo, e a produção de citocinas pró-inf...

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Discussão

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A fim de usar suplementos nutricionais em estudos clínicos, os benefícios ea segurança de tais suplementos devem ser cuidadosamente avaliados in vivo em estudos com animais. No caso da colite, vários modelos animais apropriados que se assemelham aos sinais clínicos de DII foram estabelecidas, incluindo modelos químicos utilizando DSS, TNBS, ou ácido acético; modelos (KO), tais como IL10-KO fora knock-; e colite-célula imunitária mediada usando transferência adoptiva de células T 19-21. O modelo de co...

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Divulgações

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Os autores não têm nada para revelar.

Agradecimentos

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Este trabalho foi financiado por doações do Conselho Mexicano para a Ciência e Tecnologia (Conacyt, 207268 e 233395 para Michael Schnoor). KFCO é um beneficiário de uma bolsa Conacyt (396.260) para obter um mestrado.

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
0,3% de gelatina Bioxon158
10% formaldeídoJ.T. Baker2106-03
Placa de 96 poços com fundo planoCorning3368
Etanol absoluto J.T. Baker9000-03
xileno absolutoJ.T. Baker9490-03
ABTSSigma AldrichH5882
Albumina de soro bovinoSigma-Aldrich9048-46-8
ColoScreenHelena Laboratories5072
Corabion (gentilmente fornecido pela Merck, Naucalpan, México)Merck
Sal de Sódio de Sulfato de DextranoAffymetrix9011-18-1(M.W. 40,000-50,000)
DihydroethidiumLife TechnologyD11347
Eosin-Y J.T. BakerL087-03
Evans azulSigma-Aldrich314-13-6
Agulha de alimentaçãoCadence Science Inc.9921
Suporte de slides de vidro com alçaMicroscopia Eletrônica70312-16
Slides de vidroCorning2947
Harris hematoxilina Sigma-AldrichH3136
Hexadeciltrimetiamônio (HTAB)Sigma AldrichH6269
Histosette (de incorporação)SimportM498.2
Ácido clorídrico 1 MJ.T. Baker9535-62
Peróxido de hidrogênioSigma AldrichH3410
CetaminaPiSA AgropecuáriaQ-7833-028
Parafina líquidaParaplast39501-006
Carbonato de lítio Sigma-Aldrich2362
N,N-dimetilformamidaJ.T. Baker68-12-2
N-acetilcisteínaSigma-AldrichA9165
Cubos de plásticoMicroscopia eletrônica70181
Solução de poli-L-lisinaSigma-Aldrich25988-63-0
Prisma 5 estatístico softwareGraphPad SoftwarePrism 5
Solução Salina 0.9% NaClCS PiSAQ-7833-009
Citrato de sódioSigma-AldrichW302600
Resina sintética Poli Mont7987
Taq DNA polimeraseInvitrogen11615-010
Tissue-tek. O.C.T CompoundSakura Finetek4583
Seringa TuberculinaBD Plastipak305945
Tween 20Sigma-Aldrich9005-64-5
VECTASHIELD Meio de Montagem Antifade comDAPI Vector LaboratoriesH-1200
XylazinePiSA AgropecuariaQ-7833-099

Referências

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