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Artigo de método

Medição da absorção de glicose e resposta à estimulação da insulina em

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DOI:

10.3791/55743

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25 de junho de 2017

 ,  ,  ,  ,  ,  , 
1CarMeN Laboratory, INSERM U1060, INRA 1397, University of Lyon, 2Department of digestive and bariatric surgery, Obesity Integrated Center, University Hospital of Edouard Herriot, Hospices Civils de Lyon, Lyon 1 University, 3Division of Endocrinology, Diabetes, Hypertension and Nutrition, Department of Clinical Medicine, Faculty of Medicine, University of Geneva

Neste artigo

Resumo

Neste método, as células musculares primárias humanas são cultivadas in vitro para obter miotubos diferenciados e as taxas de absorção de glicose são medidas. Nós fornecemos um protocolo detalhado para quantificar taxas em estados basais e estimulados por insulina usando [ 3 H] 2-desoxi-D-Glucose radiomarcado.

Resumo

O músculo esquelético é o maior depósito de glicose em mamíferos e contribui em grande parte para a homeostase da glicose. A avaliação da sensibilidade à insulina das células musculares é de grande relevância para todos os estudos dedicados a explorar o metabolismo da glicose muscular e caracterizar alterações metabólicas. Nas células musculares, as proteínas do transportador de glicose 4 (GLUT4) translocam para a membrana plasmática em resposta à insulina, permitindo assim a entrada maciça de glicose na célula. A capacidade das células musculares para responder à insulina, aumentando a taxa de captação de glicose é uma das leituras padrão para quantificar a sensibilidade das células musculares à insulina. Os miotubos primários humanos são um modelo in vitro adequado, uma vez que as células mantêm muitas características do fenótipo do doador, incluindo a sensibilidade à insulina. Este modelo in vitro também é adequado para o teste de quaisquer compostos que possam impactar a capacidade de resposta da insulina. As medições da taxa de absorção de glicose em miotubos diferenciados refletemSensibilidade à insulina.

Neste método, as células musculares primárias humanas são cultivadas in vitro para obter miotubos diferenciados, e as taxas de absorção de glicose com e sem estimulação com insulina são medidas. Nós fornecemos um protocolo detalhado para quantificar as taxas de transporte de glicose passiva e ativa usando [ 3 H] 2-desoxi-D-Glucose radiomarcado ([3H] 2dG). Os métodos de cálculo são fornecidos para quantificar as taxas basais e estimuladas por insulina, bem como a dobra de estimulação.

Introdução

O músculo esquelético é o maior depósito de glicose em mamíferos e contribui em grande parte para a homeostase da glicose. Este tecido responsivo à insulina é o principal local de captação de glicose que é desencadeado pela estimulação de insulina 1 .

Na diabetes tipo 2, a resistência à insulina é observada em vários tecidos, incluindo o músculo esquelético, e conduz à concentração de glicose no sangue acima do normal. Assim, é de grande relevância para determinar o nível de sensibilidade à insulina deste tecido e suas células, quer seja para caracterizar um defeito em um sujeito, quer para avaliar a eficiência de um tratamento com o objetivo de melhorá-lo. Em indivíduos humanos ou animais, a técnica de padrão-ouro para avaliar a sensibilidade à insulina é o grampo hiperinsulinêmico-euglicêmico. Introduzido por DeFronzo em 1979 2 e modificado desde 3 , 4 então, o método permite quantificar todo o corpo aNd tecidos de resposta de insulina medida como a taxa de glicose a ser perfundida sob estimulação de insulina para manter a concentração normal de glicose no sangue.

A exploração da sensibilidade à insulina também pode ser realizada no nível celular usando modelos musculares in vitro e a medição das taxas de absorção de glicose continua sendo uma ferramenta eficiente e confiável para quantificar a resposta biológica da célula à estimulação de insulina 5 , 6 , 7 . De fato, a medida da absorção de glicose quantifica a resposta biológica celular à estimulação de insulina, desde a ligação da insulina ao seu receptor até a translocação de vesículas enriquecidas com GLUT4 e incluindo sinalização intracelular e cascatas de fosforilação 8 .

Isso é de grande interesse com amostras humanas, pois os miotubos diferenciados mantêm muitas características do fenótipo do doador, incluindo propriedades metabólicasIes e distúrbios observados no paciente 9 , 10 , 11 , 12 . Os miotubos apresentam semelhanças estruturais, metabólicas e fenotípicas com o músculo esquelético 13 , 14 , incluindo a expressão de transportadores de glicose 15 e a maquinaria de sinalização de insulina celular 16 . Assim, a medição da absorção de glicose em miotubos primários é relevante para caracterizar o fenótipo muscular de um doador, ou investigar o efeito de uma intervenção (medicamento, nutrição ou atividade física) na sensibilidade à insulina na célula muscular.

A medida da absorção de glicose em miotubos cultivados também é uma ferramenta confiável ao realizar experimentos que modificam a sensibilidade à insulina 17 , 18 . O in vitro modelo é adequado para o teste de quaisquer compostos que possam melhorar a capacidade de resposta da insulina, ou poderia prevenir ou reverter a resistência à insulina adquirida ou induzida 19 , 20 , 21 , 22 , 23 .

Aqui descrevemos um protocolo detalhado para a cultura e diferenciamos os miotubos humanos e medimos as taxas de absorção de glicose celular. O método é aplicável a qualquer fonte de células precursoras de músculo humano, sejam eles provenientes de preparações em laboratório, colaboração ou fornecedores comercialmente disponíveis. As linhas celulares musculares imortalizadas, como C2C12 e L6, respectivamente, de origem de rato e rato, também podem ser usadas para medição de absorção de glicose com este protocolo 7 .

Nós fornecemos um protocolo detalhado para quantificar as taxas em estados basais e estimulados por insulina usando [3H] 2dG radiomarcado. TO uso de um análogo de glicose rotulado permite uma determinação precisa da entrada de glicose com material de partida reduzido, uma condição comum ao trabalhar com células primárias. A molécula de glicose modificada é incapaz de entrar em caminhos metabólicos e, assim, se acumula dentro da célula, permitindo quantificação confiável através da radioatividade celular total. As condições experimentais incluem o uso de um inibidor do transporte de glicose (citocalasina B), e as medidas são realizadas com e sem insulina. Esta combinação permite a determinação das taxas de entrada ativa da glicose, bem como o cálculo da variação da dobra para o índice de resposta à insulina. O método é apresentado com uma dose de insulina durante um único tempo de incubação, mas o protocolo pode ser facilmente modificado para experiências de resposta a dose ou tempo 12 .

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Protocolo

1. Preparação de meios e soluções de cultura de células

  1. Preparação de meios de cultura
    1. Prepare o meio de proliferação (PM), completando o meio F-10 de Ham com glutamina (2 mM), penicilina / estreptomicina (5 μg / mL final), 2% de soro de vitelo fetal (FCS) e 2% de suero.
    2. Prepare o meio de diferenciação (DM), completando o meio de Eagle modificado por Dulbecco (DMEM) com glutamina (2 mM), penicilina / estreptomicina (5 μg / mL final) e FCS a 2%.
  2. Preparação de soluções de absorção de glicose
    Cuidado: o manuseio de material radioativo só é permitido em uma área restrita e controlada por pessoal autorizado. Os materiais e os resíduos devem ser manuseados de acordo com os procedimentos adequados, diretrizes e legislação local.
    1. Para preparar a solução salina tamponada com fosfato de X-Dulbecco (X-DPBS), faça uma solução de DPBS contendo 0,2% (p / v) (concentração final) de soro bovino albUmin (BSA). Filtra a solução através de um filtro de 0,2 μm. Armazenar a 4 ° C.
    2. Para preparar a solução fria de 2-desoxi-D-glicose (2dG), pesa 16,4 mg de 2dG e solubiliza-se em 10 mL de água destilada para se obter uma solução 10 mM. Armazenar a 4 ° C.
    3. Adicione 600 μL de 2dG frio e 6 μL de [3H] 2dG radiomarcado a 5400 μL de X-DPBS para obter a solução 2dG (2dG *) radiomarcada.
      NOTA: A concentração final é 1 mM 2dG e rotulagem é 1 μCi / mL.
      1. Coloque uma alíquota de 20 μL (TC20) de uma solução 2dG * radiomarcada.
  3. Preparação de misturas de incubação
    1. Para a mistura de citocalasina B, adicione 2 μL de citocalasina B 20 mM a 2 mL de solução 2dG * radiomarcada.
      NOTA: A solução de reserva de citocalasina B é de 10 mg / mL em sulfóxido de dimetilo (DMSO).
    2. Para a mistura DMSO, adicione 4 μL de DMSO aos restantes 4 mL de solução 2dG * radiomarcada.

2. Cultura das células musculares primárias humanas

  1. Semeadura de placas de 6 poços com células de células musculares humanas
    NOTA: Use in-house (veja a referência 24 para detalhes) ou células de satélite musculares disponíveis comercialmente a partir de um frasco congelado (contendo 250,000 células). O seguinte procedimento é dado para 250.000 células, de modo a obter uma placa de 6 poços necessária para a medição da absorção de glicose em uma única condição.
    1. Descongelar rapidamente os frascos congelados de 24 ou as preparações comerciais de células satélites de músculo humano em água pré-aquecida (37 ° C) até que apenas um pequeno bloco de gelo permaneça no frasco.
    2. Despeje diretamente em um tubo de plástico de 50 mL contendo 10 mL de pré-aquecido (37 ° C) PM.
    3. Centrifugar durante 5 min a 500 xg e descartar o sobrenadante.
    4. Ressuspenda gentilmente o sedimento celular com 18 mL de PM pré-aquecido (para obter 42.000 células por3 mL de meio). Distribua 3 mL em cada poço de uma placa de 6 poços (9,6 cm 2 ).
      NOTA: Os seis poços individuais de uma placa são necessários para realizar uma medida duplicada da absorção de glicose nas seguintes condições: inibição do transporte passivo (poços 1 e 2), taxa basal (poços 3 e 4) e taxa estimulada pela insulina (poços 5 e 6). Repita tantas placas de seis poços como tratamentos distintos são necessários.
    5. Incubar em condições de cultura padrão (37 ° C, 5% de CO 2 ) até as células atingir 90% de confluência.
      NOTA: Esta etapa leva entre 48 e 72 h, dependendo do lote celular. Não mude o meio durante esta etapa.
  2. Diferenciação de células musculares
    1. Remova o PM (após 48-72 h) e substitua-o por DM pré-aquecido (3 mL por poço). Incubar a 37 ° C, 5% de CO 2 .
      NOTA: A diferenciação leva cinco dias para alcançar um estado estável onde as células estão alinhadas e polinucleadas. Normalmente, o primárioOs miotubos são cultivados em um meio de glicose de 1 g / L. Portanto, para evitar a depleção de glicose durante a cultura, preencha a placa com 3 mL de meio para garantir que o substrato suficiente de glicose esteja disponível para as células em todos os momentos.
    2. Substitua o DM médio a cada dois dias.
      NOTA: A partir deste ponto, os miotubos são estáveis ​​por até 7 dias sem alteração significativa e a medição da absorção de glicose pode ser realizada a qualquer momento.
  3. Tratamento de células musculares (opcional)
    NOTA: Os miotubos primários podem ser tratados por vários dias para induzir modificação (teste de drogas, inibidores / ativadores da via de sinalização, etc. ) antes da estimulação de insulina e medidas de absorção de glicose. As células musculares podem ser submetidas a qualquer tratamento que possa ter um impacto na sensibilidade à insulina, e a medida da absorção de glicose irá quantificar esse impacto. Por exemplo, a incubação de células musculares com o palmitato de ácidos graxos saturados promove a resistência à insulina e as células apresentam redução de iNsulin estimulou a absorção de glicose.
    1. Prepare 12 mL de DM suplementado com 10% de BSA (sem ácidos graxos) e palmitato de 0,5 mL (PALM). Prepare 12 mL de DM suplementado apenas com 10% de BSA (sem ácidos graxos).
    2. Prepare duas placas de 6 poços com miotubos primários humanos e cultive-os conforme descrito nas seções 2.1 e 2.2 (com 5 dias de diferenciação).
    3. No dia 5, lave cada poço com 2 mL de PBS. Em um prato, adicione 2 mL de DM contendo PALM. Para a outra placa, adicione 2 mL de BSA contendo apenas DM.
    4. Incubar durante 48 h a 37 ° C, 5% de CO 2 .

3. Estimulação da insulina

  1. Lavar as células musculares diferenciadas duas vezes com 2 mL de PBS.
  2. Remova PBS cuidadosamente e incuba com 3 mL de MS sem FCS durante 3 h (37 ° C, 5% de CO 2 ) para a depleção de soro.
  3. Substitua a mídia em todos os poços por 3 mL de DM sem FCS. Adicione insulina 100 nM aos poços 5 e 6.
  4. Incubar cultura de miotubos humanos para1 h (37 ° C, 5% de CO 2 ).

4. Captação de glicose

  1. Após 1 h de estimulação com insulina, lave os poços duas vezes com X-DPBS (1 mL por lavagem).
  2. Adicione 1 mL de mistura de citocalasina B aos poços 1 e 2 e 1 mL de mistura de DMSO aos poços 3 a 6. Incube durante 15 minutos (37 ° C, 5% de CO 2 ). No final da incubação, coloque imediatamente a placa no gelo.

5. Lise celular

  1. Lavar as células duas vezes com 1 mL de PBS gelado.
  2. Lyse as células em cada poço com 600 μL de 50 mM de NaOH. Incube no gelo durante 5 min e misture suavemente com rotação orbital lenta.
    NOTA: Se o lisado for muito viscoso, diluir com 1,5 mL de NaOH.
  3. Usando uma pipeta, ressuspenda e coleciona o lisado celular.

6. Determinação da glicose radiomarada

  1. Coloque 400 μL de cada lisado celular num frasco de contagem de cintilação líquida. Prepare um frasco de controle negativo com 400ΜL de NaOH 50 mM e um frasco de controlo positivo com 20 μL de TC20 (a partir do passo 1.2.3.1).
  2. Adicione 4 mL de solução de cintilação líquida a cada frasco para injectáveis. Feche a tampa e misture cada frasco completamente (1-2 s).
  3. Insira cada frasco em um contador de cintilação líquida e mida a radioatividade de acordo com as instruções do fabricante. Contagem de registros por minuto (CPM) para cada frasco de cintilação por 10 min.
    NOTA: CPM = "desintegrações por minuto" x "eficiência de contagem".

7. Taxa de captação de glicose

  1. Use o restante lisado (200 μL, a partir do passo 5.2) para medir a concentração de proteína. Determine a concentração de proteína de cada lisado celular utilizando Bradford 25 ou um método equivalente. Calcule a quantidade total de proteína (Q) em mg para cada poço.
  2. Para obter TC1 (o valor para 1 μL de 2dG radiomarcado *), divida o valor de CPM de TC20 em 20.
  3. Para cada frasco, calcule tA taxa de absorção de glicose é a seguinte:
    figure-protocol-1
    NOTA: R é medido em pmol / mg / min. A média de R para os poços 1 a 2 dá taxa de transporte passivo, R p . A média de R para poços 3-4 dá taxa de transporte total basal, R bt . A média de R para os poços 5-6 dá taxa de transporte total estimulada pela insulina, R it .
    1. Calcule a taxa de transporte ativo basal (R ba ) da seguinte maneira:
      figure-protocol-2
    2. Calcule a taxa de transporte ativa estimulada pela insulina (R ia ) da seguinte maneira:
      figure-protocol-3
      NOTA: Em células responsivas a insulina como miotubos, as taxas de absorção de glicose são geralmente representadas por três valores: R ba , R ia e a estimulação da dobra de insulina como R ia / R ba .

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Resultados

No dia 3, os mioblastos alcançam a confluência ( Figura 1A ). Os mioblastos nesta fase são tipicamente mononucleados. O meio foi alterado e no dia 8, a diferenciação foi completada ( Figura 1B ) (seção de protocolo 2). Após 5 dias de diferenciação, os miotubos são alinhados e tipicamente polinucleados. Os miotubos primários humanos foram submetidos a um tratamento com palmitato ou apenas com BSA antes da medição da taxa de absor...

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Discussão

A absorção de glicose é uma medida biológica fundamental para testar ativadores ou inibidores na cultura celular e como eles afetam o uso de glicose e a capacidade da célula de responder à insulina. O método descrito aqui mostrou-se rápido e confiável e tem sido amplamente utilizado em muitos estudos usando miotubos primários de indivíduos saudáveis ​​e / ou pacientes metabólicamente afetados 6 , 7 , 10 ,

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Divulgações

Os autores não têm nada a divulgar.

Agradecimentos

Os autores reconhecem Anne Charrié no serviço de Radiobiologia (hospital Lyon-Sud) e Fond National Suisse (FNS) pelo apoio financeiro.

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Célula muscular primária humanaPreparação interna a partir de biópsias do músculo esquelético humanoPreparação interna a partir de biópsias do músculo esquelético humanoSe não estiver disponível, use fonte comercial
Célula muscular primária humanaPromocellC-12530Deve ser cultivada com meios associados C23060 e C23061
Placa de 6 poçosPlacas
multipoços Corning 356400 BioCoat Collagen IPresunto F10DutscherL0145-5001 g/L de glicose
Glutamina DutscherX0551-100
penicilina/estreptomicina 100xThermo fisher scientific15140122
Substituto de soro UltroserGPall France15950.017substituto de soro em texto
DMEM baixa glicoseDutscherL0064-5001 g/L de glicose
Soro Fetal de BezerroEurobioCVFSVF00-01
Dulbecco's Phosphate-Buffered SalineDutscherL0625-500Contém Mg2+ (0.5 mM) e Ca2+ (0.9 mM)
Solução de insulina humanaSigma-AldrichI9278
2-desoxi-D-glicose Sigma-AldrichD6134
Albumina bovinaeuromedex04-100-812-E
livre de ácidos graxos BSARoche10,775,835,001
palmitatoSigma-AldrichP0500
Deoxy-D-glicose, 2- [1,2-3H (N)]PerkinElmerNET328A001MCAtividade Específica: 5 - 10 Ci (185-370GBq) / mmol, 1 mCi (37MBq
Citocalasina BSigma-Aldrichc2743
PICO PRIAS VIAL 6 mLPerkinElmer6000192
ultima gold MW CA PerkinElmer6013159líquido de cintilação
bê Templar Assassin contra-ataquePerkinElmer2900TR

Referências

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