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Artigo de método

Em pool shRNA tela para reativação de MeCP2 no cromossomo X inativo

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DOI:

10.3791/56398

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2 de março de 2018

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Neste artigo

Resumo

Nós relatamos um gancho de cabelo pequeno RNA (shRNA) e a próxima geração baseada no sequenciamento protocolo identificando os reguladores da inativação do cromossomo x em uma linha de celular murino com luciferase de vaga-lume e genes de resistência de hptII fundiram para o metil CpG ligação proteína 2 ( MeCP2) Gene no cromossomo X inativo.

Resumo

Avançada genéticas telas usando genes repórter inseridos a heterocromatina têm sido utilizadas extensivamente para investigar mecanismos de controle epigenético em organismos-modelo. Tecnologias, incluindo RNAs gancho de cabelo curto (shRNAs) e em cluster regularmente intercaladas curtas palíndromos repetições (CRISPR) permitiram tais telas em células de mamíferos diploides. Aqui nós descrevemos uma tela de shRNA em grande escala para reguladores de inativação do cromossomo x (XCI), usando uma linha celular murino com luciferase de vaga-lume e genes de resistência hptII bateu no C-terminal da proteína CpG-metilo 2 (MeCP2) gene sobre o cromossomo x inativo (Xi). Reativação da construção na linha celular do repórter conferia vantagem de sobrevivência sob seleção hptII B, permitindo-nos selecionar uma biblioteca grande de shRNA e identificar grampos que reativou o repórter medindo usando seu enriquecimento pós-seleção sequenciamento de nova geração. Os grampos de cabelo enriquecidos então foram validados individualmente, testando sua capacidade de ativar o repórter do luciferase no Xi.

Introdução

Uma das formas mais comuns de deficiência mental hereditária nas fêmeas, síndrome de Rett, é causada por mutações heterozigotas em MeCP2, um gene do cromossomo x que codifica uma proteína essencial para a função neuronal normal1. Uma abordagem potencial para tratar esse transtorno seria a reativação do alelo selvagem-tipo MeCP2 na Xi, como restauração de expressão MeCP2 foi mostrada para reverter déficits neurológicos em um modelo do rato desta doença1, 2 , 4. no entanto, silenciamento epigenético de um dos dois cromossomos e....

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Protocolo

Todas as etapas que envolvem animais foram realizadas usando protocolos aprovados pelo Comitê de uso (IACUC) e Fred Hutchinson Cancer Research Center institucional Animal Care. Não reagentes usados aqui são conhecidos por causar riscos significativos para a saúde humana exceto azacytidine 5 (5-AZA).

1. geração de uma linhagem de células de repórter com MeCP2- LUC-HR transgene na Xi

  1. Preparação de fibroblastos de rato do tendão de uma fêmea X xMeCP2-LUC-HR MeCP2 rato
    1. Eutanásia em um dia 10-12-velha fêmea X xMeCP2-LUC-HRMeCP2 rato.
    2. Usando uma ....

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Resultados

Fibroblastos de tendão do mouse foram colhidos de um descrito anteriormente X xMeCP2-LUC-HRMeCP2 rato feminino, imortalizado por retroviral transdução dos oncogenes E6 e E7 do HPV-16 virus7, clonado utilizando diluição limitante e testado para luciferase atividade e expressão da proteína MeCP2 de tipo selvagem (figura 1A e 1B). Atividade do luciferase foi robusto se o repórter estava em Xa e indetectável se na Xi; a expressão MeCP2 nativa exibiu um padr.......

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Discussão

Em nosso recente estudo6, geramos uma linha de celular murino com luciferase e hptII de genes de resistência fundiram a MeCP2 na Xi e transfectadas com uma biblioteca de > 60.000 shRNAs segmentação > 25.000 genes. Encontramos 30 genes cuja vantagem conferida sobrevivência knock-down sob hptII B seleção, sugerindo seu papel no controle de MeCP2 e silenciamento do cromossomo x. Esses resultados foram validados transducing a linha de celular relatados com grampos individuais e avali.......

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Divulgações

Dr. Leko contribuíram para este artigo como um funcionário do centro de pesquisas de câncer Fred Hutchinson.  As opiniões expressadas são as suas próprias e não necessariamente representam as opiniões dos institutos nacionais de saúde ou o governo dos Estados Unidos

Agradecimentos

Agradecemos a Ross Dickins da Universidade de Melbourne para fornecer graciosamente a biblioteca de shRNA usada na tela. Este trabalho foi financiado pelo Rett síndrome pesquisa Trust (A.B.).

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Linha celular de 293 pésInvitrogenR700-07
5-AzacitidinaSigmaA2385-100MG
Agencourt AMPure XPBeckman-CoulterA63881
Anticorpo anti-MECP2Millipore07-013
ColagenaseSigmaC2674-1G
Corning 96-Well Microplacas de poliestireno branco sólidoFisher Scientific07-200-336
Dulbecco's Modified Eagle MediumGibco11965-092
Parada de Expressão Vetor Retroviral Adaptado a MicroRNA (pMSCV)Open BiosystemsEAV4679
Parada de Expressão pSM2 Biblioteca shRNAmirBiblioteca Open BiosystemsRMM3796
Soro Fetal BovinoFisherbrand03-600-511
HiSeq 2500IlluminaSY– 401– 2501Ou equivalente
Higromicina BCalbiochem400051-1MU
Lipofectamina 2000Invitrogen11668-019
Sistema de Ensaio de Luciferase Bright-GloPromegaE2610Ensaio Homogêneo para Triagem de Colônias
Sistema de Ensaio de LuciferasePromegaE4530Ensaio Não Homogêneo para Teste de Grampos
de Cabelo IndividuaisLuminômetro TopCount NXTPerkin ElmerN/AOu luminômetro similar
Kit de Reagentes MiSeq v2IlluminaMS-102-2001Use o kit compatível com seu equipamento
Opti-MEMGibco31985-070
Penicilina-EstreptomicinaGibco15140-122
pMD2.GAddgene#12259VSV-G vetor
de envelopePolybreneSigmaTR-1003-G
PolietileniminaPolysciences23966-1
psPAX2Addgene#12260Vetor de embalagem
PuromicinaGibcoA11138-02
Tripsina-EDTA (0,05%), vermelho de fenolGibco25300-054

Referências

  1. Amir, R. E., et al. Rett syndrome is caused by mutations in X-linked MECP2, encoding methyl-CpG-binding protein 2. Nat Genet. 23, 185-188 (1999).
  2. Guy, J., Gan, J., Selfridge, J., Cobb, S., Bird, A. Reversal of neurological defects in a mouse model of Rett....

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Reimpressões e permissões

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