Artigo de método

Soro e Plasma cópia número deteção usando PCR em tempo real

DOI:

10.3791/56502

⸱

15 de dezembro de 2017

 ,  ,  ,  ,  , 
1Istituto Scientifico Romagnolo per lo Studio e la Cura dei Tumori (IRST) IRCCS

Neste artigo

Resumo

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Este manuscrito descreve a análise de variação número da cópia realizada em DNA de soro ou plasma utilizando a abordagem PCR em tempo real. Este método é adequado para a previsão da resistência a drogas em pacientes com câncer de próstata resistente a castração, mas poderia ser informativo também para outras doenças.

Resumo

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Soro e plasma cell DNA gratuito (cfDNA) tem sido demonstrado como fonte informativa, não-invasivo de biomarcadores para diagnóstico de câncer, prognóstico, acompanhamento e previsão da resistência do tratamento. A partir da hipótese de que a ganhar o número de cópia de gene do andrógeno receptores (AR) (CN) é um evento frequente no cancro da próstata de castração metastático resistência (Abiraterona), propomo-na analisar este evento em cfDNA como um potencial biomarcador preditivo.

Nós avaliamos AR CN em cfDNA usando 2 diferentes ensaios PCR em tempo real e 2 genes de referência (RNaseP e AGO1). Quantidade de DNA de 60 ng foi usado para cada combinação de ensaio. AR Ganho de CN foi confirmado usando PCR Digital como um método mais preciso. Análise de variação de CN já foi demonstrado ser informativo para a previsão da resistência do tratamento no cenário do Abiraterona, mas pode ser útil também para outros fins em diferentes configurações de paciente. Análise CN na cfDNA tem várias vantagens: é não-invasiva, rápida e fácil de executar, e começa de um pequeno volume de material de soro ou plasma.

Introdução

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Circular célula DNA gratuito (cfDNA) no sangue tem demonstrado para ser uma óptima fonte de biomarcadores para diagnóstico de câncer, prognóstico, acompanhamento e previsão de tratamento resistência1,2. Muitos estudos têm mostrado uma boa concordância entre alterações de DNA (mutações, variações de número de cópia, modificações epigenéticas em tecidos) e aqueles encontrados no correspondente plasma amostras1, confirmando que circulam o DNA do tumor (ctDNA) é informativo para o tumor primário e metastático tecido alterações3. A possibilidade de estudar ctDNA permite, assim, para a reconstrução de rearranjos do genoma e variações de número de cópia (CNVs) em oncogenes específicos4, identificando potencialmente metastáticas células clonais e subclonal. CtDNA tem demonstrado ser clinicamente útil especialmente para câncer tratamento monitoramento à medida que abriga mutações específicas e CNVs, relacionadas com terapias alvo específico5,6. Também supera a necessidade de biópsias do tecido e permite resultados a serem obtidos em diferentes momentos durante um tratamento de câncer específicos, de forma não-invasiva.

No que se refere a câncer de próstata, uma correlação significativa entre a circulação livre de células andrógeno CNVs do receptor (AR) e tratamento demonstrou-se a resposta a abiraterone e enzalutamide, indicando AR gene cópia número (CN) em cfDNA pode ser uma biomarcador promissor capaz de prever tratamento resistência7,8,9,10,11. CNVs de genes específicos no ctDNA podem ser avaliados usando diferentes abordagens com diferente sensibilidade, custo e rapidez (EG. PCR em tempo real, Digital e a próxima geração de sequenciamento).

Aqui nós descrevemos uma abordagem simples e rápida, com base em ensaios de frente e verso em tecnologia PCR em tempo real, para avaliar o AR CN em cfDNA de soro e plasma amostras7,8. Consideramos dois diferentes ensaios PCR concebidos em duas diferentes regiões genômicas dentro intron 5 do AR (Xq12) e dois outros genes, como genes de referência padrão interno, conhecidos por ter um status de número de cópia normal em câncer de próstata (RNaseP, localizado no 14q11; AGO1, localizado no 1 p. 34). Nós selecionamos os genes de duas referência, ao invés, para aumentar a precisão e a sensibilidade dos resultados. Uma quantidade de DNA de 60 ng foi amplificado para cada combinação de ensaio (ensaio combinado para AR-assay_1 + RNaseP e de AR-assay_2 + AGO1). Três amostras de DNA de soro ou plasma de homens saudáveis foram agrupadas e usadas como um calibrador. Consideramos a cortes de > 1.5 para ganho de AR e < 0.5 para exclusão. Uma das principais vantagens deste método é que é flexível e que outros genes podem também ser avaliados, alterando os genes de padrão interno de referência, com base no tipo de tumor e características.

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Protocolo

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O protocolo consiste o isolamento do DNA de amostras de soro ou plasma para realizar o PCR em tempo real para análise de número de cópia. Extração de DNA, controle de quantidade de DNA (espectrofotômetro) e PCR em tempo real para alvos específicos foram realizados. Na Figura 1, um resumo dos procedimentos e linha do tempo são relatados.

O protocolo segue as diretrizes do Comitê de ética de pesquisa humana IRST.

1. processamento e coleta de soro

  1. Colete aproximadamente 5 mL sangue total em um tubo de soro sem anticoagulante para obter o soro. Manter os tubos de sangue a 4 ° C até o processamento.
  2. Tubos de centrífuga a 1.000 x g, durante 15 min a 4 ° C.
  3. Transferi com cuidado o soro para tubos de 2 mL.
  4. Descartar o tubo de coletando e congelar imediatamente o sobrenadante a-80 ° C até o uso.

2. processamento e coleta de plasma

  1. Colete aproximadamente 10 mL sangue total em um tubo de plasma com EDTA para obter plasma. Encha o tubo completamente e em seguida invertê-lo 8 vezes. Manter os tubos de sangue a 4 ° C até o processamento.
  2. Centrifugar o tubo a 1.800 x g durante 15 minutos à temperatura ambiente com nenhuma configuração de freio na centrífuga.
  3. Transferi com cuidado a parte superior do plasma para tubos de 2 mL. Repeti a transferência, deixando pelo menos 1 mL do sobrenadante acima da camada de células brancas.
    Nota: Transferir a parte superior do líquido sobrenadante reduz o risco de contaminação por células ou fragmentos de célula.
  4. Descartar o tubo de coletando e congelar imediatamente o sobrenadante a-80 ° C até o uso.

3. DNA isolado do soro ou Plasma

Nota: Isolamento do DNA de soro ou plasma deve ser realizado utilizando o protocolo comercial modificado nas etapas a seguir.

  1. Descongele uma alíquota (que contém de 0,5 a 2 mL) de soro ou plasma à temperatura ambiente.
  2. Vórtice e misturar a amostra e transferir 0,5 mL de soro ou plasma em um tubo de clara 1,5 mL. Congele o restante do material a-80 ° C.
  3. Adicione 50 µ l de proteinase k (20 mg/mL) diretamente para a amostra.
  4. Adicionar 0,5 mL de tampão de Lise para a amostra e misture bem por pipetagem.
  5. Fechar os tubos e incube as amostras a 56 ° C por 15 min no bloco de calor.
  6. Adicione a quantidade indicada de etanol 100% em tampão de lavagem 1 e 2, conforme indicado pelas instruções do fabricante.
  7. Trazer as amostras volta à temperatura ambiente e adicionar 0,5 mL de etanol absoluto e misture bem por pipetagem.
  8. Adicione 650 µ l da mistura obtida na etapa 3.7 para a coluna de separação e centrifugador a 6.000 x g por 1 min.
  9. Descartar o tubo contendo o fluxo através de e colocar a coluna em um tubo limpo coleção nova. Repita as etapas de 3.8 e 3.9 mais uma vez.
  10. Adicione 500 µ l de tampão de lavagem 1, sem molhar a borda da coluna e centrifugar 6.000 x g por 1 min.
  11. Descartar o tubo contendo o fluxo através de e substituí-lo com um novo tubo de coleta limpa.
  12. Adicione 500 µ l de tampão de lavagem 2, sem molhar a borda da coluna e centrifugar a velocidade máxima (20.000 x g) por 3 min.
  13. Descartar o tubo contendo o fluxo através de e substituí-lo com um novo tubo de coleta limpa.
  14. Centrifugar a velocidade máxima (20.000 x g) por 3 min remover qualquer tampão de lavagem residual.
  15. Coloca a coluna em um tubo limpo 1,5 mL. Adicionar 150 µ l de tampão de eluição e esperar 7 min para garantir que reserva molha a coluna.
  16. Centrifugar a 8.000 x g por 1 min.
  17. Pipete o elute da etapa 3.16 novamente na mesma coluna e centrífuga em alta velocidade (20.000 x g) para 1 min garantir máxima recuperação de ADN.

4. diluição e quantificação de DNA

  1. Realize a quantificação de DNA utilizando um espectrofotômetro. Use 2 µ l de amostra em um Espectrofotômetro de bancada pelas instruções do fabricante.
    Nota: Se a quantidade de DNA não é suficiente para prosseguir com a PCR em tempo real (pelo menos 120 ng), realizar um novo processo de isolamento do DNA.
  2. Dilua o DNA de soro ou plasma até 2,5 ng / µ l em um volume final suficiente para PCR tudo em tempo real (cerca de 50 µ l).

5. real-time PCR

  1. Degelo cópia números ensaios, ensaio de gene de referência, amostras de DNA diluído e calibradores concentrar-se em gelo. Equilibrar na temperatura de quarto a mistura de mestre que é armazenada em 4 ° C.
  2. Prepare uma mistura de 1 µ l de ensaio de alvo, 1 µ l de ensaio de referência gene e 10 µ l de mistura de mestre para 3 repetições de cada amostra e calibradores em pool. Prepare a mistura, incluindo um controlo negativo (água) e 2 amostras extras.
  3. Em um prato bem 96, alíquota µ l 12 da mistura em cada poço. Fazer tubos não pipeta ou spin.
  4. Adicione 8 µ l (concentração de 2,5 ng / µ l) de cada amostra de DNA e calibradores em pool para cada poço. Fazer tubos não pipeta ou spin. Mude a ponta para cada poço.
    Nota: 30 amostras de DNA podem ser processadas para cada experimento em tempo real usando a placa de 96 poços: amostras de 30 x 3 + 1 x 3 calibradores em pool + negativo controle = 94.
  5. Brevemente spin para baixo a placa a 1.000 x g.
  6. Verifique a placa usando o seguinte protocolo: Segure o palco a 95 ° C por 10 min, 40 ciclos a 95 ° C por 15 s e 60 ° C por 1 min.

6. interpretação e análise de dados

  1. Na seção "opção", abaixo os resultados de trama de amplificação, defina o limite de Ct em 0,2 para o primeiro gene alvo analisado. Repeti o conjunto para cada genes alvo ou referência. Para exportar o arquivo PCR em tempo real na extensão. txt, pressione "Exportar" na barra de ferramentas. Bandeira apenas "resultados" em selecionar dados para exportar → escolhem como tipo de arquivo "a extensão. txt → prima Iniciar exportação" → fechar a ferramenta de exportação.
  2. Abra o software de análise e importar o arquivo. txt (importação → barra de ferramentas).
  3. Selecione o nome do arquivo para analisar e selecionar a configuração de análise pela barra de ferramentas (símbolo do jogo).
  4. Especifica a amostra de Calibrador e o número conhecido de cópias do alvo (por exemplo, 1 cópia do gene AR ). Pressione "aplicar".
  5. Para cada amostra, omita um poço com diferente delta Ct (ΔCt) em comparação com outros poços.
  6. Reanalisar o experimento (peça símbolo).
  7. Avalie os resultados pelo número cópia bar plot ou a tabela.
    Nota: A tabela de resultados contém numerosos parâmetros como confiança, Pontuação Z e repetições analisadas que poderiam ser útil para a interpretação de resultados.

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Resultados

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CfDNA total concentração era quantificável por espectrofotometria para todas as amostras analisadas, apresentando uma mediana de 6,12 ng / µ l (intervalo: 2,00-23.71 ng / µ l) para amostras de soro e uma mediana de 3,21 ng / µ l (intervalo: 2.31-8.49 ng / µ l) para as amostras de plasma. Foram analisados um total de 115 amostras por experimentos PCR em tempo real.

Teste de sensibilidade foi avaliada utilizando DNA misto de soro ...

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Discussão

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AR Análise CN em amostra de soro e plasma representa uma abordagem nova, não-invasivo para a estratificação de pacientes com câncer de próstata resistente a castração (CRPC). Foi recentemente demonstrado que a CN AR é capaz de prever os resultados no CRPC pacientes tratados com abiraterone e enzalutamide, antes e depois da quimioterapia7,8,9,10.

A p...

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Divulgações

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Os autores declaram não concorrentes interesses financeiros.

Agradecimentos

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Agradecemos a Chiara Molinari e Filippo Martignano para apoio na análise de dados.

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Tubos de soro BD VacutainerBecton Dickinson367814tubo de sangue total para soro
BD Vacutainer EDTA TubesBecton Dickinson366643tubo de sangue total para plasma
Etanol absolutoVWRo usuário pode usar também outras empresas
TaqMan Copy Number ensaioThermo Fisher Scientific4400291Ensaios pré-projetados e validados com corante FAM. Usamos o seguinte ensaio: AR_assay1: hs04107225 e AR_assay2: hs04511283
Ensaio de número de cópia TaqMan (modificado)Thermo Fisher Scientific4467084Ensaio pré-projetado modificado com corante VIC: AGO1: Hs02320401_cn
Ensaio de referência do número de cópia TaqMan, humano, RNase PThermo Fisher Scientific4403326
TaqMan Universal PCR Master MixThermo Fisher Scientific4326708Master mix para PCR em tempo real
QIAamp DNA Mini Kit (50)Qiagen51304Kit de extração de DNA
MicroAmp 96-Well Placas ThermoFisher ScientificN8010560placas para PCR em tempo real
NanoDrop 1000 EspectrofotômetroThermo FisherScientific-ousuário pode usar também outros métodos espectrofotométricos para quantificar o
DNA 7500 Sistema de PCR em tempo real rápidoAppliedBiosystem-ousuário pode usar também outro instrumento em tempo real
CopyCaller SoftwareApplied Biosystem-Softwarepara análise do número de cópias

Referências

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  1. Salvi, S., et al. Cell-free DNA as a diagnostic marker for cancer: current insights. Onco Targets Ther. 9, 6549-6559 (2016).
  2. Heitzer, E., Ulz, P., Geigl, J. B. Circulating tumor DNA as a liquid biopsy for cancer. Clin. Chem. 61 (1), 112-123 (2015).
  3. Murtaza, M., et al. Non-invasive analysis of acquired resistance to cancer therapy by sequencing of plasma DNA. Nature. 497 (7447), 108-112 (2013).
  4. Heitzer, E., Ulz, P., Geigl, J. B., Speicher, M. R. Non-invasive detection of genome-wide somatic copy number alterations by liquid biopsies. Mol. Oncol. 10 (3), 494-502 (2016).
  5. Diaz, L. A. Jr, et al. The molecular evolution of acquired resistance to targeted EGFR blockade in colorectal cancers. Nature. 486 (7404), 537-540 (2012).
  6. Dawson, S. J., et al. Analysis of circulating tumor DNA to monitor metastatic breast cancer. N. Engl. J. Med. 368 (13), 1199-1209 (2013).
  7. Salvi, S., et al. Circulating cell-free AR and CYP17A1 copy number variations may associate with outcome of metastatic castration-resistant prostate cancer patients treated with abiraterone. Br. J. Cancer. 112 (10), 1717-1724 (2015).
  8. Salvi, S., et al. Circulating AR copy number and outcome to enzalutamide in docetaxel-treated metastatic castration-resistant prostate cancer. Oncotarget. 7 (25), 37839-37845 (2016).
  9. Romanel, A., et al. Plasma AR and abiraterone-resistant prostate cancer. Sci. Transl. Med. 7 (312), (2015).
  10. Conteduca, V., et al. Androgen receptor gene status in plasma DNA associates with worse outcome on enzalutamide or abiraterone for castration-resistant prostate cancer: a multi-institution correlative biomarker study. Ann Oncol. , (2017).
  11. Attard, G., Antonarakis, E. S. Prostate cancer: AR aberrations and resistance to abiraterone or enzalutamide. Nat. Rev. Urol. 13 (12), 697-698 (2016).
  12. Lee, T. H., Montalvo, L., Chrebtow, V., Busch, M. P. Quantitation of genomic DNA in plasma and serum samples: higher concentrations of genomic DNA found in serum than in plasma. Transfusion. 41 (2), 276-282 (2001).
  13. Chan, K. C., Yeung, S. W., Lui, W. B., Rainer, T. H., Lo, Y. M. Effects of preanalytical factors on the molecular size of cell-free DNA in blood. Clin. Chem. 51 (4), 781-784 (2005).

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