Artigo de método

DNA-magnético partícula análise por dispersão de luz dinâmica e eletroforético de vinculação

DOI:

10.3791/56815

9 de novembro de 2017

Neste artigo

Resumo

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Este protocolo descreve a síntese de partículas magnéticas e avaliação de suas propriedades de ligação a DNA através de espalhamento de luz dinâmica e eletroforético. Este método concentra-se em acompanhamento de alterações no tamanho da partícula, sua polidispersividade e potencial zeta de superfície de partícula que desempenham grande papel na ligação de materiais tais como o DNA.

Resumo

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Isolamento de DNA utilizando partículas magnéticas é um campo de grande importância na pesquisa de biotecnologia e biologia molecular. Este protocolo descreve a avaliação de partículas magnéticas-DNA ligação via difusão dinâmica da luz (DLS) e espalhamento de luz eletroforético (ELS). Análise por DLS fornece informações valiosas sobre as propriedades físico-químicas das partículas, incluindo o tamanho de partícula, polidispersividade e potencial zeta. O último descreve a carga superficial da partícula que desempenha papel importante na ligação eletrostática de materiais tais como o DNA. Aqui, uma análise comparativa explora três modificações químicas de nanopartículas e micropartículas e seus efeitos sobre a ligação do DNA e eluição. Modificações químicas por ramificada o polyethylenimine, tetraetila orthosilicate e (3-aminopropil) triethoxysilane são investigados. Desde que o DNA apresenta uma carga negativa, espera-se que potencial zeta de superfície de partícula irá diminuir a ligação do DNA. Formação de clusters deve também afetam o tamanho de partícula. Para investigar a eficiência dessas partículas isoladamente e eluição do DNA, as partículas são misturadas com DNA em pH baixo (~ 6), alta força iônica e ambiente de desidratação. As partículas são lavadas no ímã e então DNA é eluída por tampão Tris-HCl (pH = 8). Número de cópia do DNA é estimado usando quantitativa cadeia da polimerase (PCR). Potencial zeta, tamanho de partícula, polidispersividade e dados quantitativos de PCR são avaliados e comparados. DLS é uma perspicaz e método de análise que adiciona uma nova perspectiva para o processo de triagem de partículas para isolamento de DNA de apoio.

Introdução

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Isolamento do DNA é um dos passos mais importantes em biologia molecular. O desenvolvimento de métodos de extração de ácido nucleico tem grande impacto sobre os campos emergentes da genómica, metagenômica, epigenética e transcriptomics. Há uma ampla gama de aplicações biotecnológicas para isolamento de DNA, incluindo médicos (ferramentas forenses/diagnóstico e prognósticos biomarcadores) e aplicações ambientais (biodiversidade metagenomic, prevalência do patógeno e vigilância). Tem havido crescente demanda para purificar e isolar o DNA de diferentes materiais e em diferentes escalas tais como sangue, urina, solo, madeira e outros tipos de amostras. 1 , 2 , 3 , 4

E micropartículas nanométricas são apropriadas para isolamento de DNA devido à sua elevada área superficial e, em especial quando eles podem ser imobilizados por um campo magnético. Propriedades físico-químicas de partículas, tais como tamanho ou carga, grandemente podem influenciar a sua capacidade de biomoléculas alvo. 5 para aumentar ainda mais a vinculação de biomoléculas e estabilizar as partículas, as modificações químicas diferentes (revestimentos de superfície) podem ser utilizadas. As muitas estratégias diferentes para ligação são classificadas de acordo com interações não covalentes e covalentes. 6 o tamanho das partículas afeta diretamente suas propriedades de magnetização, Considerando que a composição da partícula pode ser costurada por incorporação de metálico, ligas ou outros materiais que podem influenciar a sua densidade, porosidade e superfície. 7 não há nenhuma maneira confiável para medir a carga superficial das partículas pequenas. Em vez disso, o potencial elétrico no plano de escorregamento (alguma distância longe da superfície de nanopartículas) pode ser medido. 8 este valor é chamado de zeta potencial e é uma ferramenta potente que geralmente é utilizada para avaliação da estabilidade de nano - e micropartículas através de DLS. 9 desde que seu valor é altamente dependente não só o pH e força iônica do meio ambiente dispersivo, mas também sobre as características de superfície das partículas, pode também provar as alterações nesta superfície causado pela interação entre o partículas e moléculas de interesse. 10

Por outro lado, a estrutura do DNA em condições desidratado (forma A-DNA) exposições compactado conformações que facilitam sua precipitação (agregação) quando comparado ao comumente ocorrendo formulário B-DNA. Eletrostática (iônica e ligação-H) são as principais forças controlando a ligação do DNA a outros materiais devido à sua estericamente acessível fosfato e bases nitrogenadas (particularmente a guanina). 7 , 10

Neste trabalho, analisam-se três modificações químicas representativas de nanopartículas magnéticas e micropartículas (figura 1A). São descritos o método de síntese e modificação química de nanopartículas e micropartículas. Uma solução de ligação, que acordos de princípios teóricos da precipitação do DNA (pH, força iônica e desidratação), é usada para avaliar a eluição e vinculação de DNA. PCR quantitativo é usado para avaliar a eficiência de eluição do DNA do representante nanopartículas e micropartículas (figura 1B). Granulometria, índice de polidispersividade e potencial zeta são importantes parâmetros que são usados para visualizar as alterações físico-químicas que ocorrem na superfície da partícula (Figura 1). É importante ressaltar sobre a caracterização química de superfície de partícula magnética. Enquanto esta etapa foi para além do âmbito do presente protocolo, várias técnicas modernas podem ser aplicadas para investigar a eficiência de modificações químicas. 11 , 12 , 13 , 14 a espectroscopia no infravermelho (FTIR) transformada de Fourier pode ser usada para avaliar o espectro infravermelho de superfície de partícula e compará-lo com o espectro de modificadores químicos livre. Espectroscopia de fotoelétron de raios x (XPS) é outra técnica que pode ser usada para identificar a composição elementar da superfície do material. Outros métodos eletroquímicos, microscópicos e espectroscópicos podem ser usados para lançar a luz sobre a qualidade da síntese de partículas. Este trabalho destaca uma nova perspectiva de análise de DNA-magnético interações de partículas via DLS.

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Protocolo

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1. síntese de nanopartículas magnéticas

  1. síntese de nanopartículas magnéticas estabilizado com citrato (MNPs)
    1. Adicionar 20 mmol de FeCl 3 ∙ 6 H 2 O (g 5,406) e 10 mmol de FeCl 2 ∙ 4 H 2 O (g 1,988) em 20 mL de água bidestilada venoso (água de ddd). Celeuma obtida solução vigorosamente no béquer sob atmosfera 2 N, utilizando um agitador mecânico, até à obtenção de uma solução transparente.
    2. Sob agitação mecânica rápida, adicionar 150 mL de 1 M NH 4 OH, gota a gota usando funil (tomar 1 h ou mais se necessário). Transferi a solução para um navio screwable depois todos NH 4 OH é adicionado. Dane-se a solução de navio e calor a 75 ° C por 30 min.
      Cuidado: NH 4 OH é classificado como corrosivo e perigoso para o ambiente.
      Nota: Preparar a solução de NH 4 OH de alto grau 28% NH 4 OH em água usando água pobre em oxigênio.
    3. Recolher o precipitado preto usando o ímã e lavagem usando 100 mL de água de ddd. Repeti 3 vezes. Adicione 50 mL de 0,5 M dihidrato de citrato tri-sódico para precipitar. Dane-se o navio.
      Nota: Usar solução venoso de dihidrato de citrato de sódio-tri.
    4. Re-dispersar o precipitado via sonication (35 kHz, amplitude de 100%) e vaso de calor a 80 ° C, durante 1 h.
      Nota: Um sonicador de alimentação suficiente é necessária.
    5. Deixe arrefecer o solução à temperatura ambiente. Recolher o precipitado usando um ímã e remover o sobrenadante. Re-dispersar lama negra em 50 mL de água ddd usando sonicador (35 kHz, amplitude de 100%).
    6. Transferir alíquotas (~ 25 mL) em tubos de centrífuga de 50 mL e adicionar 20 mL de acetona. Centrifugar a 2400 x g durante 10 minutos e remover os sobrenadantes.
    7. Re-dispersar precipitado e Dialize solução contra água utilizando dispositivo de diálise de corte baixo peso molecular (500-1.000 Da) de volume adequado para 24 h.
      Nota: Preparar o aparelho de diálise, de acordo com o fabricante ' requisitos de s.
  2. Síntese de nanopartículas magnéticas modificadas com o polyethylenimine de cadeia ramificado (MNPs_PEI)
    1. Adicionar 2 mL de solução de MNPs obtida (~0.1 g/mL) para um copo de vidro. 38 ml de água do ddd e proceda à sonicação (35 kHz, amplitude de 100%) a suspensão (10 min).
    2. Sob agitação mecânica rápida, adicionar 10 mL de 10% ramificado o polyethylenimine (média de 25 kDa). Agitar a solução para posterior h. 3
    3. Coletar precipitar usando o ímã e remove o sobrenadante. Re-disperse o precipitado em 20 mL de água de ddd. Repita 5 vezes, em seguida, proceda à sonicação a suspensão final (35 kHz, amplitude de 100%).
  3. Síntese de nanopartículas magnéticas partículas modificado com sílica (MNPs_TEOS)
    1. Adicionar 10 mL de solução de MNPs obtida (~0.1 g/mL) para um copo de vidro. Adicione 60 mL de água e 130 mL de etanol. Proceda à sonicação solução e adicione 6 mL de 28% NH 4 OH.
    2. Sob agitação mecânica rápida, adicionar 1 mL de orthosilicate tetraetila. Agitar a solução para posterior h. 12
    3. Recolher precipitado preto usando o ímã e lavá-lo usando 50 mL de etanol (3 vezes) e 50 mL de água (3 vezes). Re-dispersar partículas em 10 mL de ddd de água e proceda à sonicação a suspensão (35 kHz, amplitude de 100%).
  4. Síntese de nanopartículas magnéticas modificadas com grupos aminoácidos (MNPs_APTES)
    1. Adicionar 5 mL de solução de MNPs_TEOS obtida (~0.1 g/mL) para um copo de vidro. Adicione 45 mL de água e 50 mL de etanol. Proceda à sonicação solução (35 kHz, amplitude de 100%).
    2. Sob agitação mecânica rápida, adicionar 0,5 mL de triethoxysilane (3-aminopropil). Agitar a solução para posterior h. 3
    3. Recolher precipitado preto usando o ímã e lavá-lo usando 50 mL de etanol (3 vezes) e 50 mL de água (3 vezes). Re-dispersar partículas em 5 mL de ddd de água e proceda à sonicação a suspensão (35 kHz, amplitude de 100%).

2. Síntese de micropartículas magnéticas

  1. síntese de micropartículas magnéticas estabilizado com citrato (MMPs)
    1. Adicionar 25 mL de 2m KNO 3, 12,5 mL de 1m KOH e 205,875 mL de água ddd dentro de um vaso screwable. Adicione 6,675 mL de 1m Filipa 4 durante agitação magnética. Navio de transferência imediatamente para um banho de água pré-aquecida (90 ° C) por 2 h.
      Nota: Preparar soluções KOH em ddd e KNO 3 água.
    2. Deixe arrefecer o solução à temperatura ambiente. Recolha o precipitado preto usando o ímã e lavagem com 50 mL de água de ddd (5 vezes). Adicione 50 mL de 0,5 M dihidrato de citrato tri-sódico para precipitar. Dane-se o navio.
    3. Redisperse o precipitado via sonication (35 kHz, amplitude de 100%) e vaso de calor a 80 ° C para o precipitado de preto coletar 1 h., usando o ímã e lavagem com 50 mL de água de ddd (10 vezes).
    4. Modificar MMPs com o polyethylenimine de cadeia ramificado (MMPs_PEI), sílica (MMPs_TEOS) e grupos aminoácidos (MMPs_APTES), semelhantes ao protocolo MNPs. Consulte seções 2.2, 2.3 e 2.4, respectivamente, para mais detalhes.
  2. Síntese de micropartículas magnéticas modificadas com o polyethylenimine de cadeia ramificado (MMPs_PEI)
    1. Adicionar 5 mL de solução de MMPs (~0.1 g/mL) para um copo de vidro. 38 ml de água do ddd e proceda à sonicação a solução (35 kHz, amplitude de 100%, 10 min). Sob agitação mecânica rápida Adicione 10 mL de 10% ramificado o polyethylenimine (média de 25 kDa). Agitar a solução para posterior h. 3
    2. Recolher precipitado usando um ímã e remover o sobrenadante. Redisperse precipitado em 20 mL de água bidestilada. Repita 5 vezes, em seguida, proceda à sonicação a solução final (35 kHz, amplitude de 100%).
  3. Síntese de micropartículas magnéticas modificadas com sílica (MMPs_TEOS)
    1. Adicionar 5 mL de solução de MMPs (~0.1 g/mL) para um copo de vidro. Adicione 60 mL de água e 130 mL de etanol. Proceda à sonicação suspensão (35 kHz, amplitude de 100%) e adicione 6 mL de 28% NH 4 OH.
    2. Sob agitação mecânica rápida, adicionar 1 mL de orthosilicate tetraetila. Agitar a solução para posterior h. 12
    3. Recolher precipitado preto usando um ímã e lavá-lo usando 50 mL de etanol (3 vezes) e 50 mL de água (3 vezes). Redisperse partículas em 5 mL de água ddd e proceda à sonicação a suspensão (35 kHz, amplitude de 100%).
  4. Síntese de micropartículas magnéticas modificadas com grupos aminoácidos (MMPs_APTES)
    1. Adicionar 3 mL de solução de MMPs_TEOS (~0.1 g/mL) para um copo de vidro. Adicione 45 mL de água e 50 mL de etanol. Proceda à sonicação a suspensão (35 kHz, amplitude de 100%).
    2. Sob agitação mecânica rápida, adicionar 0,5 mL de triethoxysilane (3-aminopropil). Agitar a solução para posterior h. 3
    3. Recolher precipitado preto usando o ímã e lavá-lo usando 50 mL de etanol (3 vezes) e 50 mL de água (3 vez). Redisperse partículas em 3 mL de água ddd e proceda à sonicação a suspensão (35 kHz, amplitude de 100%).

3. Magnético das partículas tamanho análise usando DLS

  1. tamanho de partícula em água
    1. uso um DLS instrumento que se aplica a um ângulo de detector de dispersão traseira (173 °) e um comprimento de onda do feixe de 633 nm.
      Nota: Dispersão traseira DLS é adequado para amostras concentradas onde múltiplo espalhamento pode ser evitado. Dispersão de lado (ângulo 90° do detector) e espalhamento frontal (15° de ângulo de detector) DLS são adequados para partículas menores e misturadas partículas, respectivamente.
    2. Prévio para medição de água, proceda à sonicação partículas de 3 min.
      Nota: Use uma solução diluída de partículas. Para este efeito, misture 9,6 µ l de partículas com 96 µ l de água.
    3. Cuidadosamente pipete 50 µ l de solução de partículas de látex de poliestireno cubetas e evitar a formação de bolhas.
      Nota: Para cada amostra, use cubeta descartável (ver tabela de materiais).
    4. Observe a clareza da cubeta e a direção do feixe de luz. Insira o celular no porta-amostras e fechar a câmara.
    5. Use os seguintes parâmetros para medição: temperatura: 25 ° C; índice de refração da fase dispersiva (ferro): 2.344; índice de refração do ambiente dispersivo (água): 1.333
      Nota: Realizar a medição do índice de refração usando um refratômetro para resultados mais precisos, especialmente quando o desenvolvimento de materiais de romance ou híbrido.

4. Preparação de DNA Stock, partículas magnéticas e Binding Buffer

  1. estoque de DNA
    1. uso buffer de 10 mM Tris-HCL (pH = 8) para diluição e armazenamento de DNA. Use uma padrão de DNA que pode ser amplificada especificamente com um protocolo PCR direto no laboratório (consulte a seção 5.2 para configurações de reação e condições). Para amplificar a 498 pares de base (PB) do gene da xis de controle de bacteriófago λ, use os seguintes primers. Encaminhar a cartilha: 5 ' - CCTGCTCTGCCGCTTCACGC - 3Ɔ Reverter a primeira demão: 5 ' - TCCGGATAAAAACGTCGATGACATTTGC - 3 '
    2. produto PCR purificar através do kit de purificação de DNA comercial.
      Nota: Rendem de jogos comerciais usando o procedimento baseado em coluna de sílica > 100 ng / µ l purificado DNA.
    3. Medida de concentração de DNA utilizando o método espectrofotométrico (absorvância a 260 nm). Diluir o estoque de DNA de 11 10 cópias / µ l, conforme as instruções acima para soluções de trabalho de 10 10, 10 9, 10, 8 e 10 7 cópias / µ l.
      Nota: O número de cópias do produto do PCR pode ser calculado de acordo com a seguinte equação, supondo que o peso molecular médio é de 650 Da cada BP:
      cópias de DNA / µ l = (quantidade em ng / µ l * 6.022x10 23 cópias/mol) / (498 bp * 650 g/mol de bp * 1 x 10 9 ng/g)
  2. partículas magnéticas
    1. permitem que as partículas de sedimentos sem o ímã e remover o sobrenadante. Misture 01:20 relação v/v das partículas magnéticas com água ddd (partículas: água).
      Nota: Abordagem baseada em Volume é usada para descrever as quantidades de partículas magnéticas, desde massas iguais de MNPs e MMPs eram prontamente difícil comparar.
  3. Binding buffer de
    1. para a rápida preparação da solução de HCL de acetato de sódio 0,75 M (pH = 6), misturar 1 mL de acetato de sódio 3M com 3 mL de HCL de 1 mM.
      Nota: Todas as soluções utilizadas na ligação podem ser armazenadas em 4 ° C. Observe que baixa temperatura aumenta significativamente a ligação, particularmente no caso de solução de etanol. Controlar cuidadosamente a temperatura de soluções para melhor reprodutibilidade e precisão da despistagem.

5. Teste de eficiência de DNA isolamento usando PCR quantitativo

  1. isolamento de DNA modificado MMPs ou MNPs
    1. usar uma placa de 96 poços e um ímã personalizado para placa de 96 poços para experimentos de pequeno volume.
    2. Usar a mistura de solução de ligação seguintes: 8 µ l modificado MMPs ou MNPs, 10 µ l de acetato de sódio-HCl (0,75 M, pH = 6), 60 µ l de 85% de etanol, 10 µ l de DNA (10 10 cópias solução).
    3. Mix bem pipetando e coloque a placa sobre o ímã por 3 min. Enquanto a placa é o imã, remover a solução e adicionar 100 µ l de 85% de etanol para lavar.
    4. Remover etanol.
      Nota: Permitir que o etanol secar por alguns segundos, mas não deixe que as partículas excessivamente seco ou mostrar rachaduras. Se as partículas excessivamente seca eles serão difíceis de dissolver com solução de eluição.
    5. Remover a placa de ímã e adicionar 40 µ l de solução de eluição. Misture bem por pipetagem. Coloque a placa de volta sobre o ímã e coletar DNA eluted (~ 37 µ l). Armazenar o eluente a-20 º C até uma análise mais aprofundada.
  2. PCR quantitativo
    1. usar os primers que foram usados para preparar o estoque DNA na etapa 4.1.1 quantificar cópias do gene xis, de acordo com o protocolo por Haddad et al. 10
    2. preparar a solução de mistura de mestre de acordo com a quantidade de amostras a serem testadas e, em seguida, distribua a mistura em cadeia da polimerase ou uma placa de 96 poços de fundo branco.
    3. Utilizar as seguintes quantidades para um volume total da mistura PCR 20 µ l: polymerase de 10 µ l / intercalante mistura de corante (ver tabela de materiais), 2 µ l da amostra DNA, 2 µ l para a frente da primeira demão (10 µM), 2 µ l inversa da primeira demão (10 µM)
    4. Configurar o thermocycler de acordo com o seguinte programa: 95 ° C por 120 s, 40 ciclos (95 ° C por 15 s, 64 ° C por 15 s, 68 ° C por 45 s), 68 ° C por 5 min.
    5. Usando triplica para padrões e amostras, calcular o limiar de ciclo e construir uma curva padrão para estimar o número de cópias de DNA obtida em cada amostra. O instrumento utilizado aqui isso executa automaticamente.
    6. Aqui, o número de cópias de DNA é estimado para o volume total de eluição (~ 40 µ l). Porcentagem de DNA obtida, correspondente à quantidade original adicionada à solução (totalmente 10 11 cópias) de vinculação pode variar além do intervalo de 0 a 100.

6. DLS usando vinculação de análise de DNA-magnético partículas

  1. Ligação de DNA
    1. para grande volume de experimentos (em tubo de 1,5 mL), use a seguinte mistura de solução de vinculação: 96 µ l modificado MMPs ou MNPs, 120 µ l de acetato de sódio-HCl (0,75 M, pH = 6), 720 µ l de 85% de etanol, 120 µ l de DNA (10 10 cópias solução) ou 120 µ l-tampão Tris HCL (10 mM, pH = 8) para controle.
  2. Análise de potencial zeta
    1. Prepare duas soluções de ligação com o DNA e outro com tampão Tris-HCL para controle conforme instruído na etapa 6.1.1. Para evitar a formação de bolhas, cuidadosamente Pipetar 800 µ l da mistura de ligação para um celular descartável.
      Nota: Use cubeta descartável para a medição de superfície zeta potencial (ver tabela de materiais).
  3. Use os seguintes parâmetros para medição no instrumento DLS: Smoluchowski modelo com um F(ka) de 1.5, temperatura: 25 ° C, índice de refração da fase dispersiva (ferro): 2.344, índice de refração do ambiente dispersivo (água): 1.333.
    Nota: A taxa de interação de partículas magnéticas-DNA afeta diretamente a medição de repetições. Uma única medida pelo instrumento leva 60-70 s. Aqui, o instrumento foi instruído a tirar 10 medidas com 1 min intervalos de atraso. Para manter a simplicidade, o resultado será mostrado na tempo = 0, 2, 4, 6, 8, 10, 12, 14, 16 e 18 min da primeira leitura.

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Resultados

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Usando o protocolo descrito aqui por síntese química e modificação das partículas magnéticas, seis partículas magnéticas foram sintetizadas e analisadas para ligação de DNA. Um resumo da análise é mostrado na tabela 1. Comparando o tamanho de partícula em água e em solução de ligação, é claro que todas as partículas de agregado na solução de ligação por dobras 2-22. Algumas partículas mais agregados mais dobras na presença de DNA; no entanto isto não foi diretamente corre...

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Discussão

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Neste protocolo, os princípios teóricos que explicam o emperramento do ADN para partículas magnéticas através de potencial zeta foram em questão. O protocolo descreve a síntese e modificação de nanopartículas magnéticas e micropartículas. Método para a preparação da solução de controle e vinculação de DNA também são descritos. Duas estratégias são mostradas aqui para triagem de interações DNA-partícula: PCR quantitativo e DLS se aproxima. DLS fornece três indicadores de alterações físico-químicas em partículas: granulome...

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Divulgações

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Os autores não têm nada para divulgar.

Agradecimentos

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O apoio financeiro pela Fundação de ciência Checa (projeto GA CR 17-12816S) e o CEITEC 2020 (LQ1601) é muito reconhecido.

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Cloreto de ferro (III) hexahidratadoSigma-Aldrich207926Síntese de partículas magnéticas
Cloreto de ferro (II) tetrahidratadoSigma-Aldrich380024Síntese de partículas magnéticas
Sulfato de ferro (II) heptahidratadoSigma-AldrichF8263Síntese de partículas magnéticas
AcetonaPenta10060-11000Síntese de partículas magnéticas
Citrato de sódio di-hidratadoSigma-AldrichW302600Síntese de partículas magnéticas
Ortossilicato de tetraetilaSigma-Aldrich131903Síntese de partículas magnéticas
(3-aminopropil) trietoxissilanoSigma-Aldrich440140Síntese de partículas magnéticas
Polietilenimina, ramificada, média Mw ~ 25.000Sigma-Aldrich408727Síntese de partículas magnéticas
Solução de hidróxido de amônioSigma-Aldrich221228-M Síntese de partículas magnéticas
EtanolPenta71250-11000Síntese de partículas magnéticas
Nitrato de potássioSigma-AldrichP6083Síntese de partículas magnéticas
Hidróxido de potássioSigma-Aldrich1.05012Síntese de partículas magnéticas
membrana de corte de peso molecular (Mw = 1 kDa)Laboratórios de espectroG235063Síntese
de partículas magnéticasAgitador suspensocom Labortechnik GmbHDH. WOS01035Síntese de partículas magnéticas
Banho-mariaMemmert GmbH + Co.84198998Síntese de partículas magnéticas
SonicatorBandelin795Síntese de partículas magnéticas
MARCA Cubeta UV microSigma-AldrichBR759200-100EACubeta para medição de tamanho
Tampa da MARCA para cubeta UV microSigma-AldrichBR759240-100EATampas de cubeta para medição de tamanho
Dobrado Capilar Zeta CellMalvernDTS1070Cubeta para medição de potencial zeta
Zetasizer Nano ZSMalvernZEN3600Dispositivo para medição de tamanho e potencial zeta
Infinite 200 PRO
Instrumento NanoQuant
Tecan396 227 V1.0, 04-2010dispositivo para medição da concentração de DNA
SYBR Green Quantitative RT-PCR KitSigma-AldrichQR0100Kit de PCR
Mastercycler pro S instrumentoEppendorf6325 000.013Termociclador
MinElute kitQiagen28004kit de purificação de DNA
acetato de sódioSigma-AldrichS7670ligação de DNA

Referências

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  1. Kulinski, M. D., et al. Sample preparation module for bacterial lysis and isolation of DNA from human urine. Biomed Microdevices. 11 (3), 671-678 (2009).
  2. Loonen, A. J. M., et al. Comparison of Pathogen DNA Isolation Methods from Large Volumes of Whole Blood to Improve Molecular Diagnosis of Bloodstream Infections. PloS One. 8 (8), (2013).
  3. Mahmoudi, N., Slater, G. F., Fulthorpe, R. R. Comparison of commercial DNA extraction kits for isolation and purification of bacterial and eukaryotic DNA from PAH-contaminated soils. Can J Microbiol. 57 (8), 623-628 (2011).
  4. Rachmayanti, Y., Leinemann, L., Gailing, O., Finkeldey, R. DNA from processed and unprocessed wood: Factors influencing the isolation success. Forensic Sci Int Genet. 3 (3), 185-192 (2009).
  5. Munir, M. T., Umar, S., Shahzad, K. A., Shah, M. A. Potential of Magnetic Nanoparticles for Hepatitis B Virus Detection. J Nanosci Nanotechnol. 16 (12), 12112-12123 (2016).
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