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Artigo de método

Avaliação da coagulação do Plasma no tecido do fígado em um modelo Animal grande na Vivo

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DOI:

10.3791/57355

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4 de agosto de 2018

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1Department of Surgery, University of Bonn, 2Institute for Laboratory Animal Science & Experimental Surgery, RWTH Aachen University, 3Department of Anesthesiology, RWTH Aachen University

Neste artigo

Resumo

Aqui nós apresentamos um protocolo para avaliar experimentalmente a coagulação do plasma no tecido do fígado na vivo. Em um modelo de suínos, microcirculação é examinada pelo laser Doppler, profundidade de coagulação é medida histologicamente, temperatura no local de coagulação por termômetro infravermelho câmera termográfica e duto efeito de vedação é documentada por pressão de ruptura experimentos.

Resumo

Coagulação do plasma como uma forma de eletrocautério é usada em cirurgia de fígado por décadas para selar a superfície de corte grande fígada após grande hepatectomy para prevenir hemorragias em um estágio posterior. Os efeitos exatos de coagulação do plasma no tecido do fígado são examinados somente mal. No nosso modelo de suínos, os efeitos de coagulação podem ser examinados perto a aplicação clínica. Um combinado do laser Doppler fluxômetro e espectrofotômetro documentos microcirculação muda durante a coagulação, a profundidade do tecido de 8 mm canaliza, fornecendo informações quantificáveis sobre hemostasia além da impressão clínica subjetiva. A temperatura no local de coagulação é avaliada com uma termômetro infravermelho prior e post coagulação e com uma câmera termográfica durante a coagulação, a medição da temperatura do feixe de gás não é possível devido o limite superior dos dispositivos. A profundidade da coagulação é medida microscopicamente em hematoxilina/eosina manchada seções após a calibração de um micrômetro de objeto e dá uma informação exata sobre a configuração-coagulação profundidade-relação de poder. O efeito da selagem é examinado em ductos biliares, como não é possível para um Coagulador plasma selar vasos maiores. São realizados experimentos de pressão de ruptura na explantados órgãos para governar para fora a pressão arterial relacionados com efeitos.

Introdução

Coagulação de plasma de argônio (APC) é um instrumento amplamente utilizado em cirurgia abdominal por mais de três décadas,1,2. É uma técnica padrão para a realização da hemostasia secundária depois de superfície para evitar posteriores hemorragias3de corte principal hepatectomy selando o fígado. Coagulação do plasma é uma forma especializada de radiofrequência eletrocautério, que fornece a energia elétrica através de um arco de gás ionizado. Fornecendo monopolar hemostática electrotécnico, esta técnica sem contacto tem a vantagem de prevenir o eletrodo para manter o tecido4. O feixe de gás ionizado é automaticamente direcionado para a área da menor resistência elétrica e é virado quando a resistência aumenta devido à dessecação para outras áreas ainda não ressecadas. Isso produz uma profundidade limitada uniforme de coagulação5,6. Fatores que influenciam o efeito de coagulação são a ativação tempo, a potência do dispositivo da coagulação e a distância da sonda para o tecido. Hélio é outro gás de transporte, que pode ser usado para de coagulação do plasma7. Clínicos recentes estudos concentrados em desfechos clínicos, ao invés de8,achados histológicos e funcional3,9, enquanto estudos experimentais centrada-se em vitro investigações10 ou experimentos em órgãos perfundidos isolados11.

O protocolo subjacente permite o estudo dos efeitos de coagulação do plasma em um modelo animal grande perto a aplicação clínica, usando o equipamento padrão humano em suínos: microcirculação é avaliada de forma não invasiva por um fluxômetro Doppler laser e Espectrofotômetro, que é uma ferramenta padrão clínica para esta indicação12,13. Mudanças de temperatura durante a coagulação são monitoradas com um termómetro de infravermelho e uma câmera termográfica. A profundidade da coagulação é medida em hematoxilina/eosina histológica manchada seções após a colheita de amostras de tecido. Para a comparação com outros meios para hemostasia secundária, são realizados experimentos de pressão de explosão. Em contraste com as técnicas descritas anteriormente14, estas são realizadas em órgãos explantados excluir pressão arterial relacionados com efeitos. Além da descrito investigações sobre os efeitos locais de coagulação do plasma, testes de sangue padrão também possa ser realizado em modelo porcino.

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Protocolo

Foram seguidas as regras regidas pela legislação alemã para estudos em animais, bem como princípios de laboratório Cuidado Animal (National Institutes of Health publicação Ed. 8, 2011). É dada permissão oficial do escritório governamental de cuidado animal (turismo für Natur, Umwelt und Verbraucherschutz Nordrhein-Westfalen, Recklinghausen, Alemanha).

1. os animais

  1. Use os porcos landrace alemão feminino (25-30 kg de peso) alojados em gaiolas abertas.
  2. Use 5 animais por grupo (argônio e hélio).
  3. Permitir que os animais se adapte ao ambiente pelo menos uma semana antes dos experimentos. Animais rápidos durante 24 h antes da cirurgia, com livre acesso à água.

2. anestesia

  1. Bom os animais com uma injeção intramuscular de atropina (0,1 mg/kg BW), ketamina (15 mg/kg de peso corporal [BW]) e xilazina (10mg/kg BW) 10 minutos antes da indução da anestesia.
  2. Acesso venoso periférico é estabelecido pela colocação de uma cânula de calibre 22, em uma veia da orelha.
  3. Induzi anestesia geral por injeção intravenosa de propofol 2 mg/kg de peso corporal.
  4. Coloque o animal na posição supina e realizar uma incisão longitudinal da pele no sulco jugular ao longo de um comprimento de 2 cm. Locate veia mediante a preparação romba do tecido subcutâneo. Inserir a cânula, então o fio de Seldinger.
  5. Retrair a cânula e inserir 14 p. cateter sobre o fio-guia. Recue o fio guia. Conectar o cateter à extensão e fixar o cateter por uma cinta ou uma sutura.
  6. Puxe a língua para fora e insira o laringoscópio reta. Use a ponta do laringoscópio para puxar para baixo a epiglote. Introduza o tubo pelas cordas vocais. Coloque a braçadeira no âmbito da glote e inflar.
  7. Ventile com oxigênio de 40% em 20-26 respirações/min e um volume corrente de 10 ml/kg para manter a tensão de dióxido de carbono parcial end-tidal entre 36 e 42 mm Hg.
  8. Manter a anestesia com isoflurano em uma concentração de 1-1,5% e fentanil em uma concentração de 3-4 µ g/kg/h.
  9. Fornecemos a solução de lactato de Ringer em uma taxa inicial de 4 mL/kg/h e a aumentar após a laparotomia para uma taxa de infusão constante de 8 mL/kg/h.

3. cirurgia e coagulação do Plasma

  1. Coloque o animal na posição supina sobre uma mesa cirúrgica padrão.
  2. Desinfectar a pele através da aplicação de um desinfetante cirúrgico padrão (2-Propanol 45 g/100 g, 1-Propanol 10 g / 100g, bifenil-2-ol 0,2 g/100 g) com um cotonete cirúrgico por 3 vezes.
  3. Realizar uma laparotomia mediana ampla do processo xifoide até o púbis com um bisturi e instalar retractores cirúrgicos.
  4. Ligue o dispositivo de coagulação do plasma, abrir a garrafa de gás argônio ou hélio, dependendo o gás portador usados. Ajuste o fluxo de gás para a potência de saída de 3 L/min. coagulação selecionar dispositivo conforme desejado.
    Nota: Ambos os gases nobres, o argônio ou hélio, pode ser usados para a coagulação do plasma. Efeitos de coagulação são comparáveis. Consulte a referência7 para obter detalhes.
  5. Execute coagulação do plasma no lobo esquerdo do fígado, como descrito anteriormente,7. Use um molde de titânio (abertura quadrada 1 x 1 cm2) para padronizar a zona de coagulação. Coagular por 5 s, com uma distância de sonda de 1 cm. Os coagulations com as configurações de energia diferentes podem ser executadas lado a lado com uma curta distância entre os coagulations de 5 mm (Figura 1).
  6. Para a colheita do fígado, divida todas as conexões ligamentares para o fígado. Isolar e dividir o pedículo hepático acima a flexão duodenal superior deixando partes longas de veia porta e ducto biliar comum. Dividir a veia cava acima e abaixo do fígado e recuperar o órgão.
  7. Depois da colheita, o fígado, os porcos foram sacrificados por administração intravenosa de 0,16 g/kg BW pentobarbital.
  8. Para os experimentos de pressão de ruptura, metade do lobo hepático medial esquerdo ressecção com tesoura afiada. O corte de plasma-coagular (100W de potência de saída) de superfície ou selar a superfície de corte com selante de fibrina (Figura 2).

4. a microcirculação medição

Nota: Espectroscopia Doppler Laser pode determinar o fluxo de sangue no tecido através da medição o efeito Doppler causado pelo movimento de eritrócitos. O sinal do Laser se correlaciona com o número de eritrócitos em movimento. Espectroscopia Doppler laser está em uso clínico (por exemplo, transplante de medicina) e tem sido validado várias vezes15.

  1. Ligue o medidor de fluxo Doppler laser e Espectrofotômetro. Use uma sonda plana.
  2. Tome medidas de linha de base para o fluxo e a velocidade. Salvar ou anotar os valores.
  3. Realize a coagulação conforme descrito abaixo dos 3,5.
  4. Coloque a sonda plana em sites de coagulação e medida de fluxo e velocidade. Mais uma vez, salvar ou anotar valores.
  5. Repita para todas as configurações de energia do dispositivo coagulador.

5. temperatura medição

  1. Alternar o sistema (câmera termográfica, caderno e termômetro infravermelho) e deixá-lo correr pelo menos 1h antes de realizar as medições.
  2. Ajustar o foco e ver os quadros da câmera termográfica no site da coagulação. Sequências de infravermelhas podem ser detectadas com a resolução espacial de 1024 x 768 pixels com uma resolução de temperatura maior que 20 mK. Ter em conta, que a região da coagulação e do tecido circundante — afectados pela transferência de calor — situa-se no meio da exibição.
    Nota: Deve incluir tantos pixels do quadro quanto possível para uma ótima resolução espacial.
  3. Registar o processo de coagulação com o Coagulador plasma na superfície do fígado com a câmera termográfica durante um período de 2-min.
  4. Analisar sequências de imagem com o software de análise de Termografia: definir regiões de interesse.
    Nota: O Software calcula o curso da temperatura média correspondente ao longo do tempo.

6. medição de profundidade coagulação

  1. O lobo hepático medial esquerdo da colheita com uma tesoura afiada.
  2. Impostos especiais de consumo os sites de coagulação com 1 cm de espessura. Cortado em segmentos longitudinais espessura de 3 mm para processamento adicional.
  3. Amostras de tecido Fix a 4 ° C durante a noite com neutro 10% tamponada de formalina. Aqueça a parafina 2 ° C, sobre o ponto de fusão e incorporar as fatias. Processo durante a noite.
  4. Realize a coloração de hematoxilina/eosina.
    1. Deparaffinize e hidratar o tecido posteriormente mergulhando em 2 x xileno, 100% de etanol (EtOH), 95% EtOH, 70% EtOH, deionizada H2O por 2 min cada.
    2. Manche a amostra de tecido com solução de hematoxilina Meyer por 3 min.
    3. Agora lave na água da torneira por 5 min.
    4. Manche o tecido com solução de eosina por 3 min.
    5. Enxaguar em 2 x EtOH 95% e, em seguida, xileno por 3 min cada. Monte com o meio de montagem padrão.
  5. Ligue o sistema (microscópio câmera conectada, software de imagem). Ver todas as secções com ampliação de 40 X.
  6. Criar a imagem de um micrômetro de objeto em uma ampliação de 40 X. Recalibrar pressione o botão na janela de objectivos. Selecione calibração manual. Desenhe uma linha na imagem micrômetro de 100 µm. Enter 0,1 mm de caixa de diálogo e pressionar Okey.
  7. Selecione o comprimento no modo de exibição > controles de análise > janela de anotações e medições. Medida da superfície do fígado à margem de coagulação com o mouse. Exportar ou observe o resultado. Repita a medição em outro local no mesmo slide.
    Nota: Profundidade de coagulação pode ser facilmente diferenciada do tecido hepático normal pela margem afiada entre os cordões de hepatócitos normais e a zona de necrose com citoplasma encolhida, núcleos picnóticos e zonas de hemorragia.
  8. Calcule a média de duas medições.

7. explosão de medição de pressão

  1. Ligue o sistema (bombas automáticas, medidor de pressão). Prepare as amostras de fígado de acordo com a etapa de 3.7.
    Nota: Use duas bombas paralelas ligadas através de uma torneira de 3 vias. A pressão máxima de 1.500 mm Hg não pode ser obtida com uma única bomba.
  2. Isole a veia porta, artéria hepática comum e ducto biliar com tesoura no pedículo tátil. Prenda a veia porta com uma pinça overholt e ligate com uma sutura monofil 4-0. Fixar a artéria hepática comum uma pinça overholt e ligate com uma sutura monofil 4-0.
  3. Insira o cateter Ch-16 no ducto biliar comum e ligate com uma sutura de seda 2-0. Conectar o cateter às bombas automáticas, instalar a torneira de 3 vias com medidor de pressão (Figura 3).
  4. Encha a seringa de perfusão com soro fisiológico.
  5. Comece bombas automáticas com uma taxa de entrega de 99 mL/h.
  6. Monitorar o medidor fígado corte de superfície e pressão para pressão de ruptura de escapamento e registro.
    Nota: Para mais fácil reconhecimento de fugas, azul patente pode ser adicionado à solução salina (azul patente 2ml + soro 18ml). É mais fácil de observar a pressão de ruptura até notar o tempo de perda de pressão no medidor de pressão.

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Resultados

Microcirculação: Utilizar o dispositivo de diagnóstico para hemostasia após a coagulação do plasma pode ser demonstrada por alterações da microcirculação. Sangue capilar fluxo (exibido como unidades arbitrárias (AU)) diminui de um valor de base de 142.7 ± 76.08 AU para 57.78 ± 49.57 AU em 25 W dispositivo potência, para 48,5 ± 7.26 AU em 50 W e para 5,04 ± 1,31 AU em 100 W (Figura 4).

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Discussão

Modelos de roedores para cirurgia hepática são estabelecidos por um longo tempo16. No entanto, grandes modelos animais oferecem certas vantagens: nenhum equipamento microcirúrgico é necessária como equipamento operacional padrão para os seres humanos pode ser aplicado, técnicas cirúrgicas são comparáveis para uso clínico e métodos de avaliação clínica padrão podem ser transferido para os experimentos. Por exemplo, testes de sangue padrão clínico pode ser realizado sem a necessidade de métodos de e...

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Divulgações

Os autores não têm nada para divulgar.

Agradecimentos

Os autores têm sem agradecimentos.

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Xilazina 20 mg/mLVetoquinol GmbHXilapan
Cetamina 100 mg/mLCeva GmbHCeva Injeção de
Cetamina Atropina 100 mg / 10 mLDr. Franz Kö hler Chemie GmbHAtropinsulfat Kö hler 100mg Amp.
PropofolFresenius Kabi GmbHPropofol 1% MCT Fresenius
FentanilKG Rotexmedica GmbHFentanil 0,5mg Rotexmedica
IsofluranoAbbot GmbHForene 100% (V/V) 250 mL
Solução de lactato de RingerBaxter Deutschland GmbHsódio 131mmol/l, potássio 5 mmol/l, cálcio 2 mmol/l, cloreto 111 mmol/l, lactato 29 mmol/l
Disinfactante cirúrgicoSchü lke & Mayr GmbHKodan Tinktur forte gefä rbt 1l 104804
Microscópio motorizadoNikon Instruments EuropeEclipse TE2000-E
Câmera de microscópioNikon Instruments EuropeDigitalsight DS-Qi1Mc
Software de imagemNikon Instruments EuropeNIS elements Vers. 4.40
Coagulador de plasmaSö ring GmbHCPC-1000
Gás argônioLinde AGArgon 4.8 
Gás hélioLinde AGHelium 4.8
O2CLEA Medizintechnik GmbHO2C Versão 1212com sonda LF-2 ou LF-3
Termómetro infravermelhoVoltcraftVOLTCRAFT IR 260-8S
Câmara termográficaInfraTec GmbHVarioCAM HD head 820
Software de análise termográficaInfraTec GmbHIRBIS 3
de hematoxilina de MayerMerck 1.09249
Solução de eosinaVWR International GmbHMerck 1.09844
Rollerpump Masterflex L/S easy LoadCole-Parmer Instrument Companymodelo 7518-10
PerfusorpumpB. Braun Melsungen AGPerfusor secura FT
Medidor de pressão digitalGreisinger eletrônicoGMH 3161
Perfusorserse, 50 mLB. Braun Melsungen AGREF 8728810 F
Linha Perfusor, Tipo IV Padrão, PVC Luer lockB. Braun Melsungen AGREF 8722960
de 3 vias, Dicofix C35CB. Braun Melsungen AGREF 16494 C
Silk 2-0. 3 métricaResorbaREF H5F
Vicryl 4-0 SutupakEthiconV1224H
NaCl 0,9 %B. Braun Melsungen AG
Solução torneira

Referências

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