Este estudo utiliza uma técnica de microscopia (LSFM) de fluorescência de luz-folha de iluminação dupla face combinada com compensação óptica para estudar o coração murino.
É necessária uma assinatura do JoVE para visualizar este conteúdo. Faça login ou inicie seu teste gratuito.
Artigo de método
Este estudo utiliza uma técnica de microscopia (LSFM) de fluorescência de luz-folha de iluminação dupla face combinada com compensação óptica para estudar o coração murino.
Microscopia de fluorescência de luz-folha tem sido amplamente utilizada para aquisição de imagem rápida com uma alta resolução axial de micrômetro milímetro escala. Técnicas tradicionais de luz-folha envolvem o uso de um feixe único de iluminação direcionado ortogonalmente no tecido da amostra. Imagens de grandes amostras que são produzidas usando um feixe de iluminação único contêm listras ou artefatos e sofrem uma resolução reduzida devido à dispersão e absorção da luz pelo tecido. Este estudo utiliza um feixe de iluminação dupla face e uma clareza simplificada óptica técnica para o coração de murino de compensação. Estas técnicas permitem mais profunda de imagem removendo lipídios do coração e produzem um grande campo de imagem, maior que 10 x 10 x 10 mm3. Como resultado, esta estratégia permite-nos quantificar as dimensões ventriculares, a linhagem cardíaca de rastrear e localizar a distribuição espacial de proteínas específicas do cardíaco e canais iônicos do pós-natal para corações de rato adulto com contraste suficiente e resolução.
Microscopia de fluorescência de luz-folha foi uma técnica desenvolvida pela primeira vez em 1903 e é usada hoje como um método para estudar a expressão gênica e, também, para produzir modelos 3-d ou 4-D, de amostras de tecido a1,2,3. Este método de imagem usa uma folha fina de luz para iluminar um único avião de uma amostra para que só aquele avião é capturado pelo detector. A amostra então pode ser movida na direção axial para capturar cada camada, uma seção de cada vez e processar um modelo 3D após o pós-processamento das imagens adquiridas4. No enta....
Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.
Todos os procedimentos que envolvem a utilização de animais foram aprovados por comitês de revisão institucional (IACUC) na Universidade da Califórnia, Los Angeles, Califórnia.
1. configuração do sistema imaging
Nota: Veja a Figura 1 e Figura 2.
Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.
A técnica descrita aqui usado um feixe de iluminação dupla face combinado com uma compensação óptica de amostras de tecido de coração de rato para atingir uma profundidade de imagem mais profunda e um maior volume de imagens com resolução de imagem suficiente (Figura 1). Para calibrar o sistema, grânulos fluorescentes foram colocados dentro de tubos de vidro e dentro do sistema da imagem latente. Os grânulos foram então fotografados e visualizados em x-y aviã.......
Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.
O sistema LSFM e a técnica descrita aqui utiliza um feixe de iluminação dupla face combinado com uma clareira óptica a imagem do coração de rato em pós-natal e adultos fases do seu desenvolvimento. Um feixe de iluminação único tradicional sofre de espalhamento do fóton e absorção através de de1,de amostras de tecido mais grosso e maior3. As duas faces de vigas fornecem uma iluminação mais uniforme da amostra, minimizando assim o efeito de distribuição e outros ar.......
Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.
Os autores não têm nada para divulgar.
Os autores gostaria de expressar gratidão ao Thao Nguyen e Atsushi Nakano da UCLA para o fornecimento da amostra de ratos a imagem. Este estudo foi suportado por estrelas de bolsas NIH HL118650 (para Tzung K. Hsiai), HL083015 (para Tzung K. Hsiai), HD069305 (para N. C. Chi e Tzung K. Hsiai.), HL111437 (para Tzung K. Hsiai e N. C. Chi), HL129727 (para Tzung K. Hsiai) e sistema de Universidade do Texas, financiamento (a Quélen Lee).
....Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.
| Nome | Empresa | Número de catálogo | Comentários |
|---|---|---|---|
| CW Laser | Laserglow Technologies | LMM-GBV1-PF3-00300-05 | Excitação de fluoróforos Filtro de |
| densidade neutra | Thorlabs | NDC-50C-4M | Controla a quantidade de luz que entra no sistema Expansor de |
| feixe acromático | Thorlabs | GBE05-A | Expande o feixe de luz Fenda |
| mecânica | Thorlabs | VA100C | Controla a largura do feixe |
| Divisor | de feixe Thorlabs | BS013 | Forma feixe de iluminação dupla |
| Microscópio estéreo com lente objetiva 1X | Olympus | MVX10 | Usado para observação de amostra |
| ORCA-Flash4.0 LT câmera sCMOS | Hamamatsu Photonics | C11440-42U | Usado para capturar imagens |
| Acrilonitrila butadieno estireno (ABS) | Stratasys | uPrint | Material usado para imprimir em 3-D um suporte de amostra |
| Grânulos de poliestireno fluorescente | Spherotech Inc | PP-05-10 | Usado para calibração do sistema de imagem |
| Tubulação de vidro borosilicato | Corning | Pyrex 7740 | Tubulação para incorporação de amostras |
| Glicerol | Fisher Scientific | BP229-4 | Preenchimento para câmara de amostra |
| Solução salina tamponada com fosfato | BP39920 | Fisher Scientific | para corações de camundongos |
| microscopia eletrônica | de paraformaldeído | RT-15700 | Primeira solução de incubação |
| Acrilamida | Wako Chemicals | AAL-107 | Misturado com dicloridrato de 2,2'-Azobis para segunda solução de incubação para corações de camundongos |
| 2,2'-Cloridrato de Azobis | Wako Chemicals | VA-044 | Misturado com Acrilamida para segunda solução de incubação para corações de camundongos |
| Dodecil sulfato de sódio | Sigma Aldrich | 71725 | Misturado com ácido bórico para solução de terceira incubação para corações de camundongos |
| Ácido bórico | Fischer Scientific | A74-1 | Misturado com dodecil sulfato de sódio para solução de terceira incubação para corações de camundongos |
| Sigma D2158 | Sigma Aldrich | D2158 | Misturado com PB, Tween-20 e azida de sódio como solução de correspondência de índice de refração |
| Tween-20 | Sigma Aldrich | 11332465001 | Misturado com Sigma D2158, PB e azida de sódio como uma solução de correspondência de índice de refração |
| Azida de sódio | Sigma Aldrich | S2002 | Misturado com Sigma D2158, PB e Tween-20 como uma solução de correspondência de índice de refração |
| Vetor de vírus adeno-associado 9 com um promotor de troponina T específico para o coração marcado com GFP | Vector Biolabs | VB2045 | Expressa GFP quando ligado ao Atuador de |
| Servo Motor DC | Thorlabs | Z825B | Usado para o movimento da amostra na direção axial dentro da folha de luz |
| K-Cube Brushed DC Servo Motor Controller | Thorlabs | KDC101 | Conecta-se ao atuador do motor e controla o movimento do atuador |
| Amira | FEI Software | N/A | Software de visualização para produção de imagens 2-D e 3-D |
Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.