Suínos como um módulo de treinamento para reconstrução Microvascular, cabeça e pescoço

Resumo

Aqui nós apresentamos um protocolo para o uso da aba de perforator porco artéria epigástrica superior como um módulo de aprendizado para reconstrução microvascular, cabeça e pescoço.

Resumo

Modelos vivos que se assemelham a condições cirúrgicas dos seres humanos são necessários para treinamento grátis-flap colheita e anastomose. Modelos animais para fins de treinamento estão disponíveis há anos em muitos campos cirúrgicos. Usamos a fêmea (porque eles são fáceis de manusear para o procedimento) Yorkshire porcos para a reconstrução de cabeça e pescoço pela colheita perforator a artéria epigástrica inferior profunda ou a aba de perforator artéria epigástrica superior. O site de anastomose (defeito de pele do pescoço ou defeito da parede traqueal) foi preparado através da dissecação da artéria carótida comum e da veia jugular interna, na qual 3,5 × ampliação lupa foi usada para anastomose como nós usamos em casos humanos na vida real. Este procedimento demonstra um novo método de treinamento usando um modelo de aprendizagem confiável e fornece uma anatomia detalhada em um cenário ao vivo. Enfocamos o tempo de isquemia, colheita, anastomose de vasos e projetar a tampa para caber o local do defeito. Este modelo melhora a manipulação do tecido e com o uso de instrumentos adequados pode ser repetido muitas vezes para que o cirurgião está plenamente confiante antes de iniciar a cirurgia em humanos.

Introdução

Reconstrução após a cirurgia para as doenças malignas de cabeça e pescoço é um procedimento difícil, associado com morbidade significativa. Reconstrução de aba livre microvascular foi estabelecida bem como a abordagem padrão para a reconstrução de mais de 20 anos,^1,2,3. Transferência grátis-flap desempenha um papel significativo na melhoria da gestão de cabeça e pescoço em pacientes com câncer e em lesões pós-traumáticos, assim, empurrando os limites de uma excisão cirúrgica da doença, além de técnicas anteriores, resultando em maior paciente qualidade de vida e sobrevivência mais taxas^1,2,3. Os vários retalhos para reconstrução incluem rotacionais, enxerto e livre de retalhos.

Expandiu-se o papel de retalhos livres na reconstrução cabeça e pescoço. É a aba mais difíceis de trabalhar, exigindo manipulação hábil e delicada. Falha de flap é um evento catastrófico, com significativa morbidade^4,5. Assim, o tempo de treinamento considerável é necessário para desenvolver a precisão necessária para o sucesso de resultados cirúrgicos^{3,4,5,6,7,8, 9}. A curva de aprendizagem associada com uma cirurgia tão pode influenciar o resultado para os pacientes e afetam o tratamento de gestão^{3,4,5,6,7, 8,9}. Para reduzir o tempo de treinamento e curva de aprendizado para novos cirurgiões, um modelo de formação, é necessário que imita a biologia humana e fornece condições de campo cirúrgico semelhante⁸.

O objetivo deste estudo é mostrar a visibilidade dos suínos como um módulo de boa formação para a reconstrução cabeça e pescoço microvascular, assemelhando-se o caso humano com habilidades melhoradas na forma ativa.

Este estudo investigou a utilização de um modelo de suínos para novos colegas de treinamento na cabeça e pescoço microvascular reconstrução para transferência grátis-flap proporcionar um baixo custo e menos estressante complementam ao treinamento de campo clínico com confiantemente semelhantes recursos para procedimentos de aba livre. Porcos têm sido utilizados por muitos estudos e como ensino modelos para várias reconstruções cirúrgicas, por exemplo, a reconstrução da mama; ⁵ no entanto, os porcos nunca foram usados para reconstrução cabeça e pescoço, exceto em nosso estudo de reconstrução traqueal devido a estenose traqueal¹⁰.

A ideia foi iniciada após Frederic Bodin⁷, que descrevem o flap semelhante para reconstrução da mama. A principal vantagem para o estudo sobre o outro módulo de treinamento microvascular é o módulo livening ativo com um resultado real imediato do processo.

Protocolo

Este estudo foi encaminhado e aprovado pelo departamento de laboratório Animal recursos, Yonsei Biomedical Research Institute, Yonsei University College of Medicine, credenciado pela Associação de avaliação e acreditação do cuidado de Animal de laboratório Internacional. Este estudo seguiu as orientações para o cuidado e o uso de animais de laboratório do Instituto de laboratório Animal recursos Comissão no Conselho Nacional de pesquisa de Ciências da vida. Todos os suínos foram aclimatados para uma semana antes da operação.

1. preparação

1. Manter os porcos sem comida para mais de 12 h antes da anestesia geral, com livre acesso à água.
   Nota: Seis porcos de Yorkshire fêmeas foram utilizados 25 – 30 kg cada.
2. Use uma agulha de calibre 16 de 1 cm de comprimento para injetar por via intramuscular azaperona (2 mg/kg), alfaxan (1 mg/kg) e xilazina (2 mg/kg) atrás e abaixo da orelha para iniciar a anestesia.
3. Depilar a linha mediana anterior do pescoço e a parede abdominal do porco usando uma máquina de barbear de remoção cirúrgica de cabelo.
4. Fixe uma via venosa de (IV) através de veia central ou marginal da orelha no lado posterior da orelha com uma agulha 22-G. Injete Ketorolac (1 mg/kg) via uma linha IV.
5. Então injete atropina (0,04 mg/kg) por via intramuscular, conforme descrito no ponto 1.2. Injete a cefazolina (30 mg/kg) por via intramuscular, conforme descrito no ponto 1.2.
6. Coloque o porco deitado em posição supina na mesa da sala de cirurgia.
7. Permitir que o porco à respiração 2 L de oxigênio com 5% de isoflurano através de anestesia suína máscara espontaneamente.
8. Expor as cordas vocais através da boca, usando um laringoscópio e pulverizá-los com duas tragadas de 2% solução tópica de lidocaína para evitar induzida por intubação laringo-espasmo.
9. Entubar com um tubo de 6,5 mm, insuflar a braçadeira do tubo com 3-5 mL de ar usando uma seringa sem agulha anexada a ele.
   Nota: Execute capnometry para garantir que o tubo traqueal, que é uma parte da máquina de anestesia, está na posição correta e há de CO₂ para a máquina como uma indicação de oxigenação adequada.
10. Manter a anestesia após a intubação com 2% de isoflurano.
11. Usar a pomada de veterinário em olhos de porco e fechá-la com um tapa-olho tampa.

2. procedimento: Recepção Site

1. Desinfecte o pescoço e a parede abdominal com o esfoliante à base de iodo solução 1%.
2. Começa uma incisão vertical no pescoço anterior usando lâmina n º 23 até o esterno.
3. Dissecar os músculos da cinta e recolhê-la lateralmente usando a tesoura de tecido de Kelly e Lahey retrator.
4. Expor a traqueia do primeiro anel da entrada torácica.
5. Em seguida, expor a artéria carótida comum e da veia jugular interna para a anastomose.
6. Crie uma janela na segunda ou terceira cartilagem traqueal, ~ 1 cm de largura, usando lâmina n º 11.
7. Olhe para o tubo endotraqueal através do defeito traqueal criado e certifique-se a aeração através do tubo é continuou usando o ventilador sem um vazamento.

3. procedimento: Flap Site

Nota: A colheita de flap de perforator (SEAP) artéria epigástrica superior pode ser realizada, de acordo com o método descrito por Frederic Bodin⁷.

1. Desenha uma aba no abdômen superior por uma caneta marcador cirúrgico (figura 1A).
2. Crie uma incisão de pele elíptica 4 x 3 cm, usando um bisturi n º 23 para a bainha anterior da parede abdominal no lado medial da aba desenhada (figura 1B).
3. Eleve a bainha (casca) do retalho do músculo reto abdominal , procurando as perfuradoras vai a aba de pele, mantendo a fáscia pela allis.
4. Faz a dissecação intramuscular e siga as perfuradoras para os navios epigástrico superiores (figura 1B)
5. Agora realizar a incisão da pele lateral na aba projetada (figura 1A) usando um bisturi n º 23 (Figura 1)
6. Fixar os navios epigástrico superiores e a veia comitantes com a pinça hemostática superiormente e usar Kelly tecido tesouras para cortar abaixo da pinça hemostática e ligate vaso acima a pinça hemostática por sutura 3-0. Então tire a pinça hemostática.

4. a anastomose e encerramento

1. Coloque uma lupa cirúrgica.
2. Braçadeira da artéria carótida, usando dois hemostatos com 1-2 cm de distância entre eles.
3. Uso microtesoura de corte entre a artéria carótida e amarre a parte superior pela dupla sutura segura sem exsudação.
4. Use o grampo duplo sem o frame entre a artéria carótida e flap.
5. Começa a anastomose usando 10-0 sutura simples toda a sua espessura interpretada.
6. Lugar a primeira estadia duas suturas aproximadamente 120 graus de separação na circunferência do navio, em seguida, entre o lugar de 2-3 pontos.
7. Solte o grampo. Se houver sangue escorrendo fazer a sutura semelhante no site da exsudação.
8. Olhe para o refluxo venoso da veia comitantes.
9. Realize a anastomose conforme descrito na etapa 4.1 a 4.7 para a veia jugular interna e a veia comitantes (Figura 1).
10. Use um tamanho de agulha de seringa 18 para picar a pele para assegurar a viabilidade de retalho por ver uma gota de sangue.
11. Feche a janela traqueal e sutura-o com a fáscia muscular da SEAP aba usando sutura 3-0.
12. Exteriorize e suturar uma pá de pele do retalho SEAP para a cervical incisão de pele (Figura 2A).
13. Feche a incisão da pele abdominal (Figura 2B).

5. no pós-operatório cuidados

1. Volte o porco para a posição prona.
2. Parar o isoflurano e desmamar o porco do ventilador.
3. Permitir que o porco se recuperar na gaiola animal e monitorá-lo de perto para garantir sua recuperação suave do procedimento.
4. Procure a aba no site de reconstrução após a cura (Figura 2).
5. Olha o site do doador no animal após a cura (Figura 2D).
6. Começar de lactato de Ringer ao ritmo de 150 mL/h até a recuperação completa e administrar 0,3 mg buprenorfina para analgesia.
7. Após a extubação, monitore o porco perto até que recuperou a consciência suficiente para manter a posição e a respiração e é capaz de beber espontaneamente.
8. Manter os porcos de pós-operatório em lugar separado de nenhum animal operado.
9. Comece intramuscular Amoxicilina-Clavulanato (14 mg/kg) por 1 semana.
10. Inicie o Meloxicam intramuscular (0,2 mg/kg) por 1 semana.

6. eutanásia

1. Iniciar a anestesia para o porco pela injeção de propofol através de i.v. (5-10 mL) e mantê-lo com isoflurano, 5%.
2. Entube o porco conforme descrito na etapa (1.1, 1.2, 1.6-1.10).
3. Induzi a parada cardíaca por injecção intravenosa de 40 mmol KCl.

Resultados

Realizamos o procedimento em seis porcos: reconstrução de defeito de pele cervical em dois porcos, reconstrução traqueal em dois porcos e retalho livre para testar o dispositivo de anastomose vascular em dois porcos. Os porcos foram monitorados por 3 meses e não havia nenhum sinal clínico de déficit neurológico.

O tempo médio para isquemia foi 50 min (gama, 35-80 min); o tempo diminuíram o procedimento foi repetido. A época da c...

Discussão

Defeitos e Morbidade significativa podem ocorrer na cabeça e pescoço pacientes malignidade durante tratamento cirúrgico. Transferência de tecido livre microvascular tornou-se essencial para a reconstrução na maioria dos casos. A viabilidade do retalho é um problema crítico, que exige estabilidade, precisa de manipulação do pedículo, sensação tátil, capacidade visuo e excelente fluxo operacional do cirurgião⁸. Para desenvolver essas habilidades, é preciso prática extensiva com um treinamento modelo...

Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo

Nome	Empresa	Número de catálogo	Comentários
Pigs XP Bio, Seul, Coreia
Barbeador de depilação cirúrgica	3M
22 calibre cateter	Seringa B.BRAUN
com agulha tamanho 18	Jung Rim Medical
Alfaxan intramuscular	Careside		10ml/VAL
Intramuscularxilazina	Bayer
Azaperona intramuscular	Sigma-aldrich		34223
Atropina intramuscular	Daewon		0,5mg/A
Cefazolina intramuscular	Yuhan		1g
Ketorolac	Hana Pharm		30mg
Máscara de anestesia suína	DRE		1392
tubo de manguito endotraqueal 6,5 mm	SMITH médico		100/150/065
Máquina de Anestesia	Drä ger		PRIMUS IE
2% lidocaína solução tópica	Pomada veterinária Taejoon
Pfizer		terramicina
adesivo de cobertura para os olhos	Innomed		S-universal010S
solução betadine 1%.	Coreia Pharma
gaze 4*4	Primeiro Médico		22*30CM 320S
lâmina No. 23	Paragon		23
lahey afastador	V.Mueller		SU3960
kelly tesoura de tecido	SOLCO		05-1990
lâmina No. 11	Paragon		11
de marcação cirúrgica	Aspen Surgical		Regular #2750
allis	V.Mueller		SU4055
tie suture	Covidein		sem agulha
3.5× lupa cirúrgica	zeiss		eyemag
smart double clamp sem moldura	V.Mueller		CH7155
microtesoura	AESCULAP		FD038R
Ringer's lactato	Daehan		500ml/1bag
amoxicilina– clavulanato	Ilsung		0,6 g/V
Meloxicam	Samil		7,5 mg
propofol	Dong Kook		120 mg/V
solução KCl intravenosa	Daehan		20ml/50P
mosquito curvo	SOLCO		013-0111
mosquito reto	SOLCO		05-1050
etilona 10-0 sutura	eticona		10/0W1756
Vicryl 3-0.	eticona		3 / 0W9890
buprenorfina	Hanlim		0,3mg